Summary

Intravitreal injeksjon og mengde infeksjon parametere i en musemodell av bakteriell endoftalmitt

Published: February 06, 2021
doi:

Summary

Vi beskriver her en metode for intravitreal injeksjon og påfølgende bakteriell kvantitet i musemodell av bakteriell endoftalmitt. Denne protokollen kan utvides for måling av vertens immunresponser og bakterielle og vertsgenuttrykk.

Abstract

Intraokulære bakterielle infeksjoner er en fare for synet. Forskere bruker dyremodeller for å undersøke verten og bakterielle faktorer og immunresponsveier forbundet med infeksjon for å identifisere levedyktige terapeutiske mål og for å teste legemidler for å forhindre blindhet. Den intravitreale injeksjonsteknikken brukes til å injisere organismer, legemidler eller andre stoffer direkte inn i glasslegemet i det bakre segmentet av øyet. Her demonstrerte vi denne injeksjonsteknikken for å initiere infeksjon i museøyet og teknikken for å kvantifisere intraokulære bakterier. Bacillus cereus ble dyrket i hjernen hjerte infusjon flytende media i 18 timer og resuspended til en konsentrasjon 100 koloni forming enheter (CFU) / 0,5 μL. En C57BL/6J-mus ble bedøvet ved hjelp av en kombinasjon av ketamin og xylazin. Ved hjelp av en picoliter mikroinjektor og glasskapillære nåler, ble 0,5 μL av Bacillus suspensjon injisert i midten glasslegemet av museøyet. Det kontralaterale kontrolløyet ble enten injisert med sterilt medium (kirurgisk kontroll) eller ble ikke injisert (absolutt kontroll). Ved 10 timer etter infeksjon ble mus eutanisert, og øynene ble høstet ved hjelp av sterile kirurgiske pinsett og plassert i et rør som inneholder 400 μL sterile PBS og 1 mm sterile glassperler. For ELISAs eller myeloperoxidaseanalyser ble proteinasehemmer tilsatt i rørene. For RNA-ekstraksjon ble den aktuelle lysisbufferen lagt til. Øynene ble homogenisert i en vev homogenisator i 1-2 minutter. Homogenater ble serielt fortynnet 10 ganger i PBS og spor fortynnet på agarplater. Resten av homogenatene ble lagret ved -80 °C for ytterligere analyser. Platene ble inkubert i 24 timer og CFU per øye ble kvantifisert. Disse teknikkene resulterer i reproduserbare infeksjoner i museøynene og letter kvantitet av levedyktige bakterier, vertens immunrespons og omics av vert og bakteriell genuttrykk.

Introduction

Bakteriell endoftalmitt er en ødeleggende infeksjon som forårsaker betennelse, og hvis den ikke behandles riktig, kan det føre til tap av syn eller blindhet. Endoftalmitt skyldes inntreden av bakterier i det indre av øyet1,2,3,4,5. En gang i øyet, bakterier replikere, produsere giftstoffer og andre skadelige faktorer, og kan forårsake irreversible skader på delikate retinale celler og vev. Okulær skade kan også skyldes betennelse, på grunn av aktivering av inflammatoriske veier som fører til inflammatorisk celletilstrømning til det indre av øyet1,5,6. Endoftalmitt kan oppstå etter intraokulær kirurgi (postoperativ), en gjennomtrengende skade på øyet (posttraumatisk), eller fra metastatisk spredning av bakterier inn i øyet fra et annet anatomisk sted (endogene)7,8,9,10. Behandlinger for bakteriell endoftalmitt inkluderer antibiotika, antiinflammatoriske legemidler eller kirurgisk inngrep3,4,11. Selv med disse behandlingene kan synet eller øyet i seg selv gå tapt. Den visuelle prognosen etter bakteriell endoftalmitt varierer vanligvis avhengig av behandlingseffektiviteten, synsskarpheten ved presentasjon og virulens av den smittende organismen.

Bacillus cereus (B. cereus) er en av de store bakterielle patogener som forårsaker posttraumatisk endoftalmitt7,12. Et flertall av B. cereus endoftalmitt tilfeller har en rask kurs, noe som kan resultere i blindhet innen få dager. Kjennetegnene på B. cereus endoftalmitt inkluderer raskt utviklende intraokulær betennelse, øyesmerter, raskt tap av synsskarphet og feber. B. cereus vokser raskt i øyet sammenlignet med andre bakterier som vanligvis forårsakerøyeinfeksjoner 2,4,12 og har mange virulensfaktorer. Derfor er vinduet for vellykket terapeutisk intervensjon relativt kort1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19, 20, 21, 22, 23, 24, 25. Behandlinger for denne infeksjonen er vanligvis vellykket i behandling av endoftalmitt forårsaket av andre mindre virulent patogener, men B. cereus endoftalmitt resulterer vanligvis i større enn 70% av pasientene som lider av betydelig synstap. Omtrent 50% av disse pasientene gjennomgår evisceration eller enucleation av det infiserteøyet 7,16,22,23. Den destruktive og raske naturen til B. cereus endoftalmitt krever umiddelbar og riktig behandling. Nylig fremgang i å skjelne de underliggende mekanismene for sykdomsutvikling har identifisert potensielle mål for intervensjon19,26,27. Eksperimentelle musemodeller av B. cereus endoftalmitt fortsetter å være nyttige for å skjelne mekanismene for infeksjon og teste potensielle terapeutiske midler som kan forhindre synstap.

Eksperimentell intraokulær infeksjon av mus med B. cereus har vært en instrumentell modell for å forstå bakterielle og vertsfaktorer, samt deres interaksjoner, under endoftalmitt28. Denne modellen etterligner en posttraumatisk eller postoperativ hendelse, der bakterier blir introdusert i øyet under en skade. Denne modellen er svært reproduserbar og har vært nyttig for testing av eksperimentelle terapier og gi data for forbedringer i standard foromsorg 1,6,19,29,30. Som mange andre infeksjonsmodeller gir denne modellen mulighet for uavhengig kontroll av mange infeksjonsparametere og muliggjør effektiv og reproduserbar undersøkelse av infeksjonsutfall. Studier i en lignende modell hos kaniner de siste tiårene har undersøkt effekten av B. cereus virulens faktorer i øyet2,4,13,14,31. Ved å injisere B. cereus muterte stammer som mangler individuelle eller flere virulensfaktorer, kan bidraget fra disse virulensfaktorene til sykdomsalvorlighetsgrad måles ved utfall som konsentrasjon av bakterier på forskjellige timer etter infection eller tap av visuellfunksjon 13,14,27,31,32. I tillegg har vertsfaktorer blitt undersøkt i denne modellen ved å infisere knockout-musstammer som mangler spesifikke inflammatoriskevertsfaktorer 26,29,33,34,35. Modellen er også nyttig for å teste potensielle behandlinger for denne sykdommen ved å injisere nye forbindelser i øyet etter infeksjon30,36. I dette manuskriptet beskriver vi en detaljert protokoll som inkluderer å infisere et museøye med B. cereus, høste øyet etter infeksjon, kvantifisere intraokulær bakteriell belastning og bevare prøver for å analysere ytterligere parametere for sykdomsalvorlighetsgrad.

Protocol

Alle prosedyrer ble utført etter anbefalingene i Veiledningen for pleie og bruk av laboratoriedyr og Association for Research in Vision and Ophthalmology Statement for the Use of Animals in Ophthalmic and Vision Research. Protokollene ble godkjent av Institutional Animal Care and Use Committee ved University of Oklahoma Health Sciences Center (protokollnummer 15-103, 18-043 og 18-087). 1. Sterile glassnåler Slå på nålepipettetrekkeren. Juster …

Representative Results

Generering av reproduserbar inokul og nøyaktighet av intravitreal injeksjonsprosedyren er viktige trinn i utviklingen av modeller av mikrobiell endoftalmitt. Her demonstrerte vi den intravitreale injeksjonsprosedyren ved hjelp av Gram-positive Bacillus cereus. Vi injiserte 100 CFU/0,5 μL B. cereus i midten av glasslegemet på fem C57BL6-mus. Etter 10 timer etterinfeksjon observerte vi intraokulær vekst av B. cereus til ca. 1,8 x 105 CFU/øye. Figur 1 …

Discussion

Selv med tilgjengeligheten av potente antibiotika, antiinflammatoriske legemidler og vitrektomikirurgi, kan bakteriell endoftalmitt blinde en pasient. Kliniske studier har vært nyttige for å studere endoftalmitt; Eksperimentelle modeller av endoftalmitt gir imidlertid raske og reproduserbare resultater som kan oversettes til fremgang i standardbehandling, noe som resulterer i bedre visuelt resultat for pasientene.

Glasslegemet i museøyet er ca. 7 μL40. Dette lille v…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne takker Dr. Feng Li og Dittmar (OUHSC P30 Live Animal Imaging Core, Dean A. McGee Eye Institute, Oklahoma City, OK, USA) for deres hjelp. Vår forskning har blitt støttet av National Institutes of Health tilskudd R01EY028810, R01EY028066, R01EY025947, og R01EY024140. Vår forskning har også blitt støttet av P30EY21725 (NIH CORE stipend for Live Animal Imaging and Analysis, Molecular Biology, og Cellular Imaging). Vår forskning har også blitt støttet av NEI Vision Science Pre-doctoral Trainee program 5T32EY023202, en Presbyterian Health Foundation Research Support stipend, og en ubegrenset tilskudd til Dean A. McGee Eye Institute fra forskning for å hindre blindhet.

Materials

2-20 µL pipette RANIN L0696003G NA
37oC Incubator Fisher Scientific 11-690-625D NA
Bacto Brain Heart Infusion BD 90003-032 NA
Cell Microinjector MicroData Instrument, Inc. PM2000 NA
Fine tip forceps Thermo Fisher Scientific 12-000-122 NA
Glass beads 1.0 mm BioSpec 11079110 NA
Incubator Shaker New Brunswick Scientific NB-I2400 NA
Microcapillary Pipets 5 Microliters Kimble 71900-5 NA
Micro-Pipette Beveler Sutter Instrument Co. BV-10 NA
Microscope Axiostar Plus Zeiss NA
Microscope OPMI Lumera Zeiss NA
Mini-Beadbeater-16 BioSpec Model 607 NA
Multichannel pipette 30-300 µL Biohit 15626090 NA
Multichannel pipette 5-100 µL Biohit 9143724 NA
Needle/Pipette Puller Kopf 730 NA
PBS GIBCO 1897315 Molecular grade
Protease Inhibitor Cocktail Roche 4693159001 Molecular grade
Reverse action forceps Katena K5-8228 NA

References

  1. Ramadan, R. T., Ramirez, R., Novosad, B. D., Callegan, M. C. Acute inflammation and loss of retinal architecture and function during experimental Bacillus endophthalmitis. Current Eye Research. 31 (11), 955-965 (2006).
  2. Callegan, M. C., Booth, M. C., Jett, B. D., Gilmore, M. S. Pathogenesis of gram-positive bacterial endophthalmitis. Infection and Immunity. 67 (7), 3348-3356 (1999).
  3. Durand, M. L. Bacterial and Fungal Endophthalmitis. Clinical Microbiology Reviews. 30 (3), 597-613 (2017).
  4. Callegan, M. C., Engelbert, M., Parke, D. W., Jett, B. D., Gilmore, M. S. Bacterial endophthalmitis: Epidemiology, therapeutics, and bacterium-host interactions. Clinical Microbiology Reviews. 15 (1), 111-124 (2002).
  5. Livingston, E. T., Mursalin, M. H., Callegan, M. C. A Pyrrhic Victory: The PMN Response to Ocular Bacterial Infections. Microorganisms. 7 (11), 537 (2019).
  6. Ramadan, R. T., Moyer, A. L., Callegan, M. C. A role for tumor necrosis factor-alpha in experimental Bacillus cereus endophthalmitis pathogenesis. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 49 (10), 4482-4489 (2008).
  7. Davey, R. T., Tauber, W. B. Posttraumatic endophthalmitis: The emerging role of Bacillus cereus infection. Reviews of Infectious Dissease. 9 (1), 110-123 (1987).
  8. Ramappa, M., et al. An outbreak of acute post-cataract surgery Pseudomonas sp. endophthalmitis caused by contaminated hydrophilic intraocular lens solution. Ophthalmology. 119 (3), 564-570 (2012).
  9. Coburn, P. S., et al. Bloodstream-To-Eye Infections Are Facilitated by Outer Blood-Retinal Barrier Dysfunction. PLoS One. 11 (5), 015560 (2016).
  10. Ness, T., Pelz, K., Hansen, L. L. Endogenous endophthalmitis: Microorganisms, disposition and prognosis. Acta Ophthalmologica Scandinavica. 85 (8), 852-856 (2007).
  11. Novosad, B. D., Callegan, M. C. Severe bacterial endophthalmitis: Towards improving clinical outcomes. Expert Review of Ophthalmology. 5 (5), 689-698 (2010).
  12. Mursalin, M. H., Livingston, E. T., Callegan, M. C. The cereus matter of Bacillus endophthalmitis. Experimental Eye Research. 193, 107959 (2020).
  13. Callegan, M. C., et al. Relationship of plcR-regulated factors to Bacillus endophthalmitis virulence. Infection and Immunity. 71 (6), 3116-3124 (2003).
  14. Beecher, D. J., Pulido, J. S., Barney, N. P., Wong, A. C. Extracellular virulence factors in Bacillus cereus endophthalmitis: Methods and implication of involvement of hemolysin BL. Infection and Immunity. 63 (2), 632-639 (1995).
  15. Callegan, M. C., et al. Contribution of membrane-damaging toxins to Bacillus endophthalmitis pathogenesis. Infection and Immunity. 70 (10), 5381-5389 (2002).
  16. Cowan, C. L., Madden, W. M., Hatem, G. F., Merritt, J. C. Endogenous Bacillus cereus panophthalmitis. Annals of Ophthalmology. 19 (2), 65-68 (1987).
  17. Callegan, M. C., et al. Virulence factor profiles and antimicrobial susceptibilities of ocular Bacillus isolates. Current Eye Research. 31 (9), 693-702 (2006).
  18. Callegan, M. C., et al. Bacillus endophthalmitis: Roles of bacterial toxins and motility during infection. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 46 (9), 3233-3238 (2005).
  19. Mursalin, M. H. Bacillus S-layer-mediated innate interactions during endophthalmitis. Frontiers in Immunology. 11 (215), (2020).
  20. Moyer, A. L., Ramadan, R. T., Novosad, B. D., Astley, R., Callegan, M. C. Bacillus cereus-induced permeability of the blood-ocular barrier during experimental endophthalmitis. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 50 (8), 3783-3793 (2009).
  21. Callegan, M. C., et al. Efficacy of vitrectomy in improving the outcome of Bacillus cereus endophthalmitis. Retina. 31 (8), 1518-1524 (2011).
  22. David, D. B., Kirkby, G. R., Noble, B. A. Bacillus cereus endophthalmitis. British Journal of Ophthalmology. 78 (7), 577-580 (1994).
  23. Vahey, J. B., Flynn, H. W. Results in the management of Bacillus endophthalmitis. Ophthalmic Surgery. 22 (11), 681-686 (1991).
  24. Wiskur, B. J., Robinson, M. L., Farrand, A. J., Novosad, B. D., Callegan, M. C. Toward improving therapeutic regimens for Bacillus endophthalmitis. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 49 (4), 1480-1487 (2008).
  25. Alfaro, D. V., et al. Experimental Bacillus cereus post-traumatic endophthalmitis and treatment with ciprofloxacin. British Journal of Ophthalmology. 80 (8), 755-758 (1996).
  26. Coburn, P. S., et al. TLR4 modulates inflammatory gene targets in the retina during Bacillus cereus endophthalmitis. BMC Ophthalmology. 18 (1), 96 (2018).
  27. Mursalin, M. H., et al. S-layer Impacts the Virulence of Bacillus in Endophthalmitis. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 60 (12), 3727-3739 (2019).
  28. Astley, R. A., Coburn, P. S., Parkunan, S. M., Callegan, M. C. Modeling intraocular bacterial infections. Progress in Retinal and Eye Research. 54, 30-48 (2016).
  29. Parkunan, S. M., et al. CXCL1, but not IL-6, significantly impacts intraocular inflammation during infection. Journal of Leukocyte Biology. 100 (5), 1125-1134 (2016).
  30. LaGrow, A. L., et al. A Novel Biomimetic Nanosponge Protects the Retina from the Enterococcus faecalis Cytolysin. mSphere. 2 (6), 00335 (2017).
  31. Beecher, D. J., Olsen, T. W., Somers, E. B., Wong, A. C. Evidence for contribution of tripartite hemolysin BL, phosphatidylcholine-preferring phospholipase C, and collagenase to virulence of Bacillus cereus endophthalmitis. Infection and Immunity. 68 (9), 5269-5276 (2000).
  32. Callegan, M. C., et al. The role of pili in Bacillus cereus intraocular infection. Experimental Eye Research. 159, 69-76 (2017).
  33. Miller, F. C., et al. Targets of immunomodulation in bacterial endophthalmitis. Progress in Retinal and Eye Research. 73, 100763 (2019).
  34. Parkunan, S. M., Astley, R., Callegan, M. C. Role of TLR5 and flagella in Bacillus intraocular infection. PLoS One. 9 (6), 100543 (2014).
  35. Parkunan, S. M., et al. Unexpected roles for Toll-Like receptor 4 and TRIF in intraocular infection with Gram-positive bacteria. Infection and Immunity. 83 (10), 3926-3936 (2015).
  36. Coburn, P. S., et al. Disarming Pore-Forming Toxins with Biomimetic Nanosponges in Intraocular Infections. mSphere. 4 (3), 00262-00319 (2019).
  37. LaGrow, A., et al. Biomimetic nanosponges augment gatifloxacin in reducing retinal damage during experimental MRSA endophthalmitis. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 60 (9), 4632 (2019).
  38. Novosad, B. D., Astley, R. A., Callegan, M. C. Role of Toll-like receptor (TLR) 2 in experimental Bacillus cereus endophthalmitis. PLoS One. 6 (12), 28619 (2011).
  39. Jett, B. D., Hatter, K. L., Huycke, M. M., Gilmore, M. S. Simplified agar plate method for quantifying viable bacteria. Biotechniques. 23 (4), 648-650 (1997).
  40. Yu, D. Y., Cringle, S. J. Oxygen distribution in the mouse retina. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 47 (3), 1109-1112 (2006).
  41. Beyer, T. L., O’Donnell, F. E., Goncalves, V., Singh, R. Role of the posterior capsule in the prevention of postoperative bacterial endophthalmitis: experimental primate studies and clinical implications. British Journal of Ophthalmology. 69 (11), 841-846 (1985).
  42. Tucker, D. N., Forster, R. K. Experimental bacterial endophthalmitis. Archives of Ophthalmology. 88 (6), 647-649 (1972).
  43. Alfaro, D. V., et al. Experimental pseudomonal posttraumatic endophthalmitis in a swine model. Treatment with ceftazidime, amikacin, and imipenem. Retina. 17 (2), 139-145 (1997).
  44. Silverstein, A. M., Zimmerman, L. E. Immunogenic endophthalmitis produced in the guinea pig by different pathogenetic mechanisms. American Journal of Ophthalmology. 48 (5), 435-447 (1959).
  45. Ravindranath, R. M., Hasan, S. A., Mondino, B. J. Immunopathologic features of Staphylococcus epidermidis-induced endophthalmitis in the rat. Current Eye Research. 16 (10), 1036-1043 (1997).
  46. Kumar, A., Singh, C. N., Glybina, I. V., Mahmoud, T. H., Yu, F. S. Toll-like receptor 2 ligand-induced protection against bacterial endophthalmitis. The Journal of Infectious Diseases. 201 (2), 255-263 (2010).
  47. Mylonakis, E., et al. The Enterococcus faecalis fsrB gene, a key component of the fsr quorum-sensing system, is associated with virulence in the rabbit endophthalmitis model. Infection and Immunity. 70 (8), 4678-4681 (2002).
  48. Sanders, M. E., et al. The Streptococcus pneumoniae capsule is required for full virulence in pneumococcal endophthalmitis. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 52 (2), 865-872 (2011).
  49. Hunt, J. J., Astley, R., Wheatley, N., Wang, J. T., Callegan, M. C. TLR4 contributes to the host response to Klebsiella intraocular infection. Current Eye Research. 39 (8), 790-802 (2014).

Play Video

Cite This Article
Mursalin, M. H., Livingston, E., Coburn, P. S., Miller, F. C., Astley, R., Callegan, M. C. Intravitreal Injection and Quantitation of Infection Parameters in a Mouse Model of Bacterial Endophthalmitis. J. Vis. Exp. (168), e61749, doi:10.3791/61749 (2021).

View Video