Summary

Utilisation d’une injection de traceur cellulaire pour étudier l’origine des cellules formant neointima dans un modèle de paroi latérale sacculaire de rat

Published: March 16, 2022
doi:

Summary

Nous avons effectué une injection de traceur cellulaire lipophile en un point pour suivre les cellules endothéliales, suivie d’une artériotomie et de la suture d’anévrismes de la paroi latérale sur l’aorte abdominale du rat. La formation de Néoinntima semblait dépendre de l’artère mère dans les anévrismes décellularisés et était favorisée par le recrutement de cellules de la paroi de l’anévrisme dans les parois riches en cellules vitales.

Abstract

La coupure microchirurgicale crée une barrière ultérieure du flux sanguin dans les anévrismes intracrâniens, tandis que le traitement endovasculaire repose sur la formation de néoinntima et de thrombus. La source des cellules endothéliales recouvrant la couche endoluminale du néointame reste incertaine. Par conséquent, l’objectif de la présente étude était d’étudier l’origine des cellules formant le néoinntima après injection de traceur cellulaire dans le modèle d’anévrisme microchirurgical de la paroi latérale du rat d’Helsinki déjà bien établi.

Les anévrismes des flancs ont été créés en suturant des poches artérielles décellularisées ou vitales côte à côte de l’aorte chez les rats Lewis mâles. Avant l’artériotomie avec suture d’anévrisme, une injection de traceur cellulaire contenant du colorant CM-Dil a été effectuée dans l’aorte serrée pour marquer les cellules endothéliales dans le vaisseau adjacent et suivre leur prolifération pendant le suivi (FU). Traitement suivi d’un enroulement (n = 16) ou d’une endoprothèse (n = 15). À FU (7 jours ou 21 jours), tous les rats ont subi une angiographie par fluorescence, suivie d’une récolte d’anévrisme et d’une évaluation macroscopique et histologique avec un nombre de cellules immunohistologiques pour des régions d’intérêt spécifiques.

Aucun des 31 anévrismes ne s’était rompu lors du suivi. Quatre animaux sont morts prématurément. Une perfusion macroscopiquement résiduelle a été observée chez 75,0 % de rats enroulés et 7,0 % de rats stentés. La quantité de cellules cell-tracer-positives était significativement élevée dans les stents décellularisés par rapport aux anévrismes enroulés en ce qui concerne le thrombus au jour 7 (p = 0,01) et le néointame au jour 21 (p = 0,04). Aucune différence significative n’a été trouvée dans le thrombus ou le néointame dans les anévrismes vitaux.

Ces résultats confirment des schémas de guérison pires dans les anévrismes enroulés par rapport aux anévrismes à stent. La formation de Neointima semble particulièrement dépendante de l’artère mère dans les anévrismes décellularisés, alors qu’elle est soutenue par le recrutement à partir des cellules de la paroi de l’anévrisme dans les parois riches en cellules vitales. En termes de traduction, le traitement par stent pourrait être plus approprié pour les anévrismes fortement dégénérés, tandis que l’enroulement seul pourrait être adéquat pour les anévrismes avec des parois vasculaires pour la plupart saines.

Introduction

L’hémorragie sous-arachnoïdienne causée par la rupture d’un anévrisme intracrânien (IA) est une affection neurochirurgicale dévastatrice associée à une morbidité et une mortalité élevées 1,2,3,4. En plus de la coupure microchirurgicale, qui fournit un contact direct entre l’endothélium et l’endothélium, les dispositifs endovasculaires ont acquis une importance croissante au cours des dernières décennies pour traiter les IA rompues et découvertes accidentellement. La réponse cicatrisante dans les IA traitées par endovasculairement dépend principalement de la formation de néointame et de l’organisation du thrombus. Les deux sont des processus synergiques, en fonction de la migration cellulaire du vaisseau adjacent et de la paroi de l’anévrisme. 5 À ce jour, l’origine des cellules endothéliales dans la formation de néoiintima des anévrismes endovasculaires traités reste incertaine. Il y a un débat en cours dans la littérature sur la source à partir de laquelle les cellules formant la néoinntima sont recrutées.

En utilisant une injection de traceur cellulaire de colorant CM-Dil (voir le tableau des matériaux) dans l’aorte abdominale de rats, nous avons cherché à analyser le rôle des cellules endothéliales, provenant de l’artère mère, dans la formation de néointame à deux points temporels DIFFÉRENTS (jour 7 et jour 21) (Figure 1). Un avantage du modèle est l’incubation directe in vivo d’un traceur cellulaire local dans une artère parente avant la suture de l’anévrisme, permettant l’UF à des moments ultérieurs. Les techniques d’injection in vivo , telles que l’incubation par traceur cellulaire, n’ont pas été décrites dans la littérature. Un avantage de cette technique est l’injection directe, en un point, peropératoire, in vivo , qui rend le modèle robuste et reproductible.

Protocol

Le soutien vétérinaire a été effectué conformément aux directives institutionnelles. Les expériences ont été approuvées par le Comité local d’éthique de suisse (BE 60/19). Les directives ARRIVE et les principes 3R ont été strictement suivis 6,7. Trente et un rats Lewis mâles, âgés de 12 semaines et pesant 492 ± 8 g, ont été inclus. Hébergez tous les rats à une température ambiante de 23 °C et à un cycle lumière/obscurité de 12 h. Four…

Representative Results

Au total, 31 animaux ont été inclus en laboratoire : 27 rats ont été inclus dans l’analyse statistique finale; 4 rats sont morts prématurément (taux de mortalité de 12,9%). En peropératoire, la distension respiratoire a été significativement réduite (p = 0,03) chez les rats stent( 12,9 μm ± 0,7) par rapport aux rats traités par bobine (13,5 μm ± 0,6). Une angiographie par fluorescence a été réalisée pour chaque rat à la fin de l’UF finale. La reperfusion a été indiquée chez les 6 anim…

Discussion

Cette étude démontre que la formation de néointame est médiée par des cellules endothéliales provenant de l’artère mère du complexe anévrisme, mais est soutenue par le recrutement de cellules dérivées de la paroi de l’anévrisme dans les anévrismes vitaux. Néanmoins, le rôle des cellules progénitrices circulantes dans la guérison de l’anévrisme reste controversé12,13. Dans l’ensemble, 31 rats Lewis mâles ont été inclus dans cette enqu…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Les auteurs remercient Alessandra Bergadano, DVM, PhD, pour la supervision dédiée de la santé animale à long terme. Ce travail a été soutenu par les fonds de recherche du Conseil de la recherche, du Kantonsspital Aarau, Aarau, Suisse, et du Fonds national suisse de la recherche scientifique FNS (310030_182450).

Materials

3-0 resorbable suture Ethicon Inc., USA VCP428G
4-0 non-absorbable suture B. Braun, Germany G0762563
6-0 non-absorbable suture B. Braun, Germany C0766070
9-0 non-absorbable suture B. Braun, Germany G1111140
Atipamezol Arovet AG, Switzerland
Bandpass filter blue Thorlabs FD1B any other
Bandpass filter green Thorlabs FGV9 any other
Bipolar forceps any other
Bicycle spotlight any other
Board (20 x 10 cm) any other
Buprenorphine Indivior, Switzerland 1014197
Camera Sony NEX-5R, Sony, Tokyo, Japan
Cannula (27-1/2 G) any other
Cell count software Image-J version 1.52n, U.S. National Institutes of Health, Bethesda, Maryland, USA, https://imagej.nih.gov/ij/
CellTracker CM-Dil dye ThermoFisher SCIENTIFIC, USA C7000
Coil-Device Styker, Kalamazoo, MI, USA 2 cm of Target 360 TM Ultra, 2-mm diameter
Desinfection any other
Eye-lubricant any other
Fentanyl Sintetica, S.A., Switzerland 98683 any generic
Flumazenil Labatec-Pharma, Switerzland
Fluoresceine Curatis AG 5030376 any generic
Fluorescence microscope Olympus BX51, Hamburg, Germany; Cell Sens Dimension Imaging software v1.8
Foil mask any other
Glucose (5%) any other
Heating pad Homeothermic Control Unit, Harvard, Edenbridge, England any other
Isotonic sodium chloride solution (0.9%) Fresenius KABI 336769 any generic
Isoflurane any generic
Longuettes any other
Meloxicam Boehringer Ingelheim P7626406 any generic
Medetomidine Virbac, Switzerland QN05CM91
Micro needle holder any other
Midazolam Roche, Switzerland
Monitoring-system Starr Life Sciences Corp., 333 Allegheny Ave, Oakmont, PA 15139, United States
Needle holder any other
O2-Face mask any other
Operation microscope OPMI, Carl Zeiss AG, Oberkochen, Germany any other
Oxygen any other
Rectal temperature probe any other
Scalpell Swann-Morton 210 any other
Small animal shaver any other
Smartphone any other
Sodium dodecyl sulfate (0.1%) Sigma-Aldrich 11667289001
Soft feed Emeraid Omnivore any generic
Soft tissue forceps any other
Soft tissue spreader any other
Stainless steel sponge bowls any other
Stent-Device Biotroni, Bülach, Switzerland modified magmaris device, AMS with polymer coating, 6-mm length, 2-mm diameter
Sterile micro swabs any other
Straight and curved microforceps any other
Straight and curved microscissors any other
Straight and curved forceps any other
Surgery drape any other
Surgical scissors any other
Syringes 1 mL, 2 mL, and 5 mL any other
Tape any other
Vascular clip applicator B. Braun, Germany FT495T
Yasargil titan standard clip (2x) B. Braun Medical AG, Aesculap, Switzerland FT242T temporary

References

  1. Vergouwen, M. D., et al. Definition of delayed cerebral ischemia after aneurysmal subarachnoid hemorrhage as an outcome event in clinical trials and observational studies: proposal of a multidisciplinary research group. Stroke. 41 (10), 2391-2395 (2010).
  2. Macdonald, R. L., et al. Preventing vasospasm improves outcome after aneurysmal subarachnoid hemorrhage: rationale and design of CONSCIOUS-2 and CONSCIOUS-3 trials. Neurocritical Care. 13 (3), 416-424 (2010).
  3. Wanderer, S., et al. Levosimendan as a therapeutic strategy to prevent neuroinflammation after aneurysmal subarachnoid hemorrhage. Journal of Neurointerventional Surgery. , (2021).
  4. Wanderer, S., et al. Aspirin treatment prevents inflammation in experimental bifurcation aneurysms in New Zealand White rabbits. Journal of Neurointerventional Surgery. 14 (2), 189-195 (2021).
  5. Gruter, B. E., et al. Patterns of neointima formation after coil or stent treatment in a rat saccular sidewall aneurysm model. Stroke. 52 (3), 1043-1052 (2021).
  6. Kilkenny, C., et al. Animal research: reporting in vivo experiments: the ARRIVE guidelines. British Journal of Pharmacology. 160 (7), 1577-1579 (2010).
  7. Tornqvist, E., et al. Strategic focus on 3R principles reveals major reductions in the use of animals in pharmaceutical toxicity testing. PLoS One. 9 (7), 101638 (2014).
  8. Nevzati, E., et al. Aneurysm wall cellularity affects healing after coil embolization: assessment in a rat saccular aneurysm model. Journal of Neurointerventional Surgery. 12 (6), 621-625 (2020).
  9. Marbacher, S., et al. The Helsinki rat microsurgical sidewall aneurysm model. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (92), e51071 (2014).
  10. Nevzati, E., et al. Biodegradable magnesium stent treatment of saccular aneurysms in a rt model – introduction of the surgical technique. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (128), e56359 (2017).
  11. Gruter, B. E., et al. Testing bioresorbable stent feasibility in a rat aneurysm model. Journal of Neurointerventional Surgery. 11 (10), 1050-1054 (2019).
  12. Kadirvel, R., et al. Cellular mechanisms of aneurysm occlusion after treatment with a flow diverter. Radiology. 270 (2), 394-399 (2014).
  13. Li, Z. F., et al. Endothelial progenitor cells contribute to neointima formation in rabbit elastase-induced aneurysm after flow diverter treatment. CNS Neuroscience & Therapeutics. 19 (5), 352-357 (2013).
  14. Marbacher, S., et al. Intraluminal cell transplantation prevents growth and rupture in a model of rupture-prone saccular aneurysms. Stroke. 45 (12), 3684-3690 (2014).
  15. Frosen, J., et al. Contribution of mural and bone marrow-derived neointimal cells to thrombus organization and wall remodeling in a microsurgical murine saccular aneurysm model. Neurosurgery. 58 (5), 936-944 (2006).
  16. Marbacher, S., Niemela, M., Hernesniemi, J., Frosen, J. Recurrence of endovascularly and microsurgically treated intracranial aneurysms-review of the putative role of aneurysm wall biology. Neurosurgical Review. 42 (1), 49-58 (2019).
  17. Frosen, J. Smooth muscle cells and the formation, degeneration, and rupture of saccular intracranial aneurysm wall–a review of current pathophysiological knowledge. Translational Stroke Research. 5 (3), 347-356 (2014).
  18. Fang, X., et al. Bone marrow-derived endothelial progenitor cells are involved in aneurysm repair in rabbits. Journal of Clinical Neuroscience. 19 (9), 1283-1286 (2012).
  19. Morel, S., et al. Sex-related differences in wall remodeling and intraluminal thrombus resolution in a rat saccular aneurysm model. Journal of Neurosurgery. , 1-14 (2019).
  20. Gruter, B. E., et al. Fluorescence video angiography for evaluation of dynamic perfusion status in an aneurysm preclinical experimental setting. Operative Neurosurgery. 17 (4), 432-438 (2019).
  21. Marbacher, S., Strange, F., Frosen, J., Fandino, J. Preclinical extracranial aneurysm models for the study and treatment of brain aneurysms: A systematic review. Journal of Cerebral Blood Flow & Metabolism. 40 (5), 922-938 (2020).
  22. Ravindran, K., et al. Mechanism of action and biology of flow diverters in the treatment of intracranial aneurysms. Neurosurgery. 86, 13-19 (2020).
  23. Marbacher, S., et al. Loss of mural cells leads to wall degeneration, aneurysm growth, and eventual rupture in a rat aneurysm model. Stroke. 45 (1), 248-254 (2014).
  24. Morosanu, C. O., et al. Neurosurgical cadaveric and in vivo large animal training models for cranial and spinal approaches and techniques – systematic review of current literature. Neurologia i Neurochirurgia Polska. 53 (1), 8-17 (2019).
  25. Wanderer, S., et al. Arterial pouch microsurgical bifurcation aneurysm model in the rabbit. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (159), e61157 (2020).
check_url/63580?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Wanderer, S., Grüter, B. E., Kümin, J., Boillat, G., Sivanrupan, S., Catalano, K., von Gunten, M., Widmer, H. R., Marbacher, S., Andereggen, L. Using a Cell-Tracer Injection to Investigate the Origin of Neointima-Forming Cells in a Rat Saccular Side Wall Model. J. Vis. Exp. (181), e63580, doi:10.3791/63580 (2022).

View Video