Summary

Multiplexerad fluorescerande immunohistokemisk färgning av fyra endometrie immuncelltyper vid återkommande missfall

Published: August 04, 2021
doi:

Summary

Trots framstegen inom multiplex immunohistochemistry och multispektral imaging, känneteckna densitet och kluster av stora immunceller samtidigt i livmoderslemhinnan är fortfarande en utmaning. Detta dokument beskriver en detaljerad multiplex färgning protokoll och imaging för samtidig lokalisering av fyra immun cell typer i livmoderslemhinnan.

Abstract

Immunohistokemi är den vanligaste metoden för identifiering och visualisering av vävnadsantigener inom biologisk forskning och klinisk diagnostik. Det kan användas för att karakterisera olika biologiska processer eller patologier, såsom sårläkning, immunsvar, vävnadsavstötning och vävnad-biomaterial interaktioner. Visualisering och kvantifiering av flera antigener (särskilt för immunceller) i en enda vävnad avsnitt med konventionella immunohistochemical (IHC) färgning är dock fortfarande otillfredsställande. Därför introducerades multiplexerad teknik under de senaste åren för att identifiera flera biologiska markörer i ett enda vävnadsprov eller en ensemble av olika vävnadsprover.

Dessa tekniker kan vara särskilt användbara för att skilja förändringarna i immun cell-till-cell interaktioner inom livmoderslemhinnan mellan fertila kvinnor och kvinnor med återkommande missfall under implantation. Detta dokument beskriver ett detaljerat protokoll för multiplexed fluorescence IHC färgning att undersöka densitet och kluster av fyra stora immun celltyper samtidigt i exakt tidsbestämma endometrie exemplar under embryo implantation. Metoden inkluderar provberedning, multiplexoptimering med markörer för immuncellsundertyper och skanning av bilderna, följt av dataanalys, med specifik hänvisning till att upptäcka endometrie immunceller.

Med denna metod kan densiteten och klustring av fyra stora immuncelltyper i livmoderslemhinnan samtidigt analyseras i en enda vävnadssektion. Dessutom kommer detta dokument att diskutera de kritiska faktorerna och felsökningen för att övervinna eventuella fluoroforstörningar mellan de fluorescerande sonder som appliceras. Viktigt är att resultaten från denna multiplexfärgningsteknik kan bidra till att ge en djupgående förståelse för den immunologiska interaktionen och regleringen under embryoimplantation.

Introduction

Återkommande missfall (RM) kan definieras som förlust av två eller flera graviditeter före 24 veckors graviditet1. Detta frekventa reproduktiva tillstånd påverkar upp till 1% av par över hela världen2,3. Patofysiologi är multifaktoriell och kan delas in i embryologiskt drivna orsaker (främst på grund av en onormal embryonal karyotyp) och moderns drivna orsaker som påverkar livmoderslemhinnan och/eller placental utveckling. Denna manifestation kan bero på föräldrarnas genetiska avvikelser, livmoderavvikelser, protrobotiska tillstånd, endokrinologiska faktorer och immunologiska störningar4.

Under de senaste åren har immuneffektorcelldysfunktion varit inblandad i patogenesen vid tidig graviditetsförlust5. Detta har inspirerat många undersökningar för att klargöra de specifika populationerna av immunceller i livmoderslemhinnan under menstruationscykeln, implantation och tidig graviditet, med specifika roller i tidig graviditet. Bland dessa immunceller spelar livmoderns naturliga mördarceller (uNK) en kritisk roll under embryoimplantation och graviditet, särskilt i processerna för trofolastisk invasion och angiogenes6. Studier har visat en ökad uNK celltäthet i livmoderslemhinnan hos kvinnor med RM7,8, även om detta fynd inte var förknippat med en ökad risk för missfall9. Detta stimulerade dock forskning som utvärderade densiteten hos andra immuncelltyper (såsom makrofager, livmoder dendritiska celler) i livmoderslemhinnan hos kvinnor med RM10,11. Det är dock fortfarande osäkert om det finns en betydande förändring i immuncellens densitet i peri-implantation endometrium hos kvinnor med RM.

En möjlig förklaring till osäkerheten är att utvärdering av endometrie immuncell densitet kan vara svårt på grund av de snabba förändringarna i livmoderslemhinnan under fönstret av implantation. Under tidsramen på 24 timmar förändrar signifikanta förändringar i endometrium immuncellens densitet och cytokinsekreation, vilket introducerar en källa till variation i dessa resultat12. Dessutom är de flesta rapporter huvudsakligen beroende av användning av encellsfärgning (t.ex. traditionella IHC-metoder) som inte kunde undersöka flera markörer på samma vävnadssektion. Även om flödescytometri kan användas för att upptäcka flera cellpopulationer i ett enda prov, hindrar de stora mängder celler som krävs och den tidskrävande optimeringen populariteten och effektiviteten hos denna metod. Därför kan den senaste utvecklingen i multiplex IHC färgning lösa detta problem genom att immunstaining flera markörer på samma bild för att utvärdera flera parametrar, inklusive cell härstamning och histologiska lokalisering av enskilda immun subpopulationer. Vidare kan denna teknik maximera den information som erhålls vid begränsad vävnad tillgänglighet. I slutändan kan denna teknik hjälpa till att klargöra skillnaderna i immuncellinteraktioner i livmoderslemhinnan mellan fertila kvinnor och kvinnor med RM.

Två grupper av kvinnor rekryterades från Prince of Wales Hospital, inklusive fertila kontroll kvinnor (FC) och kvinnor med oförklarliga återkommande missfall (RM). Fertil kontroll definierades som kvinnor som hade minst en levande födsel utan någon historia av spontana missfall, och RM kvinnor definierades som de som hade en historia av ≥2 på varandra följande missfall före 20 veckor dräktighet. Försökspersonerna från de två grupperna uppfyllde följande inklusionskriterier: a) ålder mellan 20 och 42 år, b) icke-rökare, c) regelbunden menstruationscykel (25-35 dagar) och normal livmoderstruktur, d) ingen användning av någon hormonell regim under minst 3 månader före endometriebiopsi, e) ingen hydrosalpinx med hystero-salpingogram. Dessutom hade alla ämnen som rekryterats normala karyotypning, normala 3-dimensionella ultrasonography hysterosalpingogram, dag 2 follikelstimulerande hormon 30 nmol/L, normala sköldkörteln funktion och testat negativt för lupus antikoagulantia och antikardiolipin IgG och IgM antikroppar.

För att bättre förstå den immunologiska grunden för RM, skulle det vara mest önskvärt att samtidigt kvantifiera och lokalisera de stora immuncelltyperna som finns i livmoderslemhinnan vid implantationstillfället. Detta dokument beskriver hela protokollet från provberedning, multiplexoptimering med markörer för immuncellsundertyper och skanning av bilderna, följt av dataanalys med specifik hänvisning till att upptäcka endometrie immunceller. Dessutom beskriver detta dokument hur man bestämmer densiteten och klustring av immuncelltyperna samtidigt i livmoderslemhinnan.

Protocol

Studien godkändes av Joint Chinese University of Hong Kong-New Territories East Cluster Clinical Research Ethics Committee. Informerat samtycke erhölls från deltagarna innan de samlade in endometriebiopsierna. Se introduktionsavsnittet för inkluderingskriterier för kontroll- och RM-grupperna. 1. Provberedning Se till att alla kvinnor i denna studie genomgår ett dagligt urinstickstest från dag 9 av menstruationscykeln och framåt för att identifiera det luteiniserande hormonet…

Representative Results

Den övergripande schematiska processen att utföra en 4-färgs multiplexanalys för detektion av 4 endometrie immuncelltyper visas i figur 1. I korthet krävde protokollet för denna multiplex immunofluorescensfärgning 8 viktiga steg: 1. Glidberedning, 2. Epitope retrieval, 3. Blockering, 4. Primär antikroppsapplikation, 5. Sekundär antikroppsapplikation, 6. Signalförstärkning, 7. Avlägsnande av antikroppar och 8. Mottain och montering. Bildåtergivning och analys utfördes sedan med …

Discussion

Kritiska steg i protokollet
Det är viktigt att notera att multiplexfärgning kräver noggrann optimering. Antigenhämtning, med hjälp av citratbuffert och mikrovågsteknik, kräver optimering för att säkerställa fullständig antikroppsborttagning och upprätthålla vävnadens livskraft. Eftersom TSA-reagenser kovalent binder till platser som omger antigenet kan de potentiellt hämma bindningen av en efterföljande primär antikropp genom steriskt hinder (även känt som “paraplyeffekten”). Detta …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denna studie stöddes av Hong Kong Obstetrical and Gynecological Trust Fund 2018 och Hong Kong Health and Medical Research Fund (06170186, 07180226).

Materials

Amplification Diluent Perkin Elmer FP1498 Fluorophore diluent buffer
Antibody diluent Perkin Elmer ARD1001EA Diluting the antibody
CD3 Spring Bioscience M3072 Primary antibody
CD20 Biocare Medical CM004B Primary antibody
CD56 Leica NCL-CD56-504 Primary antibody
CD68 Spring Bioscience M5510 Primary antibody
Citrate Buffer Solution, pH 6.0 (10x) Abcam AB64214 Antigen retrieval solution
EMSURE Xylene (isomeric mixture) Merck 108297 Dewaxing
Ethanol absolute Merck 107017 Ethyl alcohol for rehydration
HistoCore BIOCUT Manual Rotary Leica Microtome Leica RM2125RTS Sectioning of paraffin-embedded tissue
inForm Advanced Image Analysis Software Perkin Elmer inForm® Tissue Finder Software 2.2.1 (version 14.0) Data Analysis software
Mantra® Workstation Akoya Biosciences CLS140089 Spectral imaging
Microwave Panasonic Inverter Microwave stripping
Opal 520 Perkin Elmer FP1487A Appropriate tyramide based fluorescent reagent
Opal 620 Perkin Elmer FP1495A Appropriate tyramide based fluorescent reagent
Opal 650 Perkin Elmer FP1496A Appropriate tyramide based fluorescent reagent
Opal 690 Perkin Elmer FP1497A Appropriate tyramide based fluorescent reagent
Oven Memmert U10 Dewaxing
Peroxidase Blocking Solution DAKO S2023 Removal of tissue peroxidase activities
Poly-L-lysine coated slide FISHER SCIENTIFIC 120-550-15 Slide for routine histological use
PolyHRP Broad Spectrum Perkin Elmer ARH1001EA Secondary antibody
ProLong™ Gold Antifade Mountant ThemoFisher Scientific P36930 Mounting
Spatstat / Version 2.1-0 Spatial point pattern analysis
Spectral DAPI Perkin Elmer FP1490A Nucleic acid staining
Tissue Processor Thermo Fischer Excelsior ES Tissue processing for dehydration and paraffination
Tris Buffer Saline (TBS), 10x Cell Signaling Technology 12498S Washing solution
Tween 20 Sigma-Aldrich P1370-1L Nonionic detergent

References

  1. ESHRE Guideline Group on RPL et al. ESHRE guideline: recurrent pregnancy loss. Human Reproduction Open. 2018 (2), 004 (2018).
  2. Stirrat, G. M. Recurrent miscarriage. Lancet. 336 (8716), 673-675 (1990).
  3. Rai, R., Regan, L. Recurrent miscarriage. Lancet. 368 (9535), 601-611 (2006).
  4. Royal College of Obstetricians & Gynaecologists. The investigation and treatment of couples with recurrent first-trimester and second-trimester miscarriage. Green-top Guideline No. 17. Royal College of Obstetricians & Gynaecologists. , (2011).
  5. King, A. Uterine leukocytes and decidualization. Human Reproduction Update. 6 (1), 28-36 (2000).
  6. Le Bouteiller, P., Piccinni, M. P. Human NK cells in pregnant uterus: why there. American Journal of Reproductive Immunology. 59 (5), 401-406 (2008).
  7. Lash, G. E., et al. Standardisation of uterine natural killer (uNK) cell measurements in the endometrium of women with recurrent reproductive failure. Journal of Reproductive Immunology. 116, 50-59 (2016).
  8. Yang, Y., et al. HOXA-10 and E-cadherin expression in the endometrium of women with recurrent implantation failure and recurrent miscarriage. Fertility and Sterility. 107 (1), 136-143 (2017).
  9. Tuckerman, E., Laird, S. M., Prakash, A., Li, T. C. Prognostic value of the measurement of uterine natural killer cells in the endometrium of women with recurrent miscarriage. Human Reproduction. 22 (8), 2208-2213 (2007).
  10. Jasper, M. J., et al. Macrophage-derived LIF and IL1B regulate alpha(1,2)fucosyltransferase 2 (Fut2) expression in mouse uterine epithelial cells during early pregnancy. Biology of Reproduction. 84 (1), 179-188 (2011).
  11. Kopcow, H. D., et al. T cell apoptosis at the maternal-fetal interface in early human pregnancy, involvement of galectin-1. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 105 (47), 18472-18477 (2008).
  12. Johnson, P. M., Christmas, S. E., Vince, G. S. Immunological aspects of implantation and implantation failure. Human Reproduction. 14, 26-36 (1999).
  13. Hong, G., et al. Multiplexed fluorescent immunohistochemical staining, imaging, and analysis in histological samples of lymphoma. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (143), e58711 (2019).
  14. Carstens, J. L., et al. Spatial computation of intratumoral T cells correlates with survival of patients with pancreatic cancer. Nature Communications. 8, 15095 (2017).
  15. Zhao, Y., et al. The use of multiplex staining to measure the density and clustering of four endometrial immune cells around the implantation period in women with recurrent miscarriage: comparison with fertile controls. Journal of Molecular Histology. 51 (5), 593-603 (2020).
check_url/62931?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Zhao, Y., Man, G. C. W., Chan, L. K. Y., Guo, X., Liu, Y., Zhang, T., Kwong, J., Wang, C. C., Chen, X., Li, T. C. Multiplexed Fluorescent Immunohistochemical Staining of Four Endometrial Immune Cell Types in Recurrent Miscarriage. J. Vis. Exp. (174), e62931, doi:10.3791/62931 (2021).

View Video