Summary

Индуцирование и характеристика везикулярного стеатоза в дифференцированных клетках гепаррг

Published: July 18, 2019
doi:

Summary

В этом исследовании мы описываем подробный протокол для индуцирования печени везикулярный стеатоз в дифференцированных клетках HepaRG с жирным кислотным олеатом соли натрия и используем методы обнаружения и количественной оценки накопления липидов, включая когерентный анти-Стокс Рамана рассеяния (CARS) микроскопии, цитофторетриметрический анализ, Масло красный O окрашивания, и qPCR.

Abstract

Печеночный стеатоз представляет собой метаболическую дисфункцию, которая является результатом накопления триггеросодержащих липидных капель в гепатоцитах. Чрезмерное накопление жира приводит к безалкогольной жировой болезни печени (NAFLD), которая потенциально обратима и может перерасти в безалкогольный стеатогепатит (NASH) и в конечном итоге цирроз и гепатоцеллюля). Молекулярные механизмы, связывающие накопление липидов в гепатоцитах с прогрессированием в NASH, необратимые повреждения печени, фиброз, цирроз печени и даже HCC до сих пор остается неясным. С этой целью, несколько in vitro и in vivo модели были разработаны, чтобы выяснить патологические процессы, которые вызывают NAFLD. В настоящем исследовании, мы описываем клеточной модели для индукции печени везикулярный стеатоз, который состоит из DMSO-дифференцированных человеческих печеночных клеток HepaRG, обработанных жирными кислотами соли олеата. Действительно, олейт натрия обработанных клеток HepaRG накапливают липидные капли в цитоплазме и показывают типичные особенности стеатоза. Эта человеческая модель in vitro представляет собой ценную альтернативу моделям in vivo мышей, а также первичным человеческим гепатоцитам. Мы также представляем сравнение нескольких методов количественной оценки и оценки накопления жира в клетках HepaRG, включая окодело oil Red O, цитофторметрическое измерение Бодипи, метаболический анализ экспрессии генов qPCR и когерентный анти-Стокс Рамана рассеяния (CARS) микроскопии. Изображение CARS сочетает в себе химическую специфичность Раманской спектроскопии, метода химического анализа, хорошо известного в материалах, с преимуществами высокоскоростных нелинейных оптических микроскопов с высоким разрешением количественное увеличение накопления липидов и динамики липидных капель. Создание эффективной модели in vitro для индукции везикулярного стеатоза, наряду с точным методом количественной оценки и характеристики накопления липидов, может привести к развитию ранней стадии диагностики НАФЛД с помощью идентификации молекулярных маркеров и создания новых стратегий лечения.

Introduction

Печеночный стеатоз определяется как внутрипеченое накопление жира, в триглицеридов, содержащих липидные капли, по крайней мере 5% от веса печени. Длительное хранение печеночных липидов является потенциально обратимым процессом, однако, это может привести к дисфункции обмена веществ печени, воспаление и передовые формы безалкогольных жировых заболеваний печени (NAFLD), преобладающей причиной хронических заболеваний печени во многих частях мир1,2. НАФЛД является многофакторным заболеванием, которое может эволюционировать до более агрессивного безалкогольного стеатогепатита (NASH), который, в свою очередь, может прогрессировать до цирроза печени и, в небольшом проценте пациентов, гепатоцеллюлярной карциномы (HCC)1,3. Нет утвержденной терапии в настоящее время доступна в качестве конкретного лечения для NAFLD и сочетание диеты и изменения образа жизни остается столп НАФЛД и NASH управления4,5,6.

Молекулярные механизмы, ведущие к развитию печеночного стеатоза в патогенезаНАФЛД, еще предстоит выяснить 7. В этом контексте были разработаны модели мышей для изучения прогрессирования болезни стеатоза человека. Существует множество различных моделей, и каждая из них имеет свои преимущества и недостатки, включая генетические, питательные и химически индуцированные модели, сочетающие различные подходы. Генетически модифицированные (трансгенные или нокаутирующие) мыши спонтанно развивают заболевания печени. Однако следует отметить, что эти мутации очень редки у людей и удаление или чрезмерное выражение одного гена (например, об/об мышь) не могут имитировать этиологию многофакторного заболевания человека на молекулярном уровне8,9. Аналогичным образом, болезнь, приобретенная мышами после диетических или фармакологических манипуляций, не можетимитировать эффекты рациона человека, связанные с развитием НАФЛД у человека 8. Модели животных, однако, способствовали развитию понимания НАФЛД, и этот подход в настоящее время является наиболее часто используемой стратегией в лабораторных исследованиях. Тем не менее, репликация в организме человека результатов, полученных в животных моделях неоднократно не удалось, в результате чего плохой перевод в клинику10.

Таким образом, модели in vitro NAFLD могут играть основополагающую роль в выяснении молекулярных механизмов прогрессии NAFLD, и они представляют собой ценный инструмент для проверки большого количества соединений. Первичные клеточные культуры, увековеченные клеточные линии и биопсия печени широко используются в исследовательских целях11. Первичные гепатоциты человека очень похожи на клинические условия человека, но существует ограниченное число доноров, а первичные клеточные культуры показывают плохую воспроизводимость из-за изменчивости клеток. Эти наблюдения, наряду с этическими и материально-техническими вопросами, привели к тому, что использование первичных гепатоцитов человека было ограничено12. Таким образом, печеночные клеточные линии представляют собой удобную альтернативу, имеющая ряд существенных преимуществ перед первичной культурой, так как линии печеночных клеток постоянно растут, имеют почти неограниченный срок службы и имеют стабильный фенотип. Кроме того, клеточные линии легко доступны, а культурные условия линий печеночной клетки проще, чем у первичных гепатоцитов, и стандартизируются между различными лабораториями.

Здесь мы подробно описываем модель клеточного цитирования печени, представленную печеночными дифференцированными клетками HepaRG, обработанными олеатом натрия. Линия клеток HepaRG была создана из женщины,пациентки, пораженной инфекцией гепатита С, и Эдмондсона класса I хорошо дифференцированной опухоли печени14. Линия клеток HepaRG является человеческой бипотентной линии клеток-прародителей, способной дифференцироваться при воздействии 2% диметилсульфида (DMSO) на два различных клеточных фенотипа: желтоподобные и гепатоцитные клетки. Дифференцированные клетки HepaRG (dHepaRG) имеют некоторые особенности и свойства со взрослыми гепатоцитами и обладают способностью четко выражать гены, характерные для печени, такие как Альбумин, АлдолазеБ, Цитохром P450 2E1 (CYP2E1) и Cytochrome P450 3A4 (CYP3A4)13 (шаг 3). Лечение клеток dHepaRG жирным кислотным олеатом натрия (250 мкм) в течение 5 дней приводит к выработке цитоплазмических липидных капель, имитирующих эффекты жировой печени14,15,17,18 ( шаг 4). Накопление липидных капель может быть легко обнаружено маслом Red O окрашивания (шаг 5), лизохром жирорастворимый краситель, который окрашивает нейтральные триглицериды и липиды красно-оранжевый. Для эффективной количественной оценки липидов в жирной dHepaRG, здесь мы иллюстрируем цитофторетриметрический анализ после окрашивания с 4,4-дифторо-1,3,5,7-тетраметил-4-бора-3a,4a-диаза-с-индицен (Bodipy 505/515) (шаг 6), липофилии флоцентистые внутриклеточных липидных органов и был использован для обозначения липидных капель19. Кроме того, здесь мы показываем, как оценить стеатоз по количественной полимеразной цепной реакции (qPCR) (шаг 7) генной экспрессии дерегуляции нескольких метаболических генов в клетках dHepaRG. Для дальнейшей характеристики и количественной оценки накопления липидных капель после лечения олеатом натрия, мы выполнили когерентную анти-Стокс Раман рассеяния (CARS) микроскопии (шаг 8), инновационный метод, который позволяет визуализации и количественной оценки липидные капли без маркировки20,21.

Protocol

1. Подготовка культурных СМИ и реагентов Пролиферирующая среда: дополнить среду Уильяма E с GlutaMAX, 10% сыворотки крупного рогатого скота плода (FBS), 1% пенициллина / стрептомицина, 5 мкг/мл инсулина и 0,5 мкмизона здоров. Дифференциация среды: дополнить Уильяма E среды с GlutaMAX, 10% FBS, 1% пе?…

Representative Results

Этот протокол описывает эффективный метод, чтобы вызвать и охарактеризовать везикулярный стеатоз в DMSO дифференцированных клеток HepaRG натрия олеат лечения(рисунок 1A). Дифференциация клеток HepaRG.Чтобы эффективно вызвать дифференциацию…

Discussion

Этот протокол описывает, как дифференцировать клетки HepaRG и как вызвать везикулярный стеатоз лечения олеатом натрия(рисунок 1A). Действительно, по сравнению с другими человеческими линиями клеток гепатоцеллюлярной карциномы (HCC), клеточная линия HepaRG демонстриру…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Мы благодарим профессора Кристиана Трепо (INSERM U871, Лион, Франция), который любезно предоставил клетки HepaRG. Мы благодарны Рите Апподиа за административную помощь. Эта работа была поддержана MIUR-Ministero dell’istruzione, dell’universite e della ricerca (FIRB 2011-2016 RBAP10XKNC) и Римским университетом Сапиенца (протеже. C26A13T8PS; Прот. C26A142MCH; Прот. C26A15LSXL).

Materials

Hyclone HyClone Fetal Clone II  GE Healthcare SH30066
William’s E medium with GlutaMAX  Thermofisher 32551087
Penicillin/streptomycin  SIGMA P4333
Insulin  SIGMA I9278
hydrocortisone hemisuccinate SIGMA H2270
DMSO, dimethyl sulfoxide SIGMA D2438   
Sodium Oleate SIGMA O7501 
Methanol SIGMA 179337
Isopropanol SIGMA 278475
BODIPY 505/515 Thermofisher D3921
PBS Thermofisher 14190-250
Formaldehyde solution SIGMA 252549
RNAse free DNAseI Promega M198A 
Glass-bottomed dishes Willco Wells GWST-5040
Oil Red solution SIGMA O625
CellTiter 96 AQueous One Solution Promega  G3582
q-PCR oligo name Sequence
ACACB FOR CAAGCCGATCACCAAGAGTAAA
ACACB REV CCCTGAGTTATCAGAGGCTGG
b-actin FOR GCACTCTTCCAGCCTTCCT
b-actin REV AGGTCTTTGCGGATGTCCAC
ALBUMIN FOR TGCTTGAATGTGCTGATGACAGG
ALBUMIN REV AAGGCAAGTCAGCAGGCATCTCATC
ALDOB FOR GCATCTGTCAGCAGAATGGA 
ALDOB REV TAGACAGCAGCCAGGACCTT
APOB FOR CCTCCGTTTTGGTGGTAGAG
APOB REV  CCTAAAAGCTGGGAAGCTGA
APOC3 FOR CTCAGCTTCATGCAGGGTTA
APOC3 REV GGTGCTCCAGTAGTCTTTCAG
CPT1A FOR TCATCAAGAAATGTCGCACG
CPT1A REV GCCTCGTATGTGAGGCAAAA
CYP2E1 FOR TTGAAGCCTCTCGTTGACCC
CYP2E1 REV CGTGGTGGGATACAGCCAA
CYP3A4 FOR CTTCATCCAATGGACTGCATAAAT
CYP3A4 REV TCCCAAGTATAACACTCTACACAGACAA
GAPDH FOR TGACAACTTTGGTATCGTGGAAGG
GAPDH REV AGGGATGATGTTCTGGAGAGCC
GPAM FOR TCTTTGGGTTTGCGGAATGTT
GPAM REV ATGCACATCTCGCTCTTGAATAA
IL6 FOR CCTGAACCTTCCAAAGATGGC
IL6 REV ACCTCAAACTCCAAAAGACCAGTG
PDK4 FOR ACAGACAGGAAACCCAAGCCAC
PDK4 REV TGGAGGTGAGAAGGAACATACACG
PLIN2 FOR TTGCAGTTGCCAATACCTATGC
PLIN2 REV CCAGTCACAGTAGTCGTCACA
PLIN4 FOR AATGAGTTGGAGGGGCTGGGGGACATC
PLIN4 REV GGTCACCTAAACGAACGAAGTAGC
SCD FOR TCTAGCTCCTATACCACCACCA
SCD REV TCGTCTCCAACTTATCTCCTCC
SLC2A1 FOR TGCTCATCAACCGCAACGAG
SLC2A1 REV CCGACTCTCTTCCTTCATCTCCTG
18S FOR CGCCGCTAGAGGTGAAATTC
18S REV TTGGCAAATGCTTTCGCTC

References

  1. Starley, B. Q., Calcagno, C. J., Harrison, S. A. Nonalcoholic fatty liver disease and hepatocellular carcinoma: a weighty connection. Hepatology. 51 (5), 1820-1832 (2010).
  2. Byrne, C. D., Targher, G. NAFLD: a multisystem disease. Journal of Hepatology. 62 (1), 47-64 (2015).
  3. Marra, F., Gastaldelli, A., Svegliati Baroni, G., Tell, G., Tiribelli, C. Molecular basis and mechanisms of progression of non- alcoholic steatohepatitis. Trends in Molecular Medicine. 14, 72-81 (2008).
  4. Chalasani, N., et al. The diagnosis and management of nonalcoholic fatty liver disease: Practice guidance from the American Association for the Study of Liver Diseases. Hepatology. 67 (1), 328-357 (2018).
  5. Banini, B. A., Sanyal, A. J. Current and future pharmacologic treatment of nonalcoholic steatohepatitis. Current Opinion in Gastroenterology. 33 (3), 134-141 (2017).
  6. Takahashi, Y., Sugimoto, K., Inui, H., Fukusato, T. Current pharmacological therapies for nonalcoholic fatty liver disease/nonalcoholic steatohepatitis. World Journal of Gastroenterology. 21 (13), 3777-3785 (2015).
  7. Younossi, Z., et al. Global burden of NAFLD and NASH: trends, predictions, risk factors and prevention. Nature Reviews Gastroenterology & Hepatology. 15 (1), 11-20 (2018).
  8. Santhekadur, P. K., Kumar, D. P., Sanyal, A. J. Preclinical models of non-alcoholic fatty liver disease. Journal of Hepatology. 68 (2), 230-237 (2018).
  9. Nagarajan, P., Mahesh Kumar, M. J., Venkatesan, R., Majundar, S. S., Juyal, R. C. Genetically modified mouse models for the study of nonalcoholic fatty liver disease. World Journal of. Gastroenterology. 18 (11), 1141-1153 (2012).
  10. Oseini, A. M., Cole, B. K., Issa, D., Feaver, R. E., Sanyal, A. J. Translating scientific discovery: the need for preclinical models of nonalcoholic steatohepatitis. Hepatology International. 12 (1), 6-16 (2018).
  11. Ramboer, E., Vanhaecke, T., Rogiers, V., Vinken, M. Immortalized human hepatic cell lines for in vitro testing and research purposes. Methods in Molecular Biology. 1250, 53-76 (2015).
  12. Gómez-Lechón, M. J., Donato, M. T., Castell, J. V., Jover, R. Human hepatocytes in primary culture: the choice to investigate drug metabolism in man. Current Drug Metabolism. 5 (5), 443-462 (2004).
  13. Marion, M. J., Hantz, O., Durantel, D. The HepaRG cell line: biological properties and relevance as a tool for cell biology, drug metabolism, and virology studies. Methods in Molecular Biology. 640, 261-272 (2010).
  14. Gripon, P., et al. Infection of a human hepatoma cell line by hepatitis B virus. Proceedings of the National Academy of Sciences. 99 (24), 15655-15660 (2002).
  15. Anthérieu, S., Rogue, A., Fromenty, B., Guillouzo, A., Robin, M. A. Induction of vesicular steatosis by amiodarone and tetracycline is associated with up-regulation of lipogenic genes in HepaRG cells. Hepatology. 53 (6), 1895-1905 (2011).
  16. Rouge, A., et al. PPAR agonists reduce steatosis in oleic acid-overloaded HepaRG cells. Toxicology and Applied Pharmacology. 276 (1), 73-81 (2014).
  17. Belloni, L., et al. Targeting a phospho-STAT3-miRNAs pathway improves vesicular hepatic steatosis in an in vitro and in vivo model. Scientific Reports. 8, 13638 (2018).
  18. Nunn, A. D. G., et al. The histone deacetylase inhibiting drug Entinostat induces lipid accumulation in differentiated HepaRG cells. Scientific Reports. 6, 28025 (2016).
  19. Donato, M. T., et al. Cytometric analysis for drug-induced steatosis in HepG2 cells. Chemico-Biological Interactions. 181 (3), 417-423 (2009).
  20. Hellerer, T., Axäng, C., Brackmann, C., Hillertz, P., Pilon, M., Enejder, A. Monitoring of lipid storage in Caenorhabditis elegans using coherent anti-Stokes Raman scattering (CARS) microscopy. Proceedings of the National Academy of Sciences. 104 (37), 14658-14663 (2007).
  21. Le, T. T., Ziemba, A., Urasaki, Y., Brotman, S., Pizzorno, G. Label-free evaluation of hepatic microvesicular steatosis with multimodal coherent anti-Stokes Raman scattering microscopy. PLoS One. 7 (11), 51092 (2012).
  22. Guillouzo, A., Corlu, A., Aninat, C., Glaise, D., Morel, F., Guguen-Guillouzo, C. The human hepatoma HepaRG cells: a highly differentiated model for studies of liver metabolism and toxicity of xenobiotics. Chemico-Biological Interactions. 168 (1), 66-73 (2007).
  23. Nelson, L. J., et al. Human hepatic HepaRG cells maintain an organotypic phenotype with high intrinsic CYP450 Activity/metabolism and significantly outperform standard HepG2/C3A cells for pharmaceutical and therapeutic applications. Basic & Clinical Pharmacology & Toxicology. 120 (1), 30-37 (2017).
  24. Gerets, H. H. J., Tilmant, K., Gerin, B., Chanteux, H., Depelchin, B. O., Dhalluin, S., Atienzar, F. A. Characterization of primary human hepatocytes, HepG2 cells, and HepaRG cells at the mRNA level and CYP activity in response to inducers and their predictivity for the detection of human hepatotoxins. Cell Biology and Toxicology. 28 (2), 69-87 (2012).
  25. Pusl, T., et al. Free fatty acids sensitize hepatocytes to bile acid-induced apoptosis. Biochemical and Biophysical Research Communications. 371 (3), 441-445 (2008).
  26. Gentile, C. L., Pagliassotti, M. J. The role of fatty acids in the development and progression of nonalcoholic fatty liver disease. The Journal of Nutritional Biochemistry. 19 (9), 567-576 (2008).
  27. Mei, S., et al. Differential roles of unsaturated and saturated fatty acids on autophagy and apoptosis in hepatocytes. Journal of Pharmacological Experimental Therapy. 339, 487-498 (2011).
  28. Malhi, H., Bronk, S. F., Werneburg, N. W., Gores, G. J. Free fatty acids induce JNK-dependent hepatocyte lipoapoptosis. Journal of Biological Chemistry. 281, 12093-12101 (2006).
  29. Moravcová, A., Červinková, Z., Kučera, O., Mezera, V., Rychtrmoc, D., Lotková, H. The effect of oleic and palmitic acid on induction of steatosis and cytotoxicity on rat hepatocytes in primary culture. Physiological Research. 64, 627-636 (2015).
  30. Ohsaki, Y., Shinohara, Y., Suzuki, M., Fujimoto, T. A pitfall in using BODIPY dyes to label lipid droplets for fluorescence microscopy. Histochemistry and Cell Biology. 133 (4), 477-480 (2010).
  31. Rinia, H. A., Burger, K. N., Bonn, M., Müller, M. Quantitative label-free imaging of lipid composition and packing of individual cellular lipid droplets using multiplex CARS microscopy. Biophysical Journal. 95 (10), 4908-4914 (2008).
  32. Waschatko, G., Billecke, N., Schwendy, S., Jaurich, H., Bonn, M., Vilgis, T. A., Parekh, S. H. Label-free in situ imaging of oil body dynamics and chemistry in germination. Journal of The Royal Society Interface. 13 (123), (2016).
  33. Jüngst, C., Winterhalder, M. J., Zumbusch, A. Fast and long term lipid droplet tracking with CARS microscopy. Journal of Biophotonics. 4 (6), 435-441 (2011).
  34. Welte, M. A., Gould, A. P. Lipid droplet functions beyond energy storage. Biochimica et Biophysica Acta – Molecular and Cell Biology of Lipids. 1862 (10), 1260-1272 (2017).
  35. Cohen, S. Lipid droplets as organelles. International Review of Cell and Molecular Biology. 337, 83-110 (2018).
  36. Farese, R. V., Walther, T. C. Lipid droplets finally get a little R-E-S-P-E-C-T. Cell. 139 (5), 855-860 (2009).
check_url/59843?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Di Cocco, S., Belloni, L., Nunn, A. D., Salerno, D., Piconese, S., Levrero, M., Pediconi, N. Inducing and Characterizing Vesicular Steatosis in Differentiated HepaRG Cells. J. Vis. Exp. (149), e59843, doi:10.3791/59843 (2019).

View Video