Summary

Domuz Brakiyal arter Kateterizasyonu

Published: March 30, 2019
doi:

Summary

Belgili tanımlık video içinde domuz distal Brakiyal arter Kateterizasyonu ayrıntılı olarak anlatılmaktadır. Bu yordamı doğru arteryel kan basıncı ölçer ve arteriyel kan gazı ölçümleri için örnekleri toplamak için bir hızlı ve basit bir yöntemdir.

Abstract

Belgili tanımlık video içinde domuz distal Brakiyal arter Kateterizasyonu ayrıntılı olarak anlatılmaktadır. Bu teknik araştırmacılar arteryel kan basıncı kesintisiz ölçerler ve arteriyel kan gazı ölçümleri değerlendirmek için arteryel kan örnekleri toplamak için sağlar. Arteryel kan basıncı ve arteriyel kan gazı deneysel işlemler sırasında izlemek için önemli fizyolojik parametreler vardır. Domuz, arter Kateterizasyonu dört yaygın yöntemler, karotis, femur, kulak çevresi ve medial Safen arter Kateterizasyonu dahil tarif edilmistir. Bu tekniklerin herbirini kulak çevresi arter ve derin doku diseksiyon Karotid arter Kateterizasyonu için dahil dezavantajları için erişim kolaylığı gibi avantajlar var. Domuz, brakiyal arter distal yönünü Kateterizasyon arter Kateterizasyonu açıklanan alternatif yöntem nispeten az doku diseksiyon gerektirir ve veriler doğrultusunda bilgi sağlayan hızlı bir işlemdir diğer arter Kateterizasyonu sitelerden toplanan. Prosedür boyunca eğik düzlemin olecranon fleksör boy dirsek eklem arasında yer alan alt brachium, medial bir yaklaşım kullanır ve bu yaklaşım araştırmacılar ilgili yordamlar için engelsiz özgürlük en büyük avantajı sağlar. caudoventral, caudodorsal geri veya arka bacaklarda domuz. Konumu catheterized geminin üst forelimb ve etkili homeostazı arterin kateter kaldırma aşağıdaki olası sorunları nedeniyle, bu teknik olmayan kurtarma yordamlarını için sınırlı olabilir.

Introduction

Cerrahi müdahale deneysel araştırma bilimsel gelişme geliştirmek hayvan modelleri geliştirmek için kullanılır. Bilimsel literatür dolu roman örnekleri ile cerrahi hayvan1,2,3modelleri. Cerrahi işlemler sadece manipülasyon anatomik yapıları aynı zamanda çeşitli ilaçlar anestezi ve analjezi için gerekli olan karmaşık fizyolojik etkileşimleri içeren karmaşık bir süreç vardır. Bu etkileşimi içinde hayvan fizyolojik süreçlerinde önemli değişiklikler neden olabilir ve bu nedenle uyanık hayvan4/ izleme gerektirir. Klinik olarak başarılı cerrahi sonuçlar arteryel kan gazı ve arteryel kan basıncı5ölçümleri ile ilişkilendirilmiştir. Bu klinik parametreler bir arter6,7‘ nin başarılı Kateterizasyon gerektiren arteryel kan basıncı ölçmek ve etkili, arteryel kan toplamak için yetenek gerektirir.

Arteryel kan toplamak ve basıncı ölçmek için arter Kateterizasyonu çeşitli hayvan türleri5,6,7,8,9,10, kullanılan 11 , 12 , 13 , 14 , 15 , 16 , 17 , 18 , 19 , 20 , 21 ve farklı geliştirme19,20,21 yaşları, hayvanlarda ve her iki kurtarma (klinik ve Tanı) yordamlar4,5, yönetmen 6,7,8 ve kurtarma (deneysel) yordamlar14,15,16,17,18. Ayrıca, Arteryel erişim kolaylığı ve cerrahi işlem bağlamında arter konumunu da önemli hususlar vardır bir arter arter kan ölçümleri için seçerken. Örneğin, medyan Kaudal arter köpekler ve atlar yüz arter yanı sıra köpekler ve atlar, pedal arter kurtarma yordamları6,7sırasında, kullanılan tanılama ölçme ve izleme 8. buna ek olarak, karotis ve femoral arterler kez domuz her iki kurtarma için içinde catheterized veya uzun vadeli kateter implantasyon deneyler14,15,18.

Domuz, arteryel kan toplamak veya her iki arteryel kan basıncı ölçmek için arter Kateterizasyonu rutin olan istihdam karotis, femur, medial Safen veya kulak çevresi arterler22,23. Özel rutin olmayan yordamlar için başka daha sıradışı damarların, subklavyen ve iliyak arter dahil olmak üzere Brakiyal arter anatomik tortuosity17 ölçmek ve aort16, sırasıyla görüntü için kullanılmaktadır. Ne olursa olsun arter’ın seçili Kateterizasyon için doğal avantajları ve dezavantajları kullanımı için her arter vardır. Örneğin, kulak çevresi arter anatomik olarak erişmek kolaydır ancak kullanımı yakınlığı ile marjinal kulak damarlar11,12için sınırlı olabilir. İçinde karşılaştırma, Karotid arter nispeten büyük ve sağlam24, ama derin Şah karık içinde yatıyor ve maddi doku diseksiyon25gerektirir. Bu nedenle, atardamar basıncı ölçmek ve arteriyel kan toplamak için catheterized başka bir arter tanımlama garanti kapsamındadır. Bu video ve el yazması domuz, Sigara kurtarma yordamlarını için uygulanabilir bir teknik olarak distal Brakiyal arter Kateterizasyonu ayrıntılı olarak açıklanmaktadır. Özellikle, domuz Brakiyal arter Kateterizasyonu (ameliyat bu kısmından veri değil sunulur) hind uzuv ölçümleri ile lomber ameliyat sırasında arteryel kan basıncı ve arteriyel kan gazı parametreleri ölçmek için kullanıldı.

Protocol

Deneysel hayvan video ve el yazması konusunda açıklanan tüm yordamlar kurumsal hayvan bakım ve Alberta Üniversitesi kullanım Komitesi tarafından kabul edildi 1. cerrahi anestezi ve cerrahi domuzlar hazırlanması. 50 kg Landrace-Yorkshire ticari domuz İntramüsküler anestetik uyuşturucu ketamin hidroklorür (22 mg/kg,), xylazine hidroklorür (2.2 mg/kg) ve glycopyrrolate hidroklorid (10 µg/kg) içeren kokteyl ile premedicate. Tüm ekipmanları klinik parametrele…

Representative Results

Brakiyal arter Kateterizasyonu arteryel kan basıncı ve arteriyel kan aralıklı örnekleme domuz genişletilmiş cerrahi işlemler sırasında sürekli izlenmesi için izin verir. Ölçülen parametreler yedi 50 kg Landrace-Yorkshire ticari domuz açıklandığı gibi toplanmıştır. Brakiyal arter catheterize için gereken toplam süreyi 35.2 ± son cerrahi kesi kapatılması (şekil 1) için ilk arter landmarking üzerinden 4,4 min yapıldı. Atardamar b…

Discussion

Arteryel kan basıncı ölçmek ve arteriyel kan gazı ölçümleri için kan örnekleri toplamak için arter Kateterizasyonu hayvan türlerinin5,6,7,8 geniş bir alanda kurulan , 9 , 10 , 11 , 12 , 13 , <sup cl…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Bu eser V. K. Mushahwar yenilik hibe için Kanada Sağlık Araştırma enstitüleri ve Kanada Vakfı tarafından desteklenmiştir. A. Toossi Vanier Kanada yüksek lisans burs tarafından Alberta yeniliklerin – sağlık çözümleri lisansüstü öğrencilik ve Kraliçe Elizabeth II yüksek lisans burs desteklenmiştir. V.K. Mushahwar fonksiyonel restorasyon Kanada araştırma koltuğum. Onun yardımıyla cerrahi Tıbbi Araştırma Enstitüsü ile ilgili yordamları onların yardım için personel ve ses üretimi için Bay Moss Street Productions J. yığını kabul etmek istiyoruz.

Materials

0.9% NaCl (Saline) Solution EMRN JB1322P 1 x1 liter bag
10% Lidocaine spray AstraZeneca DIN:02039508 / 1 x  50 ml  bottle
10% Povidone-Iodine scrub Purdue Pharma 521232 1 x 500 ml bottle 
20 ga 1-inch angiocatheter Becton Dickinson 381433 1 x angiocatheter
2-0 polyglactin suture (Vicryl) Ethicon J339H 2-0 vicryl / 1 packet of suture
2-0 polypropylene suture (Prolene)  Ethicon 8833H 2-0 prolene / 1 packet of suture
22 ga 1-inch angiocatheter Becton Dickinson 381423 1 x angiocatheter
9 ID mm endotracheal tube Jorvet J0835P 1 x endotracheal tube
Arterial blood pressure IV line Argon Medical Devices 112411 1 x arterial blood pressure IV line
Disposable drapes Halyard Sales LLC 89731 4-8 x disposable drapes 
Glycopyrrolate hydrochloride  Sandoz DIN:02039508 / 1 x 20ml vial
Isoflurane Abbott Animal  Health 05260-5 1 x 250ml bottle
Kelly forceps-curved (14cm) Stevens 162-7-38 8-10  instruments
Ketamine hydrochloride Vetoquinol DIN:02374994 / 1 x 10ml vial
Lactated Ringer's Solution Hospira 0409-7953-09 4 x1 liter bag
Metzenbaum scissors Fine Science 14518-18
Miller laryngoscope blade Welch Allyn 68044 182 mm length  / 1 instrument
Nasal temperature probe Surgivet V3417 1 probe
Needle Drivers Stevens 162-V98-42 2 instruments
Q tip applicators Fisher Scientific 22-037-960 20-40  app
Remifentanil hydrochloride TEVA DIN:0234432 / 1 mg vial
Surgivet advisor: Vital signs monitor Surgivet V9203 1 monitor
Weitlaner retractor Stevens 162-11-602  2 retractors
Xylazine hydrochloride Bayer DIN:02169606 1 x 50ml bottle

References

  1. Uwiera, R. R., et al. Plasmid DNA induces increased lymphocyte trafficking: a specific role for CpG motifs. Cellular Immunology. 214 (2), 155-164 (2001).
  2. Uwiera, R. R., Kastelic, J. P., Inglis, G. D. Catheterization of intestinal loops in ruminants. Journal of Visualized Experiments. (28), (2009).
  3. Uwiera, R. R., Mangat, R., Kelly, S., Uwiera, T. C., Proctor, S. D. Long-Term Catheterization of the Intestinal Lymph Trunk and Collection of Lymph in Neonatal Pigs. Journal of Visualized Experiments. (109), (2016).
  4. Wohlfender, D. H., et al. International online survey to assess current practice in equine anaesthesia. Equine Veterinary Journal. 47, 65-71 (2015).
  5. Dugdale, A. H., Taylor, P. M. Equine anaesthesia-associated mortality: where are we now?. Veterinay Anaesthesia Analgesia. 43 (3), 242-255 (2016).
  6. McGrotty, Y., Brown, A. Blood gases, electrolytes and interpretation 1. Blood gases. In Practice. 35 (2), 59-65 (2013).
  7. Taylor, P. M. Techniques and clinical application of arterial blood pressure measurement in the horse. Equine Veterinary Journal. 13, 271-275 (1981).
  8. Trim, C. M., Hofmeister, E. H., Quandt, J. E., Shepard, M. K. A survey of the use of arterial catheters in anesthetized dogs and cats: 267 cases. Journal of Veterinary Emergency and Critical. 27, 89-95 (2017).
  9. Komine, H., Matsukawa, K., Tsuchimochi, H., Nakamoto, T., Murata, J. Sympathetic cholinergic nerve contributes to increased muscle blood flow at the onset of voluntary static exercise in conscious cats. American Journal of Physiology – Regulatory, Integrative and Comparative Physiology. 295 (4), R1251-R1262 (2008).
  10. Krista, L. M., Beckett, S. D., Branch, C. E., McDaniel, G. R., Patterson, R. M. Cardiovascular Responses in Turkeys as Affected by Diurnal Variation and Stressor. Poultry Science. (60), 462-468 (1981).
  11. Bass, L. M., Yu, D. Y., Cullen, L. K. Comparison of femoral and auricular arterial blood pressure monitoring in pigs. Veterinay Anaesthesia Analgesia. 36 (5), 457-463 (2009).
  12. Karnabatidis, D., Katsanos, K., Diamantopoulous, A., Kagadis, G. C., Siablis, D. Transauricular arterial or venous access for cardiovascular experimental protocols in animals. Journal of Vascular and Interventional Radiology. 17 (11 Pt 1), 1803-1811 (2006).
  13. Namba, K., Kawamura, Y., Higaki, A., Nemoto, S. Percutaneous medial saphenous artery approach for Swine central artery access. Journal of Investigative Surgery. 26 (6), 360-363 (2013).
  14. Hong, Y., et al. Feasibility of Selective Catheter-Directed Coronary Computed Tomography Angiography Using Ultralow-Dose Intracoronary Contrast Injection in a Swine Model. Investigative Radiology. (50), 449-455 (2015).
  15. Kumar, A., et al. Aortic root catheter-directed coronary CT angiography in swine: coronary enhancement with minimum volume of iodinated contrast material. American Journal of Roentgenology. (188), W415-W422 (2007).
  16. Park, J. H., et al. Safety and Efficacy of an Aortic Arch Stent Graft with Window-Shaped Fenestration for Supra-Aortic Arch Vessels: an Experimental Study in Swine. Korean Circulation Journal. 47 (2), 215-221 (2017).
  17. Carniato, S., Mehra, M., King, R. M., Wakhloo, A. K., Gounis, M. J. Porcine brachial artery tortuosity for in vivo evaluation of neuroendovascular devices. American Journal of Neuroradiology. 34 (4), E36-E38 (2013).
  18. Hannon, J. P., Bossone, C. A., Wade, C. E. Normal Physiological Values for Consious pigs used in Biomedical Research. Laboratory Animal Science. 40, 293-298 (1990).
  19. Nijland, M. J., Shankar, U., Iyer, V., Ross, M. G. Assessment of fetal scalp oxygen saturation determination in the sheep by transmission pulse oximetry. American Journal of Obstetrics and Gynecology. 183 (6), 1549-1553 (2000).
  20. Yawno, T., et al. Human Amnion Epithelial Cells Protect Against White Matter Brain Injury After Repeated Endotoxin Exposure in the Preterm Ovine Fetus. Cell Transplantation. 26 (4), 541-553 (2017).
  21. Amaya, K. E., et al. Accelerated acidosis in response to variable fetal heart rate decelerations in chronically hypoxic ovine fetuses. American Journal of Obstetrics and Gynecology. 214 (2), e270-e271 (2016).
  22. Malavasi, L. M. . Swine. Anesthesia and Analgesia for Domestic Species. , (2015).
  23. Moon, P. F., Smith, L. J. General Anesthetic Techniques in Swine. Veterinary Clinics of North America: Food Animal Practice. 12 (3), 663-691 (1996).
  24. Caramoni, P. R. A., et al. Postangioplasty restenosis: a practical model in the porcine carotid artery. Brazilian Journal of Medical and Biological Research. (30), 1087-1091 (1997).
  25. Sisson, S. . The Anatomy of the Domestic Animals. , 636-638 (1930).
  26. Lundeed, A. B., Manohar, M., Parks, C. Systemic distribution of blood flow in swine while awake and during 1.0 and 1.5 MAC isoflurane anesthesia with or without 50% nitrous oxide. Anesthesia and Analgesia. 31, 499-512 (1983).
  27. Sisson, S. . The Anatomy of the Domestic Animals. , 302-304 (1930).
  28. Adin, C. A., Gregory, C. R., Adin, D. B., Cowgill, L. D., Kyles, A. E. Evaluation of three peripheral arteriovenous fistulas for hemodialysis access in dogs. Veterinary Surgery. 31 (5), 405-411 (2002).
  29. Gladczak, A. K., Shires, P. K., Stevens, K. A., Clymer, J. W. Comparison of indirect and direct blood pressure monitoring in normotensive swine. Research in Veterinary Science. 95 (2), 699-702 (2013).
  30. Wenzel, K., et al. Survey of Effects of Anesthesia Protocols on Hemodynamic Variables in Porcine Cardiopulmonary Resuscitation Laboratory Models Before Induction of Cardiac Arrest. Comparative Medicine. 50 (6), 644-648 (2000).
  31. Duval, J. D., Pang, J. M., Boysen, S. R., Caulkett, N. A. Cardiopulmonary Effects of a Partial Intravenous Anesthesia Technique for Laboratory Swine. Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 57 (4), 376-381 (2018).
  32. Friendship, R. M., Lumsden, J. H., McMillan, I., Wilson, M. R. Hematology and Biochemistry Reference Values for Ontario Swine. Canadian Journal of Comparative Medicine. (48), 390-393 (1984).
  33. Kiorpes, A. L., MacWilliams, P. S., Schenkman, D. I., Bickstrom, L. R. Blood Gas and Hematological Changes in Experimental Peracute Porcine Pleuropneumonia. Canadian Journal of Veterinary Research. (54), 164-169 (1990).
  34. Klem, T. B., Bleken, E., Morberg, H., Thoresen, S. I., Framstad, T. Hematologic and biochemical reference intervals for Norwegian crossbreed grower pigs. Veterinary Clinical Pathology. 39 (2), 221-226 (2010).
  35. Sisson, S. . The Anatomy of the Domestic Animals. , 804-810 (1930).
  36. Lopes-Berkas, V. C., Jorgenso, M. A. Measurement of Peripheral Arterial Vasculature in Domestic Yorkshire Swine by Using Quantitative Vascular Angiograph. Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 50 (5), 628-634 (2011).
  37. Geary, R. L., et al. Wound healing: A paradigm for lumen narrowing after arterial reconstruction. Journal of Vascular Surgery. (27), 96-108 (1998).
check_url/59365?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Uwiera, R. R., Toossi, A., Everaert, D. G., Uwiera, T. C., Mushahwar, V. K. Brachial Artery Catheterization in Swine. J. Vis. Exp. (145), e59365, doi:10.3791/59365 (2019).

View Video