Summary

בידוד ואפיון של תאי מערכת החיסון מזכוכית זרחית עכבר מיקרוניתוח

Published: February 03, 2022
doi:

Summary

מחקר זה משתמש cytometry זרימה ושתי אסטרטגיות gating שונות על עכברים מבודדים perfused מוח choroid plexuses; פרוטוקול זה מזהה את תתי-הערכות העיקריות של תאי החיסון המאכלסות מבנה מוח זה.

Abstract

המוח כבר לא נחשב לאיבר המתפקד בבידוד; צבירת ראיות מצביעה על כך ששינויים במערכת החיסון ההיקפית יכולים לעצב בעקיפין את תפקוד המוח. בממשק שבין המוח למחזור הדם המערכתי, מקלעות הכורואידים (CP), המהווים את מחסום הנוזל השדרתי בדם, הודגשו כאתר מפתח של תקשורת פריפריה-למוח. CP מייצר את הנוזל השדרתי, גורמים נוירוטרופיים ומולקולות איתות שיכולות לעצב הומאוסטזיס במוח. CP הם גם נישה חיסונית פעילה. בניגוד לפרנצ’ימה במוח, המאוכלסת בעיקר על ידי מיקרוגליה בתנאים פיזיולוגיים, ההטרוגניות של תאי החיסון של CP משחזרת את המגוון שנמצא באיברים היקפיים אחרים. המגוון והפעילות של תאי החיסון של CP משתנים עם ההזדקנות, הלחץ והמחלות ומווסתים את פעילות האפיתל של CP, ובכך מעצבים בעקיפין את תפקוד המוח. מטרת פרוטוקול זה היא לבודד את CP מורין ולזהות כ -90% מתת-קבוצות החיסון העיקריות המאכלסות אותם. שיטה זו היא כלי לאפיון תאי מערכת החיסון של CP ולהבנת תפקידם בניהול תקשורת בין הפריפריה למוח. הפרוטוקול המוצע עשוי לסייע בפענוח האופן שבו תאי מערכת החיסון של CP מווסתים בעקיפין את תפקוד המוח בבריאות ובמצבי מחלה שונים.

Introduction

מאז גילוי מחסום הדם – מוח על ידי פול ארליך בסוף המאה ה –19, המוח נחשב כמעט מופרד מהאיברים האחרים ומחזור הדם. עם זאת, בעשור האחרון חלה הופעתה של התפיסה שתפקוד המוח מעוצב על ידי גורמים ביולוגיים שונים, כגון מיקרוביוטה במעיים ותאי חיסון מערכתיים ואותות1,2,3,4. במקביל, גבולות מוח אחרים כגון קרום המוח וזכוכית קרום המוח (CP) זוהו כממשקים של דיבורים צולבים חיסוניים-מוחיים פעילים ולא כרקמות מחסום אינרטיות5,6,7,8.

ה-CP מהווים את מחסום הנוזל השדרתי בדם, אחד הגבולות המפרידים בין המוח לפריפריה. הם ממוקמים בכל אחד מארבעת החדרים של המוח, כלומר, השלישי, הרביעי, ושניהם חדרים לרוחב, והם סמוכים לאזורים המעורבים neurogenesis כגון האזור subventricular ואזור תת-עורי של ההיפוקמפוס3. מבחינה מבנית, CP מורכבים מרשת של נימי דם fenestrated מוקף על ידי monolayer של תאי אפיתל, אשר מחוברים על ידי צמתים הדוקים ודבקים9,10. תפקידים פיזיולוגיים עיקריים של אפיתל CP כרוכים בייצור של נוזל השדרתי, אשר שוטף את המוח מטבוליטים פסולת ואגרגטים חלבון, ואת הייצור ואת המעבר מבוקר דם למוח של מולקולות איתות שונות כולל הורמונים וגורמים נוירוטרופיים11,12,13. מולקולות מופרשות מפעילות המוח בצורת CP, כלומר, על ידי ויסות נוירוגנזה ותפקוד מיקרוגליאלי14,15,16,17,17,18,19, מה שהופך את CP קריטי עבור הומאוסטזיס במוח. CP עוסקת גם בפעילויות חיסוניות שונות; בעוד שסוג התא החיסוני העיקרי בפרנצ’ימה במוח בתנאים לא פתולוגיים הוא מיקרוגליה, המגוון של אוכלוסיות תאי החיסון של CP רחב כמו באיברים היקפיים3,7, מה שמצביע על כך שערוצים שונים של ויסות ואיתות חיסוני פועלים ב- CP.

הרווח בין תאי האנדותל והאפיתל, CP stroma, מאוכלס בעיקר על ידי מקרופאגים הקשורים לגבול (BAM), המבטאים ציטוקינים פרו דלקתיים ומולקולות הקשורות להצגת אנטיגן בתגובה לאותות דלקתיים3. תת-סוג נוסף של מקרופאגים, תאי האפילקסוס של קולמר, נמצאים על פני השטח האפיליים של אפיתל CP20. CP stroma הוא גם נישה עבור תאים דנדריטיים, תאי B, תאי פיטום, בזופילים, נויטרופילים, תאי לימפה מולדים, ותאי T שהם בעיקר תאי זיכרון T מפעילים המסוגלים לזהות אנטיגנים של מערכת העצבים המרכזית7,21,22,22,23,24. בנוסף, ההרכב והפעילות של אוכלוסיות תאי מערכת החיסון ב- CP משתנים על הפרעה מערכתית או מוחית, למשל, במהלך הזדקנות 10,14,15,15,21,25, הפרעה מיקרוביוטה7, מתח26, ומחלה27,28. ראוי לציין, שינויים אלה הוצעו בעקיפין לעצב את תפקוד המוח, כלומר, שינוי של תאי CP CD4 + T לכיוון דלקת Th2 מתרחשת בהזדקנות המוח ומפעיל איתות חיסוני מן CP שעשוי לעצב ירידה קוגניטיבית הקשורה להזדקנות14,15,21,25,25,29 . הארת המאפיינים של תאי החיסון של CP תהיה אפוא חיונית כדי להבין טוב יותר את תפקודם הרגולטורי על פיזיולוגיה והפרשת אפיתל CP ובכך לפענח את השפעתם העקיפה על תפקוד המוח בתנאים בריאים ומחלות.

CP הם מבנים קטנים המכילים רק כמה תאים חיסוניים. הבידוד שלהם דורש microdissection לאחר שלב ראשוני של זלוף; תאי מערכת החיסון במחזור הדם היו מהווים מזהמים עיקריים. פרוטוקול זה נועד לאפיין את תת-קבוצות תאי המיאלואיד וה- T של CP באמצעות ציטומטריית זרימה. שיטה זו מזהה כ -90% מאוכלוסיות תאי החיסון המרכיבים CP עכבר בתנאים לא דלקתיים, בהתאם לעבודות שפורסמו לאחרונה באמצעות שיטות אחרות לנתח הטרוגניות CP חיסונית7,10,28. פרוטוקול זה יכול להיות מיושם כדי לאפיין שינויים בתא התא החיסוני של CP עם מחלות ופרדיגמות ניסיוניות אחרות ב vivo.

Protocol

כל הנהלים הוסכמו עם הנחיות הנציבות האירופית לטיפול בחיות מעבדה, הוראה 86/609/EEC. הם אושרו על ידי ועדות האתיקה מס ’59, על ידי CETEA / CEEA מס ‘089, תחת המספר dap210067 ו APAFIS #32382-20210709170555505 v1. 1. הכנת החומרים יש לאחסן את כל הנוגדנים (טבלת החומרים) בטמפרטורה של 4 °C (4 °F), מוגנים ?…

Representative Results

ניתוחי ציטומטריית הזרימה המוצגים כאן חשפו בהצלחה את תתי-הערכות העיקריות של תאי המיאלואיד וה-T (איור 1 ואיור 2, בהתאמה), ואת המספר הכולל היחסי שלהן לעכבר באופן רב לשחזור (איור 3). ניתוח ציטומטריית הזרימה של תאי מיאלואידים הראה כי C…

Discussion

מחקרים שמטרתם להבין את התרומות החיסוניות להומיאוסטזיס המוח ולמחלות התמקדו בעיקר בתאים המתגוררים בתוך הפרנצ’ימה במוח, והזניחו גבולות המוח כגון CP, שהם בכל זאת תורמים חיוניים לתפקוד המוח2,3. הניתוח של אוכלוסיות תאי החיסון ב- CP הוא מאתגר בשל גודל קטן של CP, מספרים…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

אנו מודים למכון פסטר Animalerie Centrale ולחברי מתקן CB-UTechS על עזרתם. עבודה זו נתמכה כלכלית על ידי מכון פסטר.

Materials

anti-mouse CD16/CD32 BD Biosciences 553142 Flow cytometry antibody
Albumin, bovine MP Biomedicals 160069 Blocking reagent
APC anti-mouse CX3CR1 BioLegend 149008 Flow cytometry antibody
APC anti-mouse TCRb BioLegend 109212 Flow cytometry antibody
APC-Cy7 anti-mouse CD4 BioLegend 100414 Flow cytometry antibody
APC-Cy7 anti-mouse IA-IE BioLegend 107628 Flow cytometry antibody
BD FACSymphony A5 Cell Analyzer BD Biosciences Flow cytometry analyzer
BV711 anti-mouse Ly6C BioLegend 128037 Flow cytometry antibody
Collagenase IV Gibco 17104-019 Enzyme to dissociate CP tissue
DAPI Thermo Scientific 62248 Live/dead marker
EDTA Ion chelator
fine scissors FST 14058-11 Dissection tool
FITC anti-mouse CD45 BioLegend 103108 Flow cytometry antibody
Flow controller infusion inset CareFusion RG-3-C Blood perfusion inset
FlowJo software BD Biosciences Analysis software
forceps FST 11018-12 Dissection tool
Heparin Sigma-Aldrich H3149-10KU Anticoagulant
Imalgene Boehringer Ingelheim Ketamine, anesthesic
OneComp eBeads Invitrogen 01-1111-42 Control beads to realize compensation
PBS-/- Gibco 14190-094 Buffer
PBS+/+ Gibco 14040-091 Buffer
PE anti-mouse CD8a BioLegend 100708 Flow cytometry antibody
PE anti-mouse F4/80 BioLegend 123110 Flow cytometry antibody
PE-Dazzle 594 anti-mouse CD11b BioLegend 101256 Flow cytometry antibody
Rompun Bayer Xylazine, anesthesic
thin forceps Dumoxel Biology 11242-40 Dissection tool
Vetergesic Ceva Buprenorphin, analgesic

References

  1. Morais, L. H., Schreiber, H. L., Mazmanian, S. K. The gut microbiota-brain axis in behaviour and brain disorders. Nature Reviews Microbiology. 19 (4), 241-255 (2021).
  2. Deczkowska, A., Schwartz, M. Targeting neuro-immune communication in neurodegeneration: Challenges and opportunities. Journal of Experimental Medicine. 215 (11), 2702-2704 (2018).
  3. Croese, T., Castellani, G., Schwartz, M. Immune cell compartmentalization for brain surveillance and protection. Nature Immunology. 22 (9), 1083-1092 (2021).
  4. Erny, D., et al. Host microbiota constantly control maturation and function of microglia in the CNS. Nature Neuroscience. 18 (7), 965-977 (2015).
  5. Mrdjen, D., et al. High-dimensional single-cell mapping of central nervous system immune cells reveals distinct myeloid subsets in health, aging, and disease. Immunity. 48 (2), 380-395 (2018).
  6. Korin, B., et al. single-cell characterization of the brain’s immune compartment. Nature Neuroscience. 20 (9), 1300-1309 (2017).
  7. van Hove, H., et al. A single-cell atlas of mouse brain macrophages reveals unique transcriptional identities shaped by ontogeny and tissue environment. Nature Neuroscience. 22 (6), 1021-1035 (2019).
  8. Ajami, B., et al. Single-cell mass cytometry reveals distinct populations of brain myeloid cells in mouse neuroinflammation and neurodegeneration models. Nature Neuroscience. 21 (4), 541-551 (2018).
  9. Wolburg, H., Paulus, W. Choroid plexus: Biology and pathology. Acta Neuropathologica. 119 (1), 75-88 (2010).
  10. Dani, N., et al. A cellular and spatial map of the choroid plexus across brain ventricles and ages. Cell. 184 (11), 3056-3074 (2021).
  11. Falcão, A. M., Marques, F., Novais, A., Sousa, N., Palha, J. A., Sousa, J. C. The path from the choroid plexus to the subventricular zone: Go with the flow. Frontiers in Cellular Neuroscience. 6, (2012).
  12. Shipley, F. B., et al. Tracking calcium dynamics and immune surveillance at the choroid plexus blood-cerebrospinal fluid interface. Neuron. 108 (4), 623-639 (2020).
  13. Mazucanti, C. H., et al. Release of insulin produced by the choroids plexis is regulated by serotonergic signaling. JCI Insight. 4 (23), (2019).
  14. Baruch, K., et al. Aging-induced type I interferon response at the choroid plexus negatively affects brain function. Science. 346 (6205), 89-93 (2014).
  15. Deczkowska, A., et al. Mef2C restrains microglial inflammatory response and is lost in brain ageing in an IFN-I-dependent manner. Nature Communications. 8 (1), (2017).
  16. Silva-Vargas, V., Maldonado-Soto, A. R., Mizrak, D., Codega, P., Doetsch, F. Age-dependent niche signals from the choroid plexus regulate adult neural stem cells. Cell Stem Cell. 19 (5), 643-652 (2016).
  17. Iliff, J. J., et al. Impairment of glymphatic pathway function promotes tau pathology after traumatic brain injury. Journal of Neuroscience. 34 (49), 16180-16193 (2014).
  18. Redzic, Z. B., Preston, J. E., Duncan, J. A., Chodobski, A., Szmydynger-Chodobska, J. The choroid plexus-cerebrospinal fluid system: From development to aging. Current Topics in Developmental Biology. 71, 1-52 (2005).
  19. da Mesquita, S., et al. Functional aspects of meningeal lymphatics in ageing and Alzheimer’s disease. Nature. 560 (7717), 185-191 (2018).
  20. Schwarze, E. -. W. The origin of (Kolmer’s) epiplexus cells. Histochemistry. 44 (1), 103-104 (1975).
  21. Baruch, K., et al. CNS-specific immunity at the choroid plexus shifts toward destructive Th2 inflammation in brain aging. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 110 (6), 2264-2269 (2013).
  22. Kunis, G., et al. IFN-γ-dependent activation of the brain’s choroid plexus for CNS immune surveillance and repair. Brain. 136 (11), 3427-3440 (2013).
  23. Prinz, M., Priller, J. Microglia and brain macrophages in the molecular age: From origin to neuropsychiatric disease. Nature Reviews Neuroscience. 15 (5), 300-312 (2014).
  24. Goldmann, T., et al. fate and dynamics of macrophages at central nervous system interfaces. Nature Immunology. 17 (7), 797-805 (2016).
  25. Fung, I. T. H., et al. Activation of group 2 innate lymphoid cells alleviates aging-associated cognitive decline. Journal of Experimental Medicine. 217 (4), (2020).
  26. Kertser, A., et al. Corticosteroid signaling at the brain-immune interface impedes coping with severe psychological stress. Science Advances. 5, 4111 (2019).
  27. Shechter, R., et al. Recruitment of beneficial M2 macrophages to injured spinal cord is orchestrated by remote brain choroid plexus. Immunity. 38 (3), 555-569 (2013).
  28. Yang, A. C., et al. Dysregulation of brain and choroid plexus cell types in severe COVID-19. Nature. 595 (7868), 565-571 (2021).
  29. Baruch, K., et al. PD-1 immune checkpoint blockade reduces pathology and improves memory in mouse models of Alzheimer’s disease. Nature Medicine. 22 (2), 135-137 (2016).
  30. Baruch, K., et al. Breaking immune tolerance by targeting Foxp3+ regulatory T cells mitigates Alzheimer’s disease pathology. Nature Communications. 6, 7967 (2015).
  31. Rodríguez-Rodríguez, N., Flores-Mendoza, G., Apostolidis, S. A., Rosetti, F., Tsokos, G. C., Crispín, J. C. TCR-α/β CD4 − CD8 − double negative T cells arise from CD8 + T cells. Journal of Leukocyte Biology. 108 (3), 851-857 (2020).
  32. Schafflick, D., et al. Single-cell profiling of CNS border compartment leukocytes reveals that B cells and their progenitors reside in non-diseased meninges. Nature Neuroscience. 24 (9), 1225-1234 (2021).
  33. Quintana, E., et al. DNGR-1+ dendritic cells are located in meningeal membrane and choroid plexus of the noninjured brain. GLIA. 63 (12), 2231-2248 (2015).
  34. Kabashima, K., et al. Biomarkers for evaluation of mast cell and basophil activation. Immunological Reviews. 282 (1), 114-120 (2018).
  35. Li, Q., Barres, B. A. Microglia and macrophages in brain homeostasis and disease. Nature Reviews Immunology. 18 (4), 225-242 (2018).
  36. Borst, K., Dumas, A. A., Prinz, M. Microglia: Immune and non-immune functions. Immunity. 54 (10), 2194-2208 (2021).
check_url/63487?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Dominguez-Belloso, A., Schmutz, S., Novault, S., Travier, L., Deczkowska, A. Isolation and Characterization of the Immune Cells from Micro-dissected Mouse Choroid Plexuses. J. Vis. Exp. (180), e63487, doi:10.3791/63487 (2022).

View Video