Cateterización de la arteria braquial en los cerdos
Summary
El video describe en detalle la cateterización de la arteria braquial distal en los cerdos. Este procedimiento exactamente mide la presión arterial y es un método simple y rápido para recoger las muestras para la medición de gas de sangre arterial.
Abstract
El video describe en detalle la cateterización de la arteria braquial distal en los cerdos. Esta técnica permite a los investigadores medir continuamente la presión arterial y obtener muestras de sangre arterial para evaluar las mediciones de gas de sangre arterial. Las presiones arteriales de la sangre y gasometría arterial es parámetros fisiológicos importantes para monitorear durante procedimientos experimentales. En los cerdos, se han descrito cuatro métodos comunes de la cateterización arterial, incluyendo el cateterismo de las arterias carótidas, femorales, auriculares y mediales safenas. Cada una de estas técnicas tienen ventajas, tales como facilidad de acceso para las arteria auricular y las desventajas que incluyen disección de tejido profundo para la cateterización de la arteria carótida. El método alternativo descrito de la cateterización arterial en cerdos, la cateterización del aspecto distal de la arteria braquial, es un procedimiento rápido que requiere disección de tejido relativamente mínima y proporciona información que está en consonancia con los datos recogido de otros sitios de la cateterización arterial. El procedimiento utiliza un enfoque intermedio a lo largo de un plano oblicuo del brazo inferior, situada entre el olécranon y el aspecto del flexor de la articulación del codo, y este enfoque permite a los investigadores la principal ventaja de la libertad sin trabas para los procedimientos que implican el caudoventrales caudodorsal espalda y extremidades traseras del cerdo. Debido a la ubicación de la extremidad delantera superior del vaso cateterizado y retos potenciales de la homeostasis eficaz tras la retirada del catéter de la arteria, esta técnica puede ser limitada a los procedimientos de recuperación.
Introduction
Intervención quirúrgica se utiliza en la investigación experimental para desarrollar modelos animales que realzan el desarrollo científico. La literatura científica está llena con ejemplos de novela modelos animales quirúrgica1,2,3. Los procedimientos quirúrgicos son un proceso complejo que involucra no sólo la manipulación de estructuras anatómicas, sino complicadas interacciones fisiológicas con varias drogas para anestesia y analgesia. Esta interacción puede inducir cambios importantes en los procesos fisiológicos en el animal y como tal requiere vigilancia vigilantes de los animales4. Resultados quirúrgicos exitosos clínicamente se han asociado con medidas de gasometría arterial y las presiones arteriales de la sangre5. Estos parámetros clínicos requieren la capacidad para medir la presión arterial y recoger la sangre arterial con eficacia, que a su vez requiere la cateterización exitosa de una arteria6,7.
Cateterización arterial para recoger la sangre arterial y medir la presión se ha utilizado en varias especies animales5,6,7,8,9,10, 11 , 12 , 13 , 14 , 15 , 16 , 17 , 18 , 19 , 20 , 21 y en los animales a diferentes edades de desarrollo19,20,21 y ha sido dirigida en ambos procedimientos (clínica y diagnóstico) recuperación4,5, 6,7,8 y recuperación procedimientos (experimental)14,15,16,17,18. Además, la facilidad de acceso arterial y la localización de la arteria en el contexto de la intervención quirúrgica son también consideraciones importantes al elegir una arteria para la medición de la gasometría arterial. Por ejemplo, la arteria caudal promedio en perros y la arteria facial en los caballos, así como la arteria pedal en perros y caballos, son usadas para la medición de diagnóstico y monitoreo durante la recuperación procedimientos6,7, 8. en contraste, las arterias carótida y femoral a menudo son cateterizadas en cerdos o recuperación o experimentos de implantación de catéter a largo plazo14,15,18.
En los cerdos, la cateterización arterial para medir tanto la presión arterial o recoger la sangre arterial ha empleado rutinariamente o la carótida, la femoral, medial arterias safena o auricular22,23. Para procedimientos de rutina no especializados, otras arterias más inusuales se han utilizado, incluyendo las arterias subclavias e ilíacas, para medir la arteria braquial tortuosidad anatómica17 y la imagen de la aorta16, respectivamente. Independientemente de que la arteria es elegido para la cateterización, cada arteria tiene inherentes ventajas y desventajas para su uso. Por ejemplo, la arteria auricular es anatómicamente fácil acceso, pero su uso puede ser limitado a su proximidad a la marginal de la oreja las venas11,12. En comparación, la arteria carótida es relativamente grande y robusto24, pero miente en el surco yugular y requiere disección de tejido Sustantivo25. Como tal, identificando otra arteria que podría ser cateterizada para medir la presión arterial y recoger la sangre arterial está garantizado. Este video y el manuscrito de describen en detalle la cateterización de la arteria braquial distal en los cerdos, una técnica que puede aplicarse a los procedimientos de recuperación. En particular, la cateterización de la arteria braquial de cerdo fue utilizada para medir la presión arterial arterial y parámetros del gas de sangre arterial durante una cirugía de columna lumbar con medición de extremidades (no se presentaron los datos de esta parte de la cirugía).
Protocol
Representative Results
Discussion
Cateterización arterial para medir la presión arterial arterial y obtener muestras de sangre para la medición de gas de sangre arterial se ha establecido en una amplia gama de especies animales5,6,7,8 , 9 , 10 , 11 , 12 , 13<…
Disclosures
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
Este trabajo fue apoyado por los institutos canadienses de investigación en salud y la Fundación de Canadá para la concesión de la innovación a V. K. Mushahwar. A. Toossi fue apoyado por Vanier Canadá postgrado becado, Alberta Innovates – soluciones de salud posgrado beca y una beca de posgrado Reina Elizabeth II. V.K. Mushahwar es una Cátedra de investigación de Canadá en la restauración funcional. Nos gustaría reconocer Sr. J. Stack de Moss Street Productions por su ayuda con la producción de audio y personal del Instituto de investigación médico quirúrgico por su asistencia con los procedimientos.
Materials
| 0.9% NaCl (Saline) Solution | EMRN | JB1322P | 1 x1 liter bag |
| 10% Lidocaine spray | AstraZeneca | DIN:02039508 / 1 x 50 ml bottle | |
| 10% Povidone-Iodine scrub | Purdue Pharma | 521232 | 1 x 500 ml bottle |
| 20 ga 1-inch angiocatheter | Becton Dickinson | 381433 | 1 x angiocatheter |
| 2-0 polyglactin suture (Vicryl) | Ethicon | J339H | 2-0 vicryl / 1 packet of suture |
| 2-0 polypropylene suture (Prolene) | Ethicon | 8833H | 2-0 prolene / 1 packet of suture |
| 22 ga 1-inch angiocatheter | Becton Dickinson | 381423 | 1 x angiocatheter |
| 9 ID mm endotracheal tube | Jorvet | J0835P | 1 x endotracheal tube |
| Arterial blood pressure IV line | Argon Medical Devices | 112411 | 1 x arterial blood pressure IV line |
| Disposable drapes | Halyard Sales LLC | 89731 | 4-8 x disposable drapes |
| Glycopyrrolate hydrochloride | Sandoz | DIN:02039508 / 1 x 20ml vial | |
| Isoflurane | Abbott Animal Health | 05260-5 | 1 x 250ml bottle |
| Kelly forceps-curved (14cm) | Stevens | 162-7-38 | 8-10 instruments |
| Ketamine hydrochloride | Vetoquinol | DIN:02374994 / 1 x 10ml vial | |
| Lactated Ringer's Solution | Hospira | 0409-7953-09 | 4 x1 liter bag |
| Metzenbaum scissors | Fine Science | 14518-18 | |
| Miller laryngoscope blade | Welch Allyn | 68044 | 182 mm length / 1 instrument |
| Nasal temperature probe | Surgivet | V3417 | 1 probe |
| Needle Drivers | Stevens | 162-V98-42 | 2 instruments |
| Q tip applicators | Fisher Scientific | 22-037-960 | 20-40 app |
| Remifentanil hydrochloride | TEVA | DIN:0234432 / 1 mg vial | |
| Surgivet advisor: Vital signs monitor | Surgivet | V9203 | 1 monitor |
| Weitlaner retractor | Stevens | 162-11-602 | 2 retractors |
| Xylazine hydrochloride | Bayer | DIN:02169606 1 x 50ml bottle |
References
- Uwiera, R. R., et al. Plasmid DNA induces increased lymphocyte trafficking: a specific role for CpG motifs. Cellular Immunology. 214 (2), 155-164 (2001).
- Uwiera, R. R., Kastelic, J. P., Inglis, G. D. Catheterization of intestinal loops in ruminants. Journal of Visualized Experiments. (28), (2009).
- Uwiera, R. R., Mangat, R., Kelly, S., Uwiera, T. C., Proctor, S. D. Long-Term Catheterization of the Intestinal Lymph Trunk and Collection of Lymph in Neonatal Pigs. Journal of Visualized Experiments. (109), (2016).
- Wohlfender, D. H., et al. International online survey to assess current practice in equine anaesthesia. Equine Veterinary Journal. 47, 65-71 (2015).
- Dugdale, A. H., Taylor, P. M. Equine anaesthesia-associated mortality: where are we now?. Veterinay Anaesthesia Analgesia. 43 (3), 242-255 (2016).
- McGrotty, Y., Brown, A. Blood gases, electrolytes and interpretation 1. Blood gases. In Practice. 35 (2), 59-65 (2013).
- Taylor, P. M. Techniques and clinical application of arterial blood pressure measurement in the horse. Equine Veterinary Journal. 13, 271-275 (1981).
- Trim, C. M., Hofmeister, E. H., Quandt, J. E., Shepard, M. K. A survey of the use of arterial catheters in anesthetized dogs and cats: 267 cases. Journal of Veterinary Emergency and Critical. 27, 89-95 (2017).
- Komine, H., Matsukawa, K., Tsuchimochi, H., Nakamoto, T., Murata, J. Sympathetic cholinergic nerve contributes to increased muscle blood flow at the onset of voluntary static exercise in conscious cats. American Journal of Physiology – Regulatory, Integrative and Comparative Physiology. 295 (4), R1251-R1262 (2008).
- Krista, L. M., Beckett, S. D., Branch, C. E., McDaniel, G. R., Patterson, R. M. Cardiovascular Responses in Turkeys as Affected by Diurnal Variation and Stressor. Poultry Science. (60), 462-468 (1981).
- Bass, L. M., Yu, D. Y., Cullen, L. K. Comparison of femoral and auricular arterial blood pressure monitoring in pigs. Veterinay Anaesthesia Analgesia. 36 (5), 457-463 (2009).
- Karnabatidis, D., Katsanos, K., Diamantopoulous, A., Kagadis, G. C., Siablis, D. Transauricular arterial or venous access for cardiovascular experimental protocols in animals. Journal of Vascular and Interventional Radiology. 17 (11 Pt 1), 1803-1811 (2006).
- Namba, K., Kawamura, Y., Higaki, A., Nemoto, S. Percutaneous medial saphenous artery approach for Swine central artery access. Journal of Investigative Surgery. 26 (6), 360-363 (2013).
- Hong, Y., et al. Feasibility of Selective Catheter-Directed Coronary Computed Tomography Angiography Using Ultralow-Dose Intracoronary Contrast Injection in a Swine Model. Investigative Radiology. (50), 449-455 (2015).
- Kumar, A., et al. Aortic root catheter-directed coronary CT angiography in swine: coronary enhancement with minimum volume of iodinated contrast material. American Journal of Roentgenology. (188), W415-W422 (2007).
- Park, J. H., et al. Safety and Efficacy of an Aortic Arch Stent Graft with Window-Shaped Fenestration for Supra-Aortic Arch Vessels: an Experimental Study in Swine. Korean Circulation Journal. 47 (2), 215-221 (2017).
- Carniato, S., Mehra, M., King, R. M., Wakhloo, A. K., Gounis, M. J. Porcine brachial artery tortuosity for in vivo evaluation of neuroendovascular devices. American Journal of Neuroradiology. 34 (4), E36-E38 (2013).
- Hannon, J. P., Bossone, C. A., Wade, C. E. Normal Physiological Values for Consious pigs used in Biomedical Research. Laboratory Animal Science. 40, 293-298 (1990).
- Nijland, M. J., Shankar, U., Iyer, V., Ross, M. G. Assessment of fetal scalp oxygen saturation determination in the sheep by transmission pulse oximetry. American Journal of Obstetrics and Gynecology. 183 (6), 1549-1553 (2000).
- Yawno, T., et al. Human Amnion Epithelial Cells Protect Against White Matter Brain Injury After Repeated Endotoxin Exposure in the Preterm Ovine Fetus. Cell Transplantation. 26 (4), 541-553 (2017).
- Amaya, K. E., et al. Accelerated acidosis in response to variable fetal heart rate decelerations in chronically hypoxic ovine fetuses. American Journal of Obstetrics and Gynecology. 214 (2), e270-e271 (2016).
- Malavasi, L. M. . Swine. Anesthesia and Analgesia for Domestic Species. , (2015).
- Moon, P. F., Smith, L. J. General Anesthetic Techniques in Swine. Veterinary Clinics of North America: Food Animal Practice. 12 (3), 663-691 (1996).
- Caramoni, P. R. A., et al. Postangioplasty restenosis: a practical model in the porcine carotid artery. Brazilian Journal of Medical and Biological Research. (30), 1087-1091 (1997).
- Sisson, S. . The Anatomy of the Domestic Animals. , 636-638 (1930).
- Lundeed, A. B., Manohar, M., Parks, C. Systemic distribution of blood flow in swine while awake and during 1.0 and 1.5 MAC isoflurane anesthesia with or without 50% nitrous oxide. Anesthesia and Analgesia. 31, 499-512 (1983).
- Sisson, S. . The Anatomy of the Domestic Animals. , 302-304 (1930).
- Adin, C. A., Gregory, C. R., Adin, D. B., Cowgill, L. D., Kyles, A. E. Evaluation of three peripheral arteriovenous fistulas for hemodialysis access in dogs. Veterinary Surgery. 31 (5), 405-411 (2002).
- Gladczak, A. K., Shires, P. K., Stevens, K. A., Clymer, J. W. Comparison of indirect and direct blood pressure monitoring in normotensive swine. Research in Veterinary Science. 95 (2), 699-702 (2013).
- Wenzel, K., et al. Survey of Effects of Anesthesia Protocols on Hemodynamic Variables in Porcine Cardiopulmonary Resuscitation Laboratory Models Before Induction of Cardiac Arrest. Comparative Medicine. 50 (6), 644-648 (2000).
- Duval, J. D., Pang, J. M., Boysen, S. R., Caulkett, N. A. Cardiopulmonary Effects of a Partial Intravenous Anesthesia Technique for Laboratory Swine. Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 57 (4), 376-381 (2018).
- Friendship, R. M., Lumsden, J. H., McMillan, I., Wilson, M. R. Hematology and Biochemistry Reference Values for Ontario Swine. Canadian Journal of Comparative Medicine. (48), 390-393 (1984).
- Kiorpes, A. L., MacWilliams, P. S., Schenkman, D. I., Bickstrom, L. R. Blood Gas and Hematological Changes in Experimental Peracute Porcine Pleuropneumonia. Canadian Journal of Veterinary Research. (54), 164-169 (1990).
- Klem, T. B., Bleken, E., Morberg, H., Thoresen, S. I., Framstad, T. Hematologic and biochemical reference intervals for Norwegian crossbreed grower pigs. Veterinary Clinical Pathology. 39 (2), 221-226 (2010).
- Sisson, S. . The Anatomy of the Domestic Animals. , 804-810 (1930).
- Lopes-Berkas, V. C., Jorgenso, M. A. Measurement of Peripheral Arterial Vasculature in Domestic Yorkshire Swine by Using Quantitative Vascular Angiograph. Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 50 (5), 628-634 (2011).
- Geary, R. L., et al. Wound healing: A paradigm for lumen narrowing after arterial reconstruction. Journal of Vascular Surgery. (27), 96-108 (1998).
