Summary

Full Spectrum Flow Cytometry에 의한 Primary Murine T-cell의 T 세포 수용체 유도 칼슘 유입 분석

Published: December 16, 2022
doi:

Summary

T 세포 신호 전달의 척도인 칼슘 유입은 T 세포 수용체 자극에 대한 반응을 분석하는 효과적인 방법입니다. Indo-1을 세포 표면 분자를 겨냥한 항체 패널과 다중화하기 위한 이 프로토콜은 전체 스펙트럼 유세포 분석의 매우 유연한 기능을 활용합니다.

Abstract

T 세포 수용체 자극에 대한 반응으로 칼슘 유입은 T 세포 신호 전달의 일반적인 척도입니다. 띠 통과 유세포 분석에 의한 칼슘 신호 전달을 평가하기 위해 여러 칼슘 지표 염료가 개발되었습니다. 이 프로토콜은 전체 스펙트럼 유세포 분석을 사용하여 일차 쥐 T 세포에서 칼슘 반응을 측정하도록 설계되었습니다. 총 비장 세포는 세포 표면 분자에 대한 형광 색소 접합 항체 패널과 함께 비율 계량 칼슘 지표 염료 Indo-1로 표지됩니다. 전체 스펙트럼 유세포 분석의 기능을 활용하면 Indo-1과 함께 다양한 세포 표면 염색을 활용할 수 있는 플랫폼이 제공됩니다. 이어서, 세포는 T 세포 수용체를 자극하기 위해 항-CD3 항체의 첨가 전후에 37°C에서 실시간으로 분석된다. 스펙트럼 신호를 혼합하지 않은 후, 칼슘 결합 대 칼슘이 없는 Indo-1의 비율이 계산되고 비장 세포의 각 게이트 집단에 대해 시간 경과에 따라 시각화될 수 있습니다. 이 기술을 사용하면 여러 세포 집단에서 칼슘 반응을 동시에 분석할 수 있습니다.

Introduction

T 세포 수용체(TCR) 유도 칼슘 유입은 T 세포 활성화의 유용한 척도이며 T 세포 집단이 TCR 신호 전달 경로1의 근위 단계에서 손상된 반응을 갖는지 여부를 결정하는 데 자주 사용됩니다. 칼슘 유입의 측정은 일반적으로 하나 또는 한 쌍의 형광 칼슘 지시약 염료로 T 세포를 사전 표지한 다음 TCR 가교 실시간으로 유세포 분석을 사용하여 형광 신호를 검사하여 수행됩니다 2,3,4. 비율 미터법 칼슘 염료인 Indo-1은 칼슘 결합5에 따라 두 가지 다른 파장에서 피크 방출로 UV 레이저에 의해 여기되며, 살아있는 림프구의 칼슘 반응에 대한 유세포 분석 분석에 일반적으로 사용되는 지표 염료입니다. Indo-1의 방출 프로파일이 매우 광범위하기 때문에 Indo-1 평가와 대역 통과 유세포 분석에 의한 여러 세포 표면 마커의 동시 분석을 결합하는 것은 어려울 수 있습니다. 이러한 제한은 T 세포의 사전 정제된 집단 또는 제한된 세포 표면 분자 세트에 의해 식별된 집단에 대한 칼슘 반응의 유세포 분석 분석의 활용을 제한합니다.

띠통과 유세포 분석을 사용하여 원발성 림프구의 이질적인 집단에 대한 칼슘 반응 측정의 한계를 해결하기 위해 전체 스펙트럼 유세포 분석을 사용하여 Indo-1 형광을 측정하는 프로토콜이 개발되었습니다. 이 방법을 사용하면 Indo-1을 세포 표면 분자를 겨냥한 항체 패널과 다중화할 수 있으며, 전체 스펙트럼 유세포 분석의 매우 유연한 기능을 활용할 수 있습니다. 기존의 유세포 분석에 비해 전체 스펙트럼 유세포 분석을 사용하면 형광 신호와 고도로 겹치는 염료를 구별할 수 있어 각 샘플에서 동시에 평가할 수 있는 표면 마커의 수가 증가한다는 장점이 있습니다. 종래의 유세포 분석은 대역통과 필터를 사용하며, 검출기 시스템당 하나의 형광색소로 제한된다6. 전체 스펙트럼 유세포 분석은 5-레이저 스펙트럼 유세포 분석 시스템 7,8에서 64개의 검출기를 사용하여 형광색소의 전체 스펙트럼에 걸쳐 신호를 수집합니다. 또한, 전체 스펙트럼 유세포 분석은 종래의 유세포 분석기에 존재하는 광전자 증배관 검출기에 비해 감도가 증가한 APD(Avalanche Photo Diode) 검출기를 이용한다8. 결과적으로, 이 접근법은 칼슘 염료 표지 전에 특정 T 세포 집단을 분리할 필요가 없기 때문에 말초 혈액 단핵 세포 또는 쥐 이차 림프 기관 세포 현탁액과 같은 이종 세포 집단에 이상적입니다. 대신, 데이터 수집 후 세포 표면 마커 발현 프로필 및 유세포 분석 게이팅을 사용하여 각 관심 집단에서 칼슘 반응을 평가할 수 있습니다. 이 보고서에서 볼 수 있듯이 Indo-1은 8개의 형광색소 접합 항체와 쉽게 결합되어 총 10개의 고유한 스펙트럼 시그니처를 생성할 수 있습니다. 또한, 이 방법은 선천적으로 구별되는 마우스 계통의 세포 혼합물에 쉽게 적용할 수 있어 유전자 표적 마우스 계통의 칼슘 반응과 비교하여 야생형 T 세포의 칼슘 반응을 동시에 분석할 수 있습니다.

Protocol

마우스는 IACUC 프로토콜에 따라 콜로라도 대학교 안슈츠 메디컬 캠퍼스에서 유지되었습니다. 모든 마우스는 AAALAC 기준에 따라 안락사시켰다. 1. 마우스 비장에서 면역세포의 제조 참고: 순진한 마우스를 CO2 안락사로 안락사시킵니다. Jackson Laboratories에서 구입하여 사내에서 사육한 C57BL/6 마우스를 6-12주령의 실험에 사용합니다. 수컷과 ?…

Representative Results

다중화 표면 염색이 있는 Indo-1 비율계량 염료를 사용하여 일차 쥐 T 세포에서 칼슘 반응을 평가하는 실험 워크플로는 그림 1에 나와 있습니다. 마우스 비장세포를 채취하여 단일 세포 현탁액으로 처리한 후, 세포를 Indo-1 AM 에스테르로 염색하고 표면을 형광 색소 결합 항체로 염색합니다. 염료 로딩 및 항체 염색이 완료되면 림프구 샘플을 생물학적 온도(37°C)로 예열합니다. ?…

Discussion

이 프로토콜은 전체 스펙트럼 유세포 분석 7,8을 사용하여 적정된 Indo-1 비율계량 지표 염료가 로드된 1차 쥐 T 세포에서 칼슘 반응을 측정하도록 설계된 최적화된 분석을 설명합니다. 전체 스펙트럼 유세포 분석을 사용하여 칼슘 플럭스 분석을 수행하는 이점은 Indo-1 형광 평가와 함께 표면 세포 마커 염색을 멀티플렉싱할 수 있다는 것입니다. 전체 스펙?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

R01AI132419, CU | AMC ImmunoMicro 유세포 분석 공유 리소스, RRID:SCR_021321, Aurora 및 SpectroFlo 소프트웨어에 대한 전체 스펙트럼 세포 분석 분석에 대한 지속적인 논의를 해주신 Cytek의 동료들에게 깊은 감사를 드립니다. 피규어는 BioRender.com 로 만들어졌습니다.

Materials

12 well TC treated plates Cell Treat 229111
50 mL conical Greiner Bio1 41-12-17-03 50 mL Polypropylene centrifuge tubes with cap
5mL polysterene flow tubes Corning 352052
5mL syringe BD syringe 309646 plunger only is used sheith is discarded
70uM filter Greiner bio1 542070
aCD3 (17A2) Biolegend 100202
AKC lysis Buffer Gibco A1049201
Aurora Spectral Flowcytometer https://cytekbio.com/pages/aurora
Bath Beads coleparmer Item # UX-06274-52
CD19 PE Tonbo 50-0193-U100
CD1d Tetramer APC NIH
CD25 PECy7 ebioscience 15-0251
CD4 APC Cy7 Tonbo 25-0042-U100
CD8a FITC ebioscience 11-0081-85
Cell Incubator Formal Scientific
Dissection Tools forceps McKesson #487593 Tissue Forceps McKesson Adson 4-3/4 Inch Length Office Grade Stainless Steel NonSterile NonLocking Thumb Handle 1 X 2 Teeth
Dissection Tools Scissors McKesson #970135 Operating Scissors McKesson Argent™ 4-1/2 Inch Surgical Grade Stainless Steel Finger Ring Handle Straight Sharp Tip / Sharp Tip
DPBS 1x Gibco 14190-136 DPBS 
EGTA Fisher NC1280093
FBS Hyclond SH30071.03 lot AE29165301
FlowJo Software https://www.flowjo.com/
Indo1-AM Ester Dye ebioscience 65-085-39 Calcium Loading Dye 
ionomycin Millipore 407951-1mg
Live/Dead Ghost 540 Tonbo 13-0879-T100
Microcentrifuge tubes 1.7mL Light Labs A-7001
Penicillin/Streptomycin/L-Glutamine Gibco 10378-016
PRN694 Med Chem Express Hy-12688
Purified Anti-Mouse CD16/CD32 (FC Shield) (2.4G2) Tonbo 70-0161-M001 FC Block
RPMI Gibco 1875093  + phenol red
RPMI phenol free Gibco 11835030  -phenol red
Table top centrifuge Beckman Coulter Allegra612
TCRβ PerCP Cy5.5 ebioscience 45-5961-82
TCRγ/δ Pe Cy5 ebioscience 15-5961-82
Vi-Cell Blu Reagent Pack Product No: C06019 Includes Tripan
Vi-Cell Blu Beckman Coulter
Waterbath Fisher Brand Dry bath

References

  1. Weiss, A., Imboden, J., Shoback, D., Stobo, J. Role of T3 surface molecules in human T-cell activation: T3-dependent activation results in an increase in cytoplasmic free calcium. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 81 (13), 4169-4173 (1984).
  2. Huang, G. N. Cell calcium mobilization study (flow cytometry). Bio-Protocol. 2 (9), 171 (2012).
  3. June, C. H., Moore, J. S. Measurement of intracellular ions by flow cytometry. Current Protocols in Immunology. , (2004).
  4. Posey, A. D., Kawalekar, O. U., June, C. H. Measurement of intracellular ions by flow cytometry. Current Protocols in Cytometry. 72, 1-21 (2015).
  5. Grynkiewicz, G., Poenie, M., Tsien, R. Y. A new generation of Ca2+ indicators with greatly improved fluorescence properties. The Journal of Biological Chemistry. 260 (6), 3440-3450 (1985).
  6. McKinnon, K. M. Flow cytometry: An overview. Current Protocols in Immunology. 120, 1-11 (2018).
  7. Nolan, J. P., Condello, D. Spectral flow cytometry. Current Protocols in Cytometry. , (2013).
  8. Bonilla, D. L., Reinin, G., Chua, E. Full spectrum flow cytometry as a powerful technology for cancer immunotherapy research. Frontiers in Molecular Biosciences. 7, 612801 (2021).
  9. Zhong, Y., et al. Targeting Interleukin-2-inducible T-cell Kinase (ITK) and Resting Lymphocyte Kinase (RLK) using a novel covalent inhibitor PRN694. The Journal of Biological Chemistry. 290 (10), 5960-5978 (2015).
  10. Gallagher, M. P., et al. Hierarchy of signaling thresholds downstream of the T-cell receptor and the Tec kinase ITK. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 118 (35), 2025825118 (2021).
  11. Andreotti, A. H., Schwartzberg, P. L., Joseph, R. E., Berg, L. J. T-Cell signaling regulated by the tec family kinase, Itk. Cold Spring Harbor Perspectives in Biology. 2 (7), 002287 (2010).
  12. Nakamura, Y. EGTA can inhibit vesicular release in the nanodomain of single Ca2+ channels. Frontiers in Synaptic Neurosciene. 11, 26 (2019).
  13. Cytek Aurora Users Guide. Cytek Available from: https://depts.washington.edu/flowlab/Cell%20Analysis%20Facility/Aurora%20User%20Guide.pdf (2022)
  14. SpctroFlo Software. Cytek Available from: https://cytekbio.com/pages/spectro-flo (2022)
  15. FlowJo Software. Becton-Dickinson Available from: https://www.flowjo.com/solutions/flowjo (2022)
  16. Godfrey, D. I., Zlotnik, A. Control points in early T-cell development. Immunology Today. 14 (11), 547-553 (1993).
  17. Vossen, A. C., et al. Fc receptor binding of anti-CD3 monoclonal antibodies is not essential for immunosuppression, but triggers cytokine-related side effects. European Journal of Immunology. 25 (6), 1492-1496 (1995).
check_url/64526?article_type=t

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Cite This Article
Perrenoud, L., Conley, J., Berg, L. J. Analysis of T-cell Receptor-Induced Calcium Influx in Primary Murine T-cells by Full Spectrum Flow Cytometry. J. Vis. Exp. (190), e64526, doi:10.3791/64526 (2022).

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