Summary

Sebrafisk modell av Neuroblastoma Metastasis

Published: March 14, 2021
doi:

Summary

Dette dokumentet introduserer metoden for å utvikle, karakterisere og spore i sanntid tumormetastase i sebrafiskmodell av nevroblastom, spesielt i den transgene sebrafisklinjen med overekspresjon av MYCN og LMO1, som utvikler metastase spontant.

Abstract

Sebrafisk har dukket opp som en viktig dyremodell for å studere menneskelige sykdommer, spesielt kreft. Sammen med de robuste transgene og genomredigeringsteknologiene som brukes i sebrafiskmodellering, gjør enkel vedlikehold, høy avkastning produktivitet og kraftig levende bildebehandling helt sebrafisken til et verdifullt modellsystem for å studere metastase og cellulære og molekylære baser som ligger til grunn for denne prosessen in vivo. Den første sebrafisk neuroblastom (NB) modellen av metastase ble utviklet ved å overekspressere to oncogenes, MYCN og LMO1, under kontroll av dopamin-beta-hydroksylase (dβh) promotoren. Co-overekspressert MYCN og LMO1 førte til redusert latens og økt penetrans av nevroblastomagenese, samt akselerert fjern metastase av tumorceller. Denne nye modellen gjentar pålitelig mange viktige trekk ved human metastatisk NB, inkludert involvering av klinisk relevante og metastaseringsrelaterte genetiske endringer; naturlig og spontan utvikling av metastase in vivo; og bevarte områder av metastaser. Derfor har sebrafiskmodellen unike fordeler for å dissekere den komplekse prosessen med tumormetastase in vivo.

Introduction

Sebrafisk har blitt mye brukt og anvendt på flere forskningsområder, spesielt i kreft. Denne modellen gir mange fordeler – for eksempel robust reproduksjon, kostnadseffektivt vedlikehold og allsidig visualisering av tumorvekst og metastase – som alle gjør sebrafisk til et kraftig verktøy for å studere og undersøke cellulære og molekylære baser av tumorigenesis og metastase. Nye teknikker for storskala genomkartlegging, transgenese, genovertrykk eller knockout, celletransplantasjon og kjemiske skjermer har enormt forsterket kraften i sebrafiskmodellen1. I løpet av de siste årene har mange sebrafisklinjer blitt utviklet for å studere tumorigenesis og metastase av en rekke menneskelige kreftformer, inkludert, men ikke begrenset til leukemi, melanom, rabdomyosarcoma og hepatocellulært karsinom2,3,4,5. I tillegg ble den første sebrafiskmodellen av nevroblastom (NB) generert ved å overekspressere MYCN, en oncogene, i det perifere sympatiske nervesystemet (PSNS) under kontroll av dopamin-beta-hydroksylase (dβh) promotoren. Med denne modellen ble det videre demonstrert at aktivert ALK kan synergisere med MYCN for å akselerere tumor utbruddet og øke tumorgjennomtrengende in vivo6.

NB er avledet fra den sympodrenale avstamningen av nevrale kamceller, og er en svært metastatisk kreft hos barn7. Det er ansvarlig for 10% av barnekreftrelaterte dødsfall8. Nb er bredt metastasert ved diagnose, og kan presenteres klinisk som svulster som hovedsakelig stammer fra kjeden av det sympatiske gangliaet og binyremedullaen til PSNS9,10. MYCN-forsterkning er ofte forbundet med dårlige utfall hos NB-pasienter11,12. Videre er LMO1 identifisert som et kritisk NB-følsomhetsgen i høyrisikotilfeller13,14. Studier fant at den transgene coexpression av MYCN og LMO1 i PSNS av sebrafiskmodellen ikke bare fremmer tidligere utbrudd av NB, men også induserer utbredt metastase til vev og organer som ligner steder som vanligvis ses hos pasienter med høyrisiko NB13. Svært nylig har en annen metastatisk fenotype av NB også blitt observert i en nyere sebrafiskmodell av NB, der både MYCN og Lin28B, som koder et RNA-bindende protein, er overekspressert under kontroll av dβh-promotoren16.

Den stabile transgene tilnærmingen i sebrafisk brukes ofte til å studere om overekspressering av et gen av interesse kan bidra til normal utvikling og sykdomspatogenese14,15. Denne teknikken har blitt brukt til å demonstrere betydningen av flere gener og veier til NB tumorigenesis6,16,17,18,19,20. Dette dokumentet vil introdusere hvordan den transgene fiskelinjen som overekspresserer både MYCN og LMO1 i PSNS ble opprettet og hvordan det ble demonstrert at samarbeidet mellom disse to oncogenes akselerere utbruddet av NB tumorigenesis og metastase13. For det første ble den transgene linjen som overekspresserer EGFP-MYCN under kontroll av dβh-promotoren (utpekt MYCN-linje) utviklet ved å injisere dβh-EGFP-MYCN-konstruksjonen i encellet stadium av wild-type (WT) AB embryoer, som tidligere beskrevet6,17. En egen transgen linje som overekspresserer LMO1 i PSNS (utpekt LMO1-linje) ble utviklet ved å mynte to DNA-konstruksjoner, dβh-LMO1 og dβh-mCherry, til WT-embryoer på encellet stadium13. Det har tidligere blitt demonstrert at myntede doble DNA-konstruksjoner kan myntes inn i fiskegenomet; Derfor er LMO1 og mCherry coexpressed i PSNS-cellene til de transgene dyrene. Når de injiserte F0-embryoene nådde seksuell modenhet, ble de deretter krysset med WT-fisk for identifisering av positiv fisk med transgene (er) integrasjon. Kort sagt ble F1-avkom først screenet av fluorescerende mikroskopi for mCherry-uttrykk i PSNS-cellene. Bakterieintegrasjonen av LMO1 i mCherry-positiv fisk ble ytterligere bekreftet av genomisk PCR og sekvensering. Etter vellykket identifisering av hver transgeniske linje ble avkommet av heterozygot MYCN og LMO1 transgen fisk interbred for å generere en sammensatt fiskelinje som uttrykker både MYCN og LMO1 (utpekt MYCN; LMO1-linje). Tumorbærende MYCN; LMO1 fisk ble overvåket av fluorescerende mikroskopi to uker for bevis på metastatiske svulster i regionene fjernt til det primære stedet, interrenal kjertel region (IRG, sebrafisk tilsvarende menneskelig binyrene)13. For å bekrefte metastase av svulster i MYCN; LMO1 fisk, histologiske og immunhiistokjemiske analyser ble brukt.

Protocol

Alle forskningsmetoder ved bruk av sebrafisk og dyrepleie/vedlikehold ble utført i samsvar med institusjonelle retningslinjer ved Mayo Clinic. 1. Forberedelse og mikroinjeksjon av transgene konstruksjoner for utvikling av LMO1 transgen sebrafisk linje med overekspression i PSNS For å utvikle LMO1-pDONR221-klonen , forsterker du kodeområdet til human LMO1 fra cDNA oppnådd fra menneskelig cellelinje ved hjelp av PCR. Gjør en 25 μL reaksjon som b…

Representative Results

For å avgjøre om LMO1 synergiserer med MYCN for å påvirke NB-patogenese, ble transgene konstruksjoner som driver uttrykk for enten LMO1 (dβh:LMO1 og dβh:mCherry) eller MYCN (dβh:EGFP-MYCN) i PSNS-cellene under kontroll av dβh-promotoren injisert i sebrafiskembryoer13. Som illustrert i figur 1A, etter utviklingen av stabile transgene linjer og validering av deres genotyper, ble heterozygot …

Discussion

Sebrafisk har blitt ofte brukt i forskning de siste tiårene, spesielt i kreftforskning, av åpenbare grunner, for eksempel enkel vedlikehold, robust reproduksjon og klare fordeler for in vivo-avbildning1,28. Sebrafiskmodellen kan lett manipuleres embryonalt på grunn av deres eksterne befruktning og utvikling, som utfyller godt til pattedyrmodellorganismer, som rotter og mus, for store genetiske studier1,2,3<sup class=…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet av et tilskudd R01 CA240323 (S.Z.) fra National Cancer Institute; et tilskudd W81XWH-17-1-0498 (S.Z.) fra USAs forsvarsdepartement (DoD); en V Scholar-pris fra V Foundation for Cancer Research (S.Z.) og et plattformstipend fra Mayo Center for Biomedical Discovery (S.Z.); og støtter fra Mayo Clinic Cancer Center og Center for Individualized Medicine (S.Z.).

Materials

3,3’-Diaminobenzidine (DAB) Vector Kit Vector SK-4100
Acetic Acid Fisher Scientific / Acros Organic 64-19-7
Agarose GP2 Midwest Scientific 009012-36-6
Anti-Tyrosine Hydroxylase (TH) Antibody Pel-Freez P40101
Avidin/Biotin Blocking Kit Vector SP-2001
BOND Intense R Detection Leica Biosystems DS9263
BOND primary antibody diluent Leica Biosystems Newcastle, Ltd. AR9352
BOND-MAX IHC instrument Leica Biosystems Newcastle, Ltd. N/A fully automated IHC staining system
CH211-270H11 BAC clone BACPAC resources center (BRFC) N/A
Compound microscope equipped with DP71 camera Olympus AX70
Cytoseal XYL (xylene based mounting medium) Richard-Allan Scientific 8312-4
Eosin Leica 3801601 ready-to-use (no preparation needed)
Ethanol Carolina 86-1263
Expand Long Template PCR System Roche Applied Science, IN 11681834001
Gateway BP Clonase II enzyme mix Invitrogen, CA 11789-020
Gateway LR Clonase II enzyme mix Invitrogen, CA 11791-100
Goat anti-Rb secondary antibody (Biotinylated) Dako E0432
Hematoxylin Solution, Harris Modified Sigma Aldrich Chemical Company Inc. / SAFC HHS-32-1L
HRP Avidin D Vector A-2004
Hydrochloric Acid Aqua Solutions 4360-1L
Hydrogen Peroxide, 3% Fisher Scientific H324-500
I-SceI enzyme New England Biolabs, MA R0694L
Kanamycin sulfate Teknova, Inc. K2150
Kimberly-Clark Professional Kimtech Science Kimwipes Fisher Scientific 34133
Lithium Carbonate Sigma Aldrich Chemical Company Inc. / SAFC 554-13-2
Microtome for sectioning Leica Biosystems RM2255
One Shot TOP10 Chemically Competent E. coli Invitrogen C404006
p3E-polyA  Dr. Chi-Bin Chien, Univ. of Utah N/A a generous gift
(Please refer to webpage http://tol2kit.genetics.utah.edu/index.php/Main_Page to obtain material, which is freely distrubted as described.)
Parafin wax Surgipath Paraplast 39603002 Parrafin to parafin
Paraformaldehyde Alfa Aesar A11313
pDEST vector (modified destination vector containing I-SceI recognition sites) Dr. C. Grabher, Karlsruhe Institute of Technology, Karlsruhe, Germany N/A a generous gift
pDONR 221 gateway donor vector Thermo Fisher Scientific 12536-017
pDONRP4-P1R donor vector  Dr. Chi-Bin Chien, Univ. of Utah N/A a generous gift
Phenol red, 0.5% Sigma Aldrich  P0290
Phosphate Buffered Saline (PBS), 10X BioRad 1610780
Picrosirrius red stain kit Polysciences 24901-250
pME-mCherry Addgene 26028 (DBH construct)
Proteinase K, recombinant, PCR Grade Roche 21712520
QIAprep Spin MiniPrep Kit Qiagen 27104
RDO Rapid Decalcifier Apex Enginerring RDO04
Sodium Azide (NaN3) Sigma Aldrich 26628-22-8
Stereo fluorescence microscope Leica MZ10F
Stereoscopic fluorescence microscope equipped with a digital sight DS-U1 camera for imaging Nikon SMZ-1500
Taq DNA Polymerase New England Biolabs, MA M0273L
Tissue-Tek VIP® 6 AI Vacuum Infiltration Processor Sakura N/A Model #: VIP-6-A1
Tricaine-S Western Chemical Incorporated 20513
Xylene Thermo Fisher Scientific X3P1GAL

References

  1. Veldman, M., Lin, S. Zebrafish as a developmental model organism for pediatric research. Pediatric Research. 64, 470-476 (2008).
  2. Feitsma, H., Cuppen, E. Zebrafish as a cancer model. Molecular Cancer Research. 6 (5), 694 (2008).
  3. Ethcin, J., Kanki, J. P., Look, A. T. Zebrafish as a model for the study of human cancer. Methods in Cell Biology. 105, 309-337 (2010).
  4. Benjamin, D. C., Hynes, R. O. Intravital imaging of metastasis in adult Zebrafish. BMC Cancer. 17 (1), 660 (2017).
  5. Kim, I. S., et al. Microenvironment-derived factors driving metastatic plasticity in melanoma. Nature Communications. 8, 14343 (2017).
  6. Zhu, S., et al. Activated ALK collaborates with MYCN in neuroblastoma pathogenesis. Cancer Cell. 21 (3), 362-373 (2012).
  7. Maris, J. M., Hogarty, M. D., Bagatell, R., Cohn, S. L. Neuroblastoma. Lancet. 369 (9579), 2106-2120 (2007).
  8. Park, J. R., et al. Children’s oncology group’s 2013 blueprint for research: neuroblastoma. Pediatric Blood and Cancer. 60 (6), 985-993 (2013).
  9. Hoehner, J. C., et al. A developmental model of neuroblastoma: differentiating stroma-poor tumors’ progress along an extra-adrenal chromaffin lineage. Laboratory Investigation: A Journal of Technical Methods and Pathology. 75 (5), 659-675 (1996).
  10. Tsubota, S., Kadomatsu, K. Origin and initiation mechanisms of neuroblastoma. Cell and Tissue Research. 372 (2), 211-221 (2018).
  11. Tolbert, V. P., Matthay, K. K. Neuroblastoma: Clinical and biological approach to risk stratification and treatment. Cell and Tissue Research. 372 (2), 195-209 (2018).
  12. Maris, J. M. Recent advances in neuroblastoma. New England Journal of Medicine. 362 (23), 2202-2211 (2010).
  13. Zhu, S., et al. LMO1 Synergizes with MYCN to promote neuroblastoma initiation and metastasis. Cancer Cell. 32, 310-323 (2017).
  14. Patton, E. E., Zon, L. I. The art and design of genetic screens: zebrafish. Nature Reviews Genetics. 2 (12), 956-966 (2001).
  15. Lieschke, G. J., Currie, P. D. Animal models of human disease: zebrafish swim into view. Nature Reviews Genetics. 8 (5), 353-367 (2007).
  16. Tao, T., et al. LIN28B regulates transcription and potentiates MYCN-induced neuroblastoma through binding to ZNF143 at target gene promotors. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 117 (28), 16516-16526 (2020).
  17. Ung, C. Y., Guo, F., Zhang, X., Zhu, Z., Zhu, S. Mosaic zebrafish transgenesis for functional genomic analysis of candidate cooperative genes in tumor pathogenesis. Journal of Visualized Experiments. (97), e52567 (2015).
  18. Zhang, X., et al. Critical role for GAB2 in neuroblastoma pathogenesis through the promotion of SHP2/MYCN cooperation. Cell Reports. 18 (12), 2932-2942 (2017).
  19. Zimmerman, M. W., et al. MYC drives a subset of high-risk pediatric neuroblastomas and is activated through mechanisms including enhancer hijacking and focal enhancer amplification. Cancer Discovery. 8 (3), 320-335 (2018).
  20. Koach, J., et al. Drugging MYCN oncogenic signaling through the MYCN-PA2G4 binding interface. Cancer Research. 79 (21), 5652-5667 (2019).
  21. Kimmel, C. B., Ballard, W. W., Kimmel, S. R., Ullmann, B., Schilling, T. F. Stages of embryonic development of the zebrafish. Developmental Dynamics. 203 (3), 253-310 (1995).
  22. DuBois, S. G., et al. Metastatic sites in stage IV and IVS neuroblastoma correlate with age, tumor biology, and survival. Journal of pediatric hematology/oncology. 21 (3), 181-189 (1999).
  23. Wattrus, S. J., Zon, L. I. Stem cell safe harbor: The hematopoietic stem cell niche in zebrafish. Blood Advances. 2 (21), 3063-3069 (2018).
  24. Menke, A. L., Spitsbergen, J. M., Wolterbeek, A. P., Woutersen, R. A. Normal anatomy and histology of the adult zebrafish. Toxicologic Pathology. 39 (5), 759-775 (2011).
  25. Renshaw, S. A., Trede, N. S. A model 450 million years in the making: Zebrafish and vertebrate immunity. Disease Models and Mechanisms. 5 (1), 38-47 (2012).
  26. Junqueira, L. C., Cossermelli, W., Brentani, R. Differential staining of collagens type I, II and III by Sirius Red and polarization microscopy. Archivum histologicum Japonicum (Nihon Soshikigaku Kiroku). 41 (3), 267-274 (1978).
  27. Sweat, F., Puchtler, H., Rosenthal, S. I. Sirius red F3BA as a stain for connective tissue. Archives of Pathology. 78, 69-72 (1964).
  28. Ignatius, M. S., Hayes, M., Langenau, D. M. In vivo imaging of cancer in zebrafish. Advances in Experimental Medicine and Biology. 916, 219-237 (2016).
  29. Howe, C. K., et al. The zebrafish reference genome sequence and its relationship to the human genome. Nature. 496 (7446), 498-503 (2013).
  30. Fazio, M., Ablain, J., Chuan, Y., Langenau, D. M., Zon, L. I. Zebrafish patient avatars in cancer biology and precision cancer therapy. Nature Reviews Cancer. 20 (5), 263-273 (2020).
  31. Yoganantharjah, P., Gibert, Y. The Use of the zebrafish model to aid in drug discovery and target validation. Current Topics in Medicinal Chemistry. 17 (18), 2041-2055 (2018).
  32. Ignatius, M. S., et al. In vivo imaging of tumor-propagating cells, regional tumor heterogeneity, and dynamic cell movements in embryonal rhabdomyosarcoma. Cancer Cell. 21 (5), 680-693 (2012).
  33. Stoletov, K., Montel, V., Lester, R. D., Gonias, S. L., Klemke, R. High-resolution imaging of the dynamic tumor cell vascular interface in transparent zebrafish. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 104 (44), 17406-17411 (2007).
  34. Ahmed, S., et al. Neuroblastoma with orbital metastasis: ophthalmic presentation and role of ophthalmologists. Eye. 20 (4), 466-470 (2006).
  35. Papaioannou, G., McHugh, K. Neuroblastoma in childhood: review and radiological findings. Cancer Imaging Society. 5 (1), 116-127 (2005).
  36. Langenau, D. M., et al. Co-injection strategies to modify radiation sensitivity and tumor initiation in transgenic Zebrafish. Oncogene. 27 (30), 4242-4248 (2008).
  37. Amores, A., et al. Zebrafish hox clusters and vertebrate genome evolution. Science. 282 (5394), 1711-1714 (1998).
  38. Postlethwait, J. H., et al. Vertebrate genome evolution and the zebrafish gene map. Nature Genetics. 18 (4), 345-349 (1998).
  39. Opazo, J. C., et al. Whole-genome duplication and the functional diversification of teleost fish hemoglobins. Molecular Biology and Evolution. 30 (1), 140-153 (2013).
check_url/62416?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Her, Z. P., Yeo, K. S., Howe, C., Levee, T., Zhu, S. Zebrafish Model of Neuroblastoma Metastasis. J. Vis. Exp. (169), e62416, doi:10.3791/62416 (2021).

View Video