Summary

OP-IVM: Сочетание созревания in vitro после извлечения ооцитов с гинекологической хирургией

Published: May 09, 2021
doi:

Summary

Созревание in vitro (IVM) перед гинекологической операцией (OP-IVM) сочетает в себе IVM после извлечения ооцитов с обычной гинекологической хирургией и служит расширением обычных применений IVM для сохранения фертильности.

Abstract

Использование созревания in vitro (IVM) перед гинекологической операцией (OP-IVM) является расширением обычного IVM, которое сочетает в себе IVM после извлечения ооцитов с обычной гинекологической хирургией. OP-IVM подходит для пациентов, перенесших доброкачественную гинекологическую хирургию, у которых есть потребность в сохранении фертильности (FP) или лечении бесплодия, таком как экстракорпоральное оплодотворение и перенос эмбрионов (IVF-ET). В операционной пациентки, перенесшие доброкачественную гинекологическую операцию, сначала обезболиваются и получают ультразвуковое лечение незрелой аспирации фолликула (IMFA). При проведении последующей гинекологической операции исследуют кучевые ооцитарные комплексы (КОК), а незрелые КОК переводят в среду IVM и культивируют в течение 28-32 часов в лаборатории ЭКО. После оценки зрелые ооциты на стадии MII будут отобраны и криоконсервированы в жидком азоте для FP или оплодотворены интрацитоплазматической инъекцией сперматозоидов (ICSI) для IVF-ET. Сочетая IVM с гинекологической хирургией, незрелые ооциты, которые были бы выброшены, могут быть сохранены и использованы для вспомогательных репродуктивных технологий (ВРТ). Процедура, значимость и критические аспекты ОП-IVM описаны в данной статье.

Introduction

IVM – это АРТ, в которой человеческие незрелые ооциты культивируются in vitro до созревания для IVF-ET или FP. В IVM не используются индукционные препараты для овуляции, что уменьшает боль, финансовую нагрузку и осложнения, такие как синдром гиперстимуляции яичников (СГЯ)1,2. Кроме того, IVM особенно подходит для ФП больных раком и лечения бесплодия гормонально-чувствительных пациентов, которые могут быть не в состоянии или не иметь времени для получения индукционной терапии овуляции3. Поэтому, хотя количество извлеченных ооцитов, клиническая беременность (СЛР) и коэффициент живорождений (ЛБР) ниже, чем у ЭКО4,5,КБМ имеет свои уникальные преимущества.

Бесплодные пациенты с поражениями эндометрия, гидросальпинксом или кистами яичников обычно проходят гинекологическую операцию перед лечением АРТ, и их ооциты обычно незрелые. OP-IVM использует управляемое трансвагинальное ультразвуковое исследование для извлечения незрелых ооцитов и выращивания их in vitro до созревания для IVF-ET или FP. OP-IVM сочетает IVM после извлечения ооцитов и гинекологической хирургии, тем самым уменьшая осложнения, которые распространены в контролируемых циклах гиперстимуляции яичников и экономя время и деньги. Для фертильных пациентов OP-IVM может служить «страхованием фертильности» при прохождении обычной гинекологической хирургии.

Кроме того, повреждения, вызванные гинекологическими операциями, такими как электрокоагрия6,7 и резекция опухоли яичника, могут быть уменьшены путем извлечения ооцитов перед гинекологической операцией. Поэтому, по сравнению с обычной гинекологической хирургией, ОП-IVM может уменьшить количество операций во время лечения бесплодия и предотвратить потерю функциональных ооцитов во время операции на яичниках.

Предыдущее исследование показало, что дополнительная процедура извлечения ооцитов не увеличит хирургические осложнения и неблагоприятные исходы беременности, а также не продлит пребывание в больнице8. Некоторые пациентки давали живорождение через ОП-IVM8,что указывает на целесообразность применения данного метода. В этой статье описываются характеристики пациентов, которые могут извлечь выгоду из OP-IVM, а также процедуры и критические точки OP-IVM и обсуждается оценка зрелости ооцитов человека.

Protocol

ПРИМЕЧАНИЕ: Исследования, связанные с методом OP-IVM, были одобрены институциональным наблюдательным советом (IRB) Третьей больницы Пекинского университета и Комитетом по этике Пекинского университета (2014S2004). Сводка OP-IVM показана на рисунке 1. Пошаговая процедура будет пред…

Representative Results

До декабря 2019 года ОП-IVM использовался для сохранения фертильности 274 пациенток. Эмбриологические и репродуктивные результаты 158 пациентов в период с 2014 по 2016 год были опубликованы в предыдущей статье8. В следующем примере обсуждается процедура, соблюдаем?…

Discussion

Метод OP-IVM, описанный в этой статье, распространяется на обычные применения IVM и сочетает в себе IVM после извлечения ооцитов с обычной гинекологической хирургией. Ооциты, которые были бы потеряны в гинекологической хирургии, теперь могут быть использованы для ЭКО-ЭТ или ФП без дополнител…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Эта работа была поддержана грантами Китайской национальной ключевой программы исследований и разработок (No 2017YFC1002000, 2018YFC1004001, 2019YFA0801400), Национального научного фонда Китая (No 81571386, 81730038), Инновационного фонда медицинских наук CAMS (2019-I2M-5-001) и Специального исследовательского проекта развития здоровья китайского капитала (2018-2-4095).

Materials

19 G single-lumen aspiration needles Cook, Australia K-OPS-7035-REH-ET
4-well plate Corning
70 μm nylon cell strainer Falcon, USA 352350
CO2 Incubator Thermo
Culture oil Vitrolife, Sweden 10029,OVOIL  Step 3.2.
FSH & LH Ferring Reproductive Health, Germany MENOPUR®
Glass Pasteur pipette Hilgenberg GmbH, Germany 3154102-26
G-MOPS medium pH-stable handling medium for washing the needle before puncturing
IVM medium Origio, Denmark ART-1600-B
Laminar Flow Clean Benches ESCO
Petri dish Thermo Fisher Scientific, Denmark 263991
pH stable handing media designed to support the handling and manipulation of oocytes and embryos outside the incubator Vitrolife, Sweden 10130, G-MOPS PLUS Step 7.1.
Rinse solution Cook, Australia K-SIFB-100
Stereoscope Nikon

References

  1. Ho, V. N. A., Braam, S. C., Pham, T. D., Mol, B. W., Vuong, L. N. The effectiveness and safety of in vitro maturation of oocytes versus in vitro fertilization in women with a high antral follicle count. Human Reproduction. 34 (6), 1055-1064 (2019).
  2. Yang, Z. Y., Chian, R. C. Development of in vitro maturation techniques for clinical applications. Fertility and Sterility. 108 (4), 577-584 (2017).
  3. Hatirnaz, S., et al. Oocyte in vitro maturation: A sytematic review. Turkish Journal of Obstetrics and Gynecology. 15 (2), 112-125 (2018).
  4. Gremeau, A. S., et al. In vitro maturation or in vitro fertilization for women with polycystic ovaries? A case-control study of 194 treatment cycles. Fertility and Sterility. 98 (2), 355-360 (2012).
  5. Ho, V. N. A., Braam, S. C., Pham, T. D., Mol, B. W., Vuong, L. N. The effectiveness and safety of in vitro maturation of oocytes versus in vitro fertilization in women with a high antral follicle count. Human Reproduction. 34 (6), 1055-1064 (2019).
  6. Sahin, C., et al. Which should be the preferred technique during laparoscopic ovarian cystectomy. Reproductive Sciences. 24 (3), 393-399 (2017).
  7. Xiao, J., et al. Impact of hemostatic methods on ovarian reserve and fertility in laparoscopic ovarian cystectomy. Experimental and Therapeutic. 17 (4), 2689-2693 (2019).
  8. Song, X. -. L., et al. Enhancing the scope of in vitro maturation for fertility preservation: transvaginal retrieval of immature oocytes during endoscopic gynaecological procedures. Human Reproduction. 35 (4), 837-846 (2020).
  9. Magnusson, &. #. 1. 9. 7. ;., Källen, K., Thurin-Kjellberg, A., Bergh, C. The number of oocytes retrieved during IVF: a balance between efficacy and safety. Human Reproduction. 33 (1), 58-64 (2018).
  10. Larose, H., et al., Wellik, D. M., et al. Gametogenesis: A journey from inception to conception. Current Topics in Developmental Biology. 132, 257-310 (2019).
  11. Broer, S. L., Broekmans, F. J. M., Laven, J. S. E., Fauser, B. C. J. M. Anti-Müllerian hormone: ovarian reserve testing and its potential clinical implications. Human Reproduction Update. 20 (5), 688-701 (2014).
  12. Arce, J. C., La Marca, A., Mirner Klein, B., Nyboe Andersen, A., Fleming, R. Antimüllerian hormone in gonadotropin releasing-hormone antagonist cycles: prediction of ovarian response and cumulative treatment outcome in good-prognosis patients. Fertility and Sterility. 99 (6), 1644-1653 (2013).
  13. Katayama, K. P., et al. Ultrasound-guided transvaginal needle aspiration of follicles for in vitro fertilization. Obstetrics and Gynecology. 72 (2), 271-274 (1988).
  14. Dellenbach, P., et al. Transvaginal sonographically controlled follicle puncture for oocyte retrieval. Fertility and Sterility. 44 (5), 656-662 (1985).
  15. Hirata, T., et al. Concomitant ovarian drilling and oocyte retrieval by laparoendoscopic single-site surgery led to live birth using in vitro maturation of oocyte and transfer of frozen-thawed blastocyst in woman with polycystic ovary syndrome. Journal of Obstetrics and Gynaecology Research. 40 (5), 1431-1435 (2014).
  16. Deutinger, J., et al. Follicular aspiration for in vitro fertilization: sonographically guided transvaginal versus laparoscopic approach. European Journal of Obstetrics, Gynecology, and Reproductive Biology. 26 (2), 127-133 (1987).
  17. Tanbo, T., Henriksen, T., Magnus, O., Abyholm, T. Oocyte retrieval in an IVF program. A comparison of laparoscopic and transvaginal ultrasound-guided follicular puncture. Acta Obstetricia et Gynecologica Scandinavica. 67 (3), 243-246 (1988).
  18. Nagy, Z. P., et al. Pregnancy and birth after intracytoplasmic sperm injection of in vitro matured germinal-vesicle stage oocytes: case report. Fertility and Sterility. 65 (5), 1047-1050 (1996).
  19. Söderström-Anttila, V., Mäkinen, S., Tuuri, T., Suikkari, A. -. M. Favourable pregnancy results with insemination of in vitro matured oocytes from unstimulated patients. Human Reproduction. 20 (6), 1534-1540 (2005).
  20. Hwang, J. L., Lin, Y. H., Tsai, Y. L. In vitro maturation and fertilization of immature oocytes: a comparative study of fertilization techniques. Journal of Assisted Reproduction and Genetics. 17 (1), 39-43 (2000).
  21. Walls, M., Junk, S., Ryan, J. P., Hart, R. IVF versus ICSI for the fertilization of in-vitro matured human oocytes. Reproductive Biomedicine Online. 25 (6), 603-607 (2012).
  22. Park, J. H., Jee, B. C., Kim, S. H. Comparison of normal and abnormal fertilization of in vitro-matured human oocyte according to insemination method. Journal of Obstetrics and Gynaecology Research. 42 (4), 417-421 (2016).
  23. Ho, V. N. A., Pham, T. D., Le, A. H., Ho, T. M., Vuong, L. N. Live birth rate after human chorionic gonadotropin priming in vitro maturation in women with polycystic ovary syndrome. Journal of Ovarian Research. 11 (1), 70 (2018).
  24. Zheng, X., et al. Effect of hCG priming on embryonic development of immature oocytes collected from unstimulated women with polycystic ovarian syndrome. Reproductive Biology and Endocrinology. 10, 40 (2012).
  25. Tannus, S., et al. Predictive factors for live birth after in vitro maturation of oocytes in women with polycystic ovary syndrome. Archives of Gynecology and Obstetrics. 297 (1), 199-204 (2018).
  26. Cohen, Y., et al. Decreased pregnancy and live birth rates after vitrification of in vitro matured oocytes. Journal of Assisted Reproduction and Genetics. 35 (9), 1683-1689 (2018).
  27. Yazdanpanah, F., Khalili, M. A., Eftekhar, M., Karimi, H. The effect of vitrification on maturation and viability capacities of immature human oocytes. Archives of Gynecology and Obstetrics. 288 (2), 439-444 (2013).
check_url/61647?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Liu, T., Song, X., Zheng, X., Yan, L., Ma, C., Li, R., Yan, J., Qiao, J. OP-IVM: Combining In vitro Maturation after Oocyte Retrieval with Gynecological Surgery. J. Vis. Exp. (171), e61647, doi:10.3791/61647 (2021).

View Video