Summary

Количественная оценка вируса бешенства в различных структурах мозга крупного рогатого скота

Published: May 22, 2021
doi:

Summary

Этот протокол представляет собой qRT-PCR-основанный подход для определения нуклеопротеина вируса бешенства (N) номер копии гена в различных анатомических структур мозга крупного рогатого скота с использованием транскрипции в пробирке.

Abstract

Паралитическое бешенство крупного рогатого скота (БНР) является одной из форм вирусного энцефалита, который имеет существенное экономическое значение во всей Латинской Америке, где он представляет собой крупный зоонозный риск. Здесь нашей целью было использовать лабораторный протокол для определения относительного количества копий генома вируса бешенства (RABV) в различных анатомических структурах мозга крупного рогатого скота с использованием количественных обратной транскрипции полимеразной цепной реакции в реальном времени (qRT-PCR). qRT-PCR количественно определяет определенное количество копий генов, присутствующих в образце на основе флуоресценции, испускаемой после усиления, что прямо пропорционально количеству целевой нуклеиновой кислоты, присутствуют в образце. Этот метод выгоден из-за его короткой продолжительности, снижение риска загрязнения, и потенциал для обнаружения вирусных нуклеиновых кислот в различных образцах легче по сравнению с другими методами. Мозг шести бешеных животных был разделен на шесть анатомических структур, а именно рог Аммона, мозжечок, кору, медуллу, понс и таламус. Все мозги были определены как положительные для антигенов RABV на основе прямого теста иммунофлюоресценции. Были также оценены те же анатомические структуры из мозга четырех RABV-отрицательных бычьих коров. РНК извлекается из каждой структуры и используется для qRT-PCR. Был проведен анализ для определения копий генов RABV с использованием транскрибированного в пробирке нуклеопротеина гена. Стандартная кривая, используемая для количественной оценки вирусной РНК, продемонстрировали эффективность 100% и линейность 0,99. Анализ показал, что кора, медулла и таламус были идеальными частями ЦНС для использования в обнаружении RABV, основываясь на наблюдении, что эти структуры обладают самыми высокими уровнями RABV. Специфика теста составила 100%. Все пробы были положительными, ложных срабатываний обнаружено не было. Этот метод может быть использован для обнаружения RABV в образцах, которые содержат низкие уровни RABV во время диагностики BPR.

Introduction

Бешенство может быть подтверждено до смерти и вскрытия с помощью различных методов, которые позволяют обнаружения вирусных нуклеиновых кислот в головном мозге, коже, моче илислюне 1. Обнаружение нуклеопротеина вируса бешенства(N)ген в основном используется для диагностики бешенства молекулярными тестами. Этот ген также используется для вирусного генотипирования. Бешенство может быть диагностировано у животных, использующих любую часть пораженного мозга; однако, чтобы исключить возможность бешенства, ткани, по крайней мере из двух областей в головном мозге должны быть проверены2. Существует несколько диагностических методов выявления бешенства у животных; однако, прямой тест иммунофлуоресценции остается стандартной эталоннойтехникой 3. Другие тесты включают биологические тесты, которые включают прививку мыши, инфекции в культуре тканей, и полимеразной цепной реакции (ПЦР)4. Все эти методы рекомендованы Всемирной организацией здравоохранения (ВОЗ) и Всемирной организацией по охране здоровья животных (OIE) для диагностики бешенства у людей и животных,соответственно 5.

Методы обнаружения и усиления нуклеиновой кислоты произвели революцию вдиагностике бешенства в последние 6 лет, и эти методы играют важную роль в диагностике бешенства человека. Несколько ПЦР-тесты были оценены в дополнение к обычным тестам для антемы и посмертного бешенства диагнозы 7,8,9,10. Большинство анализов целевой бешенства вирусный ген нуклеопротеина для усиления, который является наиболее высоко сохраниваемой области в вирусномгеноме 1,11. За последние 20 лет были разработаны различные молекулярные анализы для диагностики RABV, и некоторые из этих анализов были использованы для характеристики вируса. Большинство испытаний были направлены на обнаружение сохраненных генов в вирусном геноме, чаще всего с помощью обычных или количественных в режиме реального времени полимеразы цепной реакции (qRT-PCR)анализы 12,13.

ПЦР является высокочувствительным диагностическим методом, который может обнаружить геном данного патогена в тканях, даже если эти ткани разлагаются. Используя ПЦР-подходы, минимальное количество инфекционного агента может быть обнаружено в клиническом образце путем селективного и повторяющегося усиления нуклеотидной последовательностиДНК 14. qRT-PCR, который включает флуоресцентные зонды (например, TaqMan) или ДНК связывающие красители (например, SYBR Green) был использован в испытаниях для диагностики RABV как анте– и послеmortem с высокой чувствительностью; однако такой подход требует специального оборудования. Для преодоления этого ограничения было предложено использовать обратное транскрипционные циклы при посредничестве изотермального усиления (RT-LAMP) на основе его низкой стоимости, простоты и желательных характеристик для обнаружения RABV. Этот анализ особенно важен, поскольку он может быть использован в развивающихся странах15.

qRT-PCR основан на обнаружении и количественной оценке молекулы, где увеличение флуоресцентного сигнала напрямую пропорционально количеству продукта ПЦР в одной реакции. По мере увеличения количества копий цели нуклеиновой кислоты увеличивается и флуоресценция. Неспецифические интеркалирующие красители, такие как SYBR Green DNA-binding dye или последовательность конкретных олигонуклеотидных зондов, несущих флюорофор и утоливание, обычно используются для обеспечения флуоресцентного считывания в qRT-PCR. Этот анализ предлагает преимущества по сравнению с обычными RT-PCR, которые включают в себя более короткое время испытаний (2-4 ч), снижение риска загрязнения из-за закрытой трубки системы (отсутствие пост-PCR манипуляции усиленных продуктов), а также возможность обнаружения различныхцелей одновременно 16. qRT-PCR может быть использован для диагностики бешенства до смерти от слюны и других образцов. Этот анализ также может быть использован в качестве универсального теста в режиме реального времени для обнаружения различных видов лиссавирусов или линий RABV15. В этом комбо RT-PCR подход, две реакции используются. Первый обнаруживает различные генетические линажи RABV, а второй обнаруживает виды лиссавирусов. Оба шага включают анализы qRT-PCR, где первый использует гибридизационые зонды, а второй использует красители15. Из-за большого количества тестов, которые продемонстрировали успешное молекулярное обнаружение RABV с помощью этой техники, текущее наземное руководство МЕА (2018) рекомендует использовать ПЦР для молекулярного обнаружения RABV17.

Мексика является страной со значительным потенциалом животноводства. Государства с самым высоким животноводством содержат как влажные тропические регионы, так и сухие регионы, которые находятся под угрозой вспышек бешенства из-за присутствия летучей мыши-вампира Desmodus rotundus, основного передатчика бешенства. Поэтому необходимо разработать больше инструментов для профилактики и борьбы с паралитической бешенством крупного рогатого скота (БНР) в Мехико. Основываясь на этом, целью данного исследования было использование количественных qRT-PCR для определения количества вирусных частиц в различных анатомических структурах мозга крупного рогатого скота после смерти от бешенства инфекции.

Шесть мозгов, полученных из RABV-положительных бычьих лоз, были пожертвованы внешней лабораторией для использования в разработке описанного ниже протокола qRT-PCR. Образцы структуры мозга крупного рогатого скота были холодной цепью, транспортируется в лабораторию INIFAP CENID-MA BSL-2 и хранится при -80 градусов по Цельсию до использования. Мозги были получены от животных из штатов Кампече, юкатан и Керетаро. До получения, различные структуры были вскрыты из мозга. Эти структуры включали рога Аммона, мозжечок, кору, медуллу, понс италамус 18,19. Генетический материал был извлечен, как описано ниже. Диагноз RABV был подтвержден с использованием прямых флуоресцентных антител (DFA)20. В качестве положительного контроля были использованы мозги мышей, которые были привиты RABV21. Кроме того, четыре RABV-отрицательных мозга крупного рогатого скота (как это определено DFA) были использованы в качестве отрицательного контроля.

Protocol

Это исследование было одобрено и проведено в строгом соответствии с рекомендациями по использованию животных, предоставленными Институциональным комитетом по уходу за животными и использованию (IACUC) Национального комитета по защите животных (CENID-MA). 1. Образцы Испо?…

Representative Results

Результаты DFA показали 100%, 100%, 83,3%, 66% и 50% положительность RABV в коре головного мозга, таламусе, медулле, понах и рогах соответственно. Эти результаты подтвердили предыдущие результаты, и по крайней мере три структуры, расчлененные из каждого мозга, были положительными для RABV. Представител?…

Discussion

Предыдущие исследования показали, что DFA может обнаружить RABV только в течение семи дней после того, как образец хранится при комнатной температуре (21 градус по Цельсию)14. В отличие от этого, эта работа показала, что чувствительность RT-PCR начинает снижаться после того, как обр?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Эта работа была поддержана Национальным институтом сельскохозяйственных, лесных и животноводческих исследований (INIFAP). Мы благодарим Джерзайна Фраустро Esquivel за его сотрудничество в разработке видео, связанного с этим документом.

Materials

Chloroform SIGMA C7559 Facilitates recovery of the aqueous phase of PCRs which have been overlaid with mineral oil.
DNA Clean & Concentrator-500 Zimo D4031 The DNA Clean & Concentrator-500 (DCC-500) is designed for the rapid, large format purification and concentration of up to 500 µg of high quality DNA from samples including large-scale restriction endonuclease digestions and impure DNA preparations.
Ethanol Amresco 193-500 Purification of nucleic acids
FastStart High Fidelity PCR System kit, dNTPack Roche 3553400001 High fidelity enzyme for the amplification of PCR products avoiding random base changes
GelDoc XR BioRad XR+ Analyzes larger protein and DNA gels
GelRed Biotium 41003 A new generation of nucleic acid gel stains, they possess novel chemical features designed to minimize the chance for the dyes to interact with nucleic acids in living cells.
iCycler Thermal Cycler Gradient BioRad 582BR Temperature can be monitored and controlled by instrument algorithm, in-sample probe, or sample block modes
iTaq Universal Probes One-Step Kit BioRad 1725141 Reaction mixture to carry out PCR reactions in real time using TaqMan type hybridization probes
Isopropyl alcohol Amresco 0918-500 Precipitation of nucleic acids
QIAquick gel extraction kit Qiagen 28706 QIAquick Kits contain a silica membrane assembly for binding of DNA in high-salt buffer and elution with low-salt buffer or water. The purification procedure removes primers, nucleotides, enzymes, mineral oil, salts, agarose, ethidium bromide, and other impurities from DNA samples
M-MLV Reverse Transcriptase Invitrogen 28025-021 Moloney Murine Leukemia Virus Reverse Transcriptase (M-MLV RT) uses singlestranded RNA or DNA in the presence of a primer to synthesize a complementary
DNA strand.
NanoDrop 2000 Thermo-Scientific ND2000 Microvolume Spectrophotometer
Oligo(dT)18 primer Invitrogen SO132 The oligo (dT)18 primer is a synthetic single-stranded 18-mer oligonucleotide with 5'- and 3'-hydroxyl ends.
RiboMAX Large Scale RNA Production Systems kit SP6 and T7 Promega P1300 In vitro transcription reactions are used to synthesize microgram amounts of RNA probes from recombinant DNA templates. Most transcription reactions designed to generate RNA probes are optimized to maximize incorporation of radiolabeled ribonucleotides rather than to produce large amounts of RNA
Taq DNA Polymerase Invitrogen #EP0402 Taq DNA Polymerase is a highly thermostable DNA polymerase of the thermophilic bacterium Thermus aquaticus. The enzyme catalyzes 5’ and 3’ synthesis of DNA
 
TRIzol reagent Invitrogen 15596026 The TRIzol reagent is a complete, ready-to-use reagent, designed for the isolation of high quality total RNA or the simultaneous isolation of RNA, DNA and proteins from a variety of biological samples.

References

  1. Subramaniam, M. R., Madhusudana, S. Laboratory diagnosis of human rabies: recent advances. ScientificWorld Journal. 2013 (569712), 1-10 (2013).
  2. . CDC Available from: https://www.cdc.gov/rabies/diagnosis/animals-humans.html (2019)
  3. Dean, D. J., Abelseth, M. K., Atanasiu, W., Meslin, F. X., Kaplan, M. M., Koprowski, H. The fluorescent antibody technique in rabies. Laboratory techniques in rabies. , (1996).
  4. Prabhu, K. N., et al. Application and comparative evaluation of fluorescent antibody, immunohistochemistry, and reverse transcription polymerase chain reaction tests for the detection of rabies virus antigen or nucleic acid in brain samples of animals suspected of rabies in India. Veterinary Science. 5 (1), 24 (2018).
  5. Woldehiwet, Z. Clinical laboratory advances in the detection of rabies virus. Clinica Chimica Acta. 351 (1-2), 49-63 (2005).
  6. Singh, R., et al. Rabies – epidemiology, pathogenesis, public health concerns and advances in diagnosis and control: a comprehensive review. Veterinary Quarterly. 37 (1), 212-251 (2017).
  7. David, D. Role of the RT-PCR method in ante-mortem & post-mortem rabies diagnosis. Indian Journal of Medical Research. 135 (6), 809-811 (2012).
  8. Biswal, M., Ratho, R. K., Mishra, B. Role of reverse transcriptase polymerase chain reaction for the diagnosis of human rabies. Indian Journal of Medical Research. 135, 837-842 (2012).
  9. Wacharapluesadee, S., et al. Comparative detection of rabies RNA by NASBA, real-time PCR and conventional PCR. Journal of Virological Methods. 175 (2), 278-282 (2011).
  10. Mani, R. S., et al. Utility of real-time Taqman PCR for ante mortem and post-mortem diagnosis of human rabies. Journal of Medical Virology. 86 (10), 1804-1812 (2014).
  11. Loza-Rubio, E., Rojas-Anaya, E., Banda-Ruiz, V. M., Nadin-Davis, S. A., Cortez-Garcia, B. Detection of multiple strains of rabies virus RNA using primers designed to target Mexican vampire bat variants. Epidemiology and Infection. 133 (5), 927-934 (2005).
  12. Dedkov, V. G., et al. Development and evaluation of a RT-qPCR assay for fast and sensitive rabies diagnosis. Diagnostic Microbiology and Infectious Disease. 90, 18-25 (2018).
  13. Boldbaatar, B., et al. Rapid detection of rabies virus by reverse transcription loop-mediated isothermal amplification. Japanese Journal Infectious Diseases. 62, 187-191 (2009).
  14. Rojas Anaya, E., Loza Rubio, E., Banda Ruiz, V., Hernández-Baumgarten, E. Use of reverse transcription-polymerase chain reaction to determine the stability of rabies virus genome in brains kept at room temperature. Journal of Veterinary Diagnostic Investigation. 18 (1), 98-101 (2006).
  15. Dacheux, L. Dual combined Real-Time reverse transcription polymerase chain reaction assay for the diagnosis of Lyssavirus infection. PLoS Neglected Tropical Diseases. 10 (7), 004812 (2016).
  16. Tamay De Dios, L., Ibarra, C., Velasquillo, C. Fundamentos de la reacción en cadena de la polimerasa (PCR) y de la PCR en tiempo real. Investigigación en Discapacidad. 2 (2), 70-78 (2013).
  17. Chapter 2.1.17. Rabies (infection with rabies virus and other Lyssaviruses. OIE Available from: https://www.oie.int/fileadmin/Home/eng/Health_standards/tahm/2.01.17_RABIES.p (2018)
  18. Wacharapluesadee, S., Hemchudha, T. Ante-and post-mortem diagnosis of rabies using nucleic acid-amplification tests. Expert Reviews of Molecular Diagnostics. 10 (2), 207-218 (2010).
  19. Protocol for Postmortem Diagnosis of Rabies in Animals by Direct Fluorescent Antibody Testing. CDC Available from: https://www.cdc.gov/rabies/pdf/rabiesdfaspv2.pdf (2017)
  20. Dean, D. J., Abelseth, M. K., Atanasiu, W., Meslin, F. X., Kaplan, M. M., Koprowski, H. The fluorescent antibody technique in rabies. Laboratory techniques in rabies. , (1996).
  21. Cuevas-Romero, S., Colmenares, V. G., Batalla, C. D., Hernández, B. E. Selección de un virus rábico de origen vampiro para utilizarse como cepa de desafío en bovino. Veterinaria México. 20, 271-275 (1989).
  22. Mendez-Ojeda, M. L., et al. Detection of rabies virus in organs unrelated to the central nervous system of experimentally inoculated vampire bats. Revista Méxicana de Ciencias Pecuarias. 9 (3), 435-450 (2018).
  23. Carneiro, A. J., et al. Rabies virus RNA in naturally infected vampire bats, Northeastern Brazil. Emerging Infectious Diseases. 16, 2004-2006 (2010).
  24. Beltran, F. J., Dohmen, F. G., Del Pietro, H., Cisterna, D. M. Diagnosis and molecular typing of rabies virus in samples stored in inadequate conditions. The Journal of Infection in Developing Countries. 13 (8), 1016-1021 (2018).
  25. Finke, S., Cox, J. H. Differential transcription attenuation of rabies virus genes by intergenic regions: generation of recombinant viruses overexpressing the polymerase gene. Journal of Virology. 74 (16), 7261-7269 (2000).
  26. Fooks, A. R., et al. . Rabies. 3, 1-18 (2017).
  27. Bingham, J., Van Der, M. M. Distribution of rabies antigen in infected brain material: determining the reliability of different regions of the brain for the rabies fluorescent antibody test. Journal Virological Methods. 101 (1-2), 85-94 (2002).
check_url/61429?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Rojas-Anaya, E., Anaya-Razo, D., Bárcenas-Reyes, I., Loza-Rubio, E. Quantitation of Rabies Virus in Various Bovine Brain Structures. J. Vis. Exp. (171), e61429, doi:10.3791/61429 (2021).

View Video