Summary

Intravitreal injektion og kvantisering af infektionsparametre i en musemodel af bakteriel endophthalmitis

Published: February 06, 2021
doi:

Summary

Vi beskriver her en metode til intravitreal injektion og efterfølgende bakteriel kvælning i musemodel af bakteriel endophthalmitis. Denne protokol kan udvides til måling af værtens immunrespons og bakterielle og værtsgenetielle udtryk.

Abstract

Intraokulære bakterielle infektioner er en fare for synet. Forskere bruger dyremodeller til at undersøge værten og bakterielle faktorer og immunrespons veje forbundet med infektion til at identificere levedygtige terapeutiske mål og til at teste lægemidler til at forebygge blindhed. Den intravitreal injektion teknik bruges til at injicere organismer, narkotika, eller andre stoffer direkte ind i glaslegemen i den bageste del af øjet. Her demonstrerede vi denne injektionsteknik for at starte infektion i museøjet og teknikken med kvantificering af intraokulære bakterier. Bacillus cereus blev dyrket i hjernens hjerteinfusion flydende medier i 18 timer og resuspenderet til en koncentration 100 kolonidannende enheder (CFU)/0,5 μL. En C57BL/6J mus blev bedøvet ved hjælp af en kombination af ketamin og xylazin. Ved hjælp af en picoliter mikroinjektor og glas kapillær nåle, 0,5 μL af Bacillus suspension blev injiceret i midten glaslegeme af museøjet. Det kontralaterale kontroløje blev enten injiceret med sterile medier (kirurgisk kontrol) eller blev ikke injiceret (absolut kontrol). Efter 10 timer efter infektion blev mus aflivet, og øjnene blev høstet ved hjælp af sterile kirurgiske pincet og placeret i et rør, der indeholder 400 μL steril PBS og 1 mm sterile glasperler. For ELISAs eller myeloperoxidase assays, proteinase hæmmer blev tilsat til rørene. Til RNA-ekstraktion blev den relevante lysisbuffer tilsat. Øjnene blev homogeniseret i en vævshomogenisator i 1-2 minutter. Homogenater blev seriefortyndet 10 gange i PBS og spor fortyndet på agar plader. Resten af homogenaterne blev opbevaret ved -80 °C for yderligere analyser. Pladerne blev inkuberet i 24 timer, og CFU pr. øje blev kvantificeret. Disse teknikker resulterer i reproducerbare infektioner i museøjne og lette kvantiteten af levedygtige bakterier, værten immunrespons, og omics af vært og bakteriel genekspression.

Introduction

Bakteriel endophthalmitis er en ødelæggende infektion, der forårsager betændelse, og, hvis de ikke behandles ordentligt, kan resultere i tab af syn eller blindhed. Endophthalmitis skyldes, at bakterierne kommer ind i det indre af øjet1,2,3,4,5. Når i øjet, bakterier replikere, producere toksiner og andre skadelige faktorer, og kan forårsage uoprettelige skader på sarte retinale celler og væv. Øjenskader kan også være forårsaget af betændelse, på grund af aktivering af inflammatoriske veje, der fører til inflammatoriskcelletilstrømning i det indreaføjet1,5,6. Endophthalmitis kan forekomme efter intraokulært kirurgi (postoperativ), en gennemtrængende skade på øjet (posttraumatisk), eller fra metastatisk spredning af bakterier i øjet fra et andet anatomisk sted (endogen)7,8,9,10. Behandlinger for bakteriel endophthalmitis omfatter antibiotika, anti-inflammatoriske lægemidler, eller kirurgisk indgreb3,4,11. Selv med disse behandlinger, vision eller øjet selv kan gå tabt. Den visuelle prognose efter bakteriel endophthalmitis varierer generelt afhængigt af behandlingseffektiviteten, den visuelle skarphed ved præsentationen og den inficerende organismes virulens.

Bacillus cereus (B. cereus) er en af de vigtigste bakterielle patogener, der forårsager post-traumatisk endophthalmitis7,12. Et flertal af B. cereus endophthalmitis tilfælde har en hurtig kurs, hvilket kan resultere i blindhed inden for et par dage. Kendetegnende for B. cereus endophthalmitis omfatter hurtigt udvikler intraokulært inflammation, øjensmerter, hurtigt tab af synsstyrke, og feber. B. cereus vokser hurtigt i øjet i forhold til andrebakterier,som almindeligvis forårsager øjeninfektioner2,4,12 og besidder mange virulensfaktorer. Derfor er vinduet for vellykket terapeutisk interventionrelativt kort 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19, 20, 21, 22, 23, 24, 25. Behandlinger for denne infektion er normalt en succes i behandling af endophthalmitis forårsaget af andre mindre virulente patogener, men B. cereus endophthalmitis almindeligvis resulterer i større end 70% af patienter, der lider af betydelige synstab. Omkring 50% af disse patienter gennemgår udtagning eller enucleation af det inficerede øje7,16,22,23. Den destruktive og hurtige karakter af B. cereus endophthalmitis kræver øjeblikkelig og korrekt behandling. De seneste fremskridt med hensyn til at skelne de underliggende mekanismer for sygdomsudvikling har identificeret potentielle mål for intervention19,26,27. Eksperimentelle musemodeller af B. cereus endophthalmitis fortsat være nyttige i at skelne mekanismerne for infektion og test potentielle terapeutiske, der kan forhindre synstab.

Eksperimentel intraokulært infektion af mus med B. cereus har været en instrumental model for forståelse af bakterielle og værtsfaktorer, samt deres interaktioner, under endophthalmitis28. Denne model efterligner en post-traumatisk eller post-operative begivenhed, hvor bakterier indføres i øjet under en skade. Denne model er meget reproducerbar og har været nyttig til afprøvning af eksperimentelle behandlingsformer og tilvejebringelse af data til forbedringer i standarden for pleje1,6,19,29,30. Ligesom mange andre infektion modeller, denne model giver mulighed for uafhængig kontrol af mange parametre for infektion og muliggør en effektiv og reproducerbar undersøgelse af infektion resultater. Undersøgelser i en lignende model hos kaniner i de seneste årtier har undersøgt virkningerne af B. cereus virulensfaktorer iøjet 2,4,13,14,31. Ved at indsprøjte B. cereus mutant stammer mangler individuelle eller flere virlensfaktorer, kan bidraget af disse virulensfaktorer til sygdommens sværhedsgrad måles ved resultater såsom koncentration af bakterier ved forskellige tidspunkter efter infektion eller tab af visuel funktion13,14,27,31,32. Desuden er værtsfaktorer blevet undersøgt i denne model ved at inficere knockout musestammer, der mangler specifikke inflammatoriske værtsfaktorer26,29,33,34,35. Modellen er også nyttig til at teste potentielle behandlinger for denne sygdom ved at indsprøjte nye forbindelser i øjet efter infektion30,36. I dette manuskript beskriver vi en detaljeret protokol, som omfatter at inficere et museøje med B. cereus,høste øjet efter infektion, kvantificere intraokulært bakteriebelastning og bevare prøver for at analysere yderligere parametre for sygdommens sværhedsgrad.

Protocol

Alle procedurer blev udført efter anbefalingerne i vejledningen for pleje og brug af laboratoriedyr og Association for Research in Vision og Oftalmology Statement for the Use of Animals in Oftalmmic and Vision Research. Protokollerne blev godkendt af Den Institutionelle Animal Care and Use Committee ved University of Oklahoma Health Sciences Center (protokol numre 15-103, 18-043, og 18-087). 1. Sterile glasnåle Tænd for nålepipettetrækeren. Juster <str…

Representative Results

Generering af en reproducerbar inokulum og nøjagtigheden af den intravitreale injektion procedure er vigtige trin i udviklingen af modeller af mikrobiel endophthalmitis. Her viste vi den intravitreale injektionsprocedure ved hjælp af Gram-positiv Bacillus cereus. Vi injicerede 100 CFU/0,5 μL B. cereus i midten af glaslege udglasset med fem C57BL6-mus. Efter 10 timer efter infektion observerede vi intraokulært vækst af B. cereus til ca. 1,8 x 105 CFU/eye. Fig…

Discussion

Selv med tilgængeligheden af potente antibiotika, anti-inflammatoriske lægemidler, og vitektomi kirurgi, bakteriel endophthalmitis kan blinde en patient. Kliniske undersøgelser har været nyttige i at studere endophthalmitis; imidlertid giver eksperimentelle modeller af endophthalmitis hurtige og reproducerbare resultater, der kan oversættes til fremskridt inden for behandlingsstandard, hvilket resulterer i bedre visuelt resultat for patienterne.

Museøjets glasagtige volumen er ca. 7 μL<…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne takker Dr. Feng Li og Mark Dittmar (OUHSC P30 Live Animal Imaging Core, Dean A. McGee Eye Institute, Oklahoma City, OK, USA) for deres hjælp. Vores forskning er blevet støttet af National Institutes of Health tilskud R01EY028810, R01EY028066, R01EY025947, og R01EY024140. Vores forskning er også blevet støttet af P30EY21725 (NIH CORE tilskud til Live Animal Imaging and Analysis, Molekylær biologi, og Cellular Imaging). Vores forskning er også blevet støttet af NEI Vision Science Pre-ph.d.-trainee program 5T32EY023202, en Presbyterian Health Foundation Research Support tilskud, og en ubegrænset tilskud til Dean A. McGee Eye Institute fra Forskning for at forebygge blindhed.

Materials

2-20 µL pipette RANIN L0696003G NA
37oC Incubator Fisher Scientific 11-690-625D NA
Bacto Brain Heart Infusion BD 90003-032 NA
Cell Microinjector MicroData Instrument, Inc. PM2000 NA
Fine tip forceps Thermo Fisher Scientific 12-000-122 NA
Glass beads 1.0 mm BioSpec 11079110 NA
Incubator Shaker New Brunswick Scientific NB-I2400 NA
Microcapillary Pipets 5 Microliters Kimble 71900-5 NA
Micro-Pipette Beveler Sutter Instrument Co. BV-10 NA
Microscope Axiostar Plus Zeiss NA
Microscope OPMI Lumera Zeiss NA
Mini-Beadbeater-16 BioSpec Model 607 NA
Multichannel pipette 30-300 µL Biohit 15626090 NA
Multichannel pipette 5-100 µL Biohit 9143724 NA
Needle/Pipette Puller Kopf 730 NA
PBS GIBCO 1897315 Molecular grade
Protease Inhibitor Cocktail Roche 4693159001 Molecular grade
Reverse action forceps Katena K5-8228 NA

References

  1. Ramadan, R. T., Ramirez, R., Novosad, B. D., Callegan, M. C. Acute inflammation and loss of retinal architecture and function during experimental Bacillus endophthalmitis. Current Eye Research. 31 (11), 955-965 (2006).
  2. Callegan, M. C., Booth, M. C., Jett, B. D., Gilmore, M. S. Pathogenesis of gram-positive bacterial endophthalmitis. Infection and Immunity. 67 (7), 3348-3356 (1999).
  3. Durand, M. L. Bacterial and Fungal Endophthalmitis. Clinical Microbiology Reviews. 30 (3), 597-613 (2017).
  4. Callegan, M. C., Engelbert, M., Parke, D. W., Jett, B. D., Gilmore, M. S. Bacterial endophthalmitis: Epidemiology, therapeutics, and bacterium-host interactions. Clinical Microbiology Reviews. 15 (1), 111-124 (2002).
  5. Livingston, E. T., Mursalin, M. H., Callegan, M. C. A Pyrrhic Victory: The PMN Response to Ocular Bacterial Infections. Microorganisms. 7 (11), 537 (2019).
  6. Ramadan, R. T., Moyer, A. L., Callegan, M. C. A role for tumor necrosis factor-alpha in experimental Bacillus cereus endophthalmitis pathogenesis. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 49 (10), 4482-4489 (2008).
  7. Davey, R. T., Tauber, W. B. Posttraumatic endophthalmitis: The emerging role of Bacillus cereus infection. Reviews of Infectious Dissease. 9 (1), 110-123 (1987).
  8. Ramappa, M., et al. An outbreak of acute post-cataract surgery Pseudomonas sp. endophthalmitis caused by contaminated hydrophilic intraocular lens solution. Ophthalmology. 119 (3), 564-570 (2012).
  9. Coburn, P. S., et al. Bloodstream-To-Eye Infections Are Facilitated by Outer Blood-Retinal Barrier Dysfunction. PLoS One. 11 (5), 015560 (2016).
  10. Ness, T., Pelz, K., Hansen, L. L. Endogenous endophthalmitis: Microorganisms, disposition and prognosis. Acta Ophthalmologica Scandinavica. 85 (8), 852-856 (2007).
  11. Novosad, B. D., Callegan, M. C. Severe bacterial endophthalmitis: Towards improving clinical outcomes. Expert Review of Ophthalmology. 5 (5), 689-698 (2010).
  12. Mursalin, M. H., Livingston, E. T., Callegan, M. C. The cereus matter of Bacillus endophthalmitis. Experimental Eye Research. 193, 107959 (2020).
  13. Callegan, M. C., et al. Relationship of plcR-regulated factors to Bacillus endophthalmitis virulence. Infection and Immunity. 71 (6), 3116-3124 (2003).
  14. Beecher, D. J., Pulido, J. S., Barney, N. P., Wong, A. C. Extracellular virulence factors in Bacillus cereus endophthalmitis: Methods and implication of involvement of hemolysin BL. Infection and Immunity. 63 (2), 632-639 (1995).
  15. Callegan, M. C., et al. Contribution of membrane-damaging toxins to Bacillus endophthalmitis pathogenesis. Infection and Immunity. 70 (10), 5381-5389 (2002).
  16. Cowan, C. L., Madden, W. M., Hatem, G. F., Merritt, J. C. Endogenous Bacillus cereus panophthalmitis. Annals of Ophthalmology. 19 (2), 65-68 (1987).
  17. Callegan, M. C., et al. Virulence factor profiles and antimicrobial susceptibilities of ocular Bacillus isolates. Current Eye Research. 31 (9), 693-702 (2006).
  18. Callegan, M. C., et al. Bacillus endophthalmitis: Roles of bacterial toxins and motility during infection. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 46 (9), 3233-3238 (2005).
  19. Mursalin, M. H. Bacillus S-layer-mediated innate interactions during endophthalmitis. Frontiers in Immunology. 11 (215), (2020).
  20. Moyer, A. L., Ramadan, R. T., Novosad, B. D., Astley, R., Callegan, M. C. Bacillus cereus-induced permeability of the blood-ocular barrier during experimental endophthalmitis. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 50 (8), 3783-3793 (2009).
  21. Callegan, M. C., et al. Efficacy of vitrectomy in improving the outcome of Bacillus cereus endophthalmitis. Retina. 31 (8), 1518-1524 (2011).
  22. David, D. B., Kirkby, G. R., Noble, B. A. Bacillus cereus endophthalmitis. British Journal of Ophthalmology. 78 (7), 577-580 (1994).
  23. Vahey, J. B., Flynn, H. W. Results in the management of Bacillus endophthalmitis. Ophthalmic Surgery. 22 (11), 681-686 (1991).
  24. Wiskur, B. J., Robinson, M. L., Farrand, A. J., Novosad, B. D., Callegan, M. C. Toward improving therapeutic regimens for Bacillus endophthalmitis. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 49 (4), 1480-1487 (2008).
  25. Alfaro, D. V., et al. Experimental Bacillus cereus post-traumatic endophthalmitis and treatment with ciprofloxacin. British Journal of Ophthalmology. 80 (8), 755-758 (1996).
  26. Coburn, P. S., et al. TLR4 modulates inflammatory gene targets in the retina during Bacillus cereus endophthalmitis. BMC Ophthalmology. 18 (1), 96 (2018).
  27. Mursalin, M. H., et al. S-layer Impacts the Virulence of Bacillus in Endophthalmitis. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 60 (12), 3727-3739 (2019).
  28. Astley, R. A., Coburn, P. S., Parkunan, S. M., Callegan, M. C. Modeling intraocular bacterial infections. Progress in Retinal and Eye Research. 54, 30-48 (2016).
  29. Parkunan, S. M., et al. CXCL1, but not IL-6, significantly impacts intraocular inflammation during infection. Journal of Leukocyte Biology. 100 (5), 1125-1134 (2016).
  30. LaGrow, A. L., et al. A Novel Biomimetic Nanosponge Protects the Retina from the Enterococcus faecalis Cytolysin. mSphere. 2 (6), 00335 (2017).
  31. Beecher, D. J., Olsen, T. W., Somers, E. B., Wong, A. C. Evidence for contribution of tripartite hemolysin BL, phosphatidylcholine-preferring phospholipase C, and collagenase to virulence of Bacillus cereus endophthalmitis. Infection and Immunity. 68 (9), 5269-5276 (2000).
  32. Callegan, M. C., et al. The role of pili in Bacillus cereus intraocular infection. Experimental Eye Research. 159, 69-76 (2017).
  33. Miller, F. C., et al. Targets of immunomodulation in bacterial endophthalmitis. Progress in Retinal and Eye Research. 73, 100763 (2019).
  34. Parkunan, S. M., Astley, R., Callegan, M. C. Role of TLR5 and flagella in Bacillus intraocular infection. PLoS One. 9 (6), 100543 (2014).
  35. Parkunan, S. M., et al. Unexpected roles for Toll-Like receptor 4 and TRIF in intraocular infection with Gram-positive bacteria. Infection and Immunity. 83 (10), 3926-3936 (2015).
  36. Coburn, P. S., et al. Disarming Pore-Forming Toxins with Biomimetic Nanosponges in Intraocular Infections. mSphere. 4 (3), 00262-00319 (2019).
  37. LaGrow, A., et al. Biomimetic nanosponges augment gatifloxacin in reducing retinal damage during experimental MRSA endophthalmitis. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 60 (9), 4632 (2019).
  38. Novosad, B. D., Astley, R. A., Callegan, M. C. Role of Toll-like receptor (TLR) 2 in experimental Bacillus cereus endophthalmitis. PLoS One. 6 (12), 28619 (2011).
  39. Jett, B. D., Hatter, K. L., Huycke, M. M., Gilmore, M. S. Simplified agar plate method for quantifying viable bacteria. Biotechniques. 23 (4), 648-650 (1997).
  40. Yu, D. Y., Cringle, S. J. Oxygen distribution in the mouse retina. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 47 (3), 1109-1112 (2006).
  41. Beyer, T. L., O’Donnell, F. E., Goncalves, V., Singh, R. Role of the posterior capsule in the prevention of postoperative bacterial endophthalmitis: experimental primate studies and clinical implications. British Journal of Ophthalmology. 69 (11), 841-846 (1985).
  42. Tucker, D. N., Forster, R. K. Experimental bacterial endophthalmitis. Archives of Ophthalmology. 88 (6), 647-649 (1972).
  43. Alfaro, D. V., et al. Experimental pseudomonal posttraumatic endophthalmitis in a swine model. Treatment with ceftazidime, amikacin, and imipenem. Retina. 17 (2), 139-145 (1997).
  44. Silverstein, A. M., Zimmerman, L. E. Immunogenic endophthalmitis produced in the guinea pig by different pathogenetic mechanisms. American Journal of Ophthalmology. 48 (5), 435-447 (1959).
  45. Ravindranath, R. M., Hasan, S. A., Mondino, B. J. Immunopathologic features of Staphylococcus epidermidis-induced endophthalmitis in the rat. Current Eye Research. 16 (10), 1036-1043 (1997).
  46. Kumar, A., Singh, C. N., Glybina, I. V., Mahmoud, T. H., Yu, F. S. Toll-like receptor 2 ligand-induced protection against bacterial endophthalmitis. The Journal of Infectious Diseases. 201 (2), 255-263 (2010).
  47. Mylonakis, E., et al. The Enterococcus faecalis fsrB gene, a key component of the fsr quorum-sensing system, is associated with virulence in the rabbit endophthalmitis model. Infection and Immunity. 70 (8), 4678-4681 (2002).
  48. Sanders, M. E., et al. The Streptococcus pneumoniae capsule is required for full virulence in pneumococcal endophthalmitis. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 52 (2), 865-872 (2011).
  49. Hunt, J. J., Astley, R., Wheatley, N., Wang, J. T., Callegan, M. C. TLR4 contributes to the host response to Klebsiella intraocular infection. Current Eye Research. 39 (8), 790-802 (2014).
check_url/61749?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Mursalin, M. H., Livingston, E., Coburn, P. S., Miller, F. C., Astley, R., Callegan, M. C. Intravitreal Injection and Quantitation of Infection Parameters in a Mouse Model of Bacterial Endophthalmitis. J. Vis. Exp. (168), e61749, doi:10.3791/61749 (2021).

View Video