Summary

Analys av T-cellreceptorinducerad kalciuminflöde i primära murina T-celler med fullspektrumflödescytometri

Published: December 16, 2022
doi:

Summary

Kalciuminflöde, ett mått på T-cellsignalering, är ett effektivt sätt att analysera svar på T-cellreceptorstimulering. Detta protokoll för multiplexering av Indo-1 med paneler av antikroppar riktade mot cellytemolekyler utnyttjar de mycket flexibla funktionerna hos fullspektrumflödescytometri.

Abstract

Kalciuminflöde som svar på T-cellreceptorstimulering är ett vanligt mått på T-cellsignalering. Flera kalciumindikatorfärgämnen har utvecklats för att bedöma kalciumsignalering med bandpassflödescytometri. Detta protokoll är utformat för att mäta kalciumsvar i primära murina T-celler med hjälp av fullspektrumflödescytometri. Totala splenocyter är märkta med det ratiometriska kalciumindikatorfärgämnet Indo-1, tillsammans med en panel av fluorkromkonjugerade antikroppar mot cellytmolekyler. Att utnyttja kapaciteten hos fullspektrumflödescytometri ger en plattform för att använda ett brett spektrum av cellytefläckar i kombination med Indo-1. Cellerna analyseras sedan i realtid vid 37 °C före och efter tillsats av en anti-CD3-antikropp för att stimulera T-cellreceptorn. Efter blandning av spektralsignalerna beräknas förhållandet mellan kalciumbundet och kalciumfritt Indo-1 och kan visualiseras över tid för varje gated population av splenocyter. Denna teknik kan möjliggöra samtidig analys av kalciumsvar i flera cellpopulationer.

Introduction

T-cellreceptor (TCR) inducerad kalciuminflöde är ett användbart mått på T-cellaktivering och används ofta för att bestämma om en population av T-celler har nedsatt respons i de proximala stegen i TCR-signalvägen1. Mätningar av kalciuminflöde utförs vanligtvis genom att T-cellerna förmärks med ett eller ett par fluorescerande kalciumindikatorfärgämnen och sedan undersöker de fluorescerande signalerna med hjälp av flödescytometri i realtid efter TCR-tvärbindning 2,3,4. Indo-1, ett kvotmetriskt kalciumfärgämne, exciteras av UV-lasern med topputsläpp vid två olika våglängder beroende på kalciumbindning5, och är ett vanligt indikatorfärgämne för flödescytometrianalys av kalciumsvar i levande lymfocyter. Eftersom emissionsprofilen för Indo-1 är ganska bred kan det vara utmanande att kombinera Indo-1-bedömning med samtidig analys av flera cellytemarkörer med bandpassflödescytometri. Denna begränsning begränsar användningen av flödescytometrianalys av kalciumsvar till förrenade populationer av T-celler eller till populationer identifierade av en begränsad uppsättning cellytemolekyler.

För att ta itu med begränsningarna för att mäta kalciumsvar på heterogena populationer av primära lymfocyter med hjälp av bandpassflödescytometri utvecklades ett protokoll för att mäta Indo-1-fluorescens med fullspektrumflödescytometri. Denna metod möjliggör multiplexering av Indo-1 med paneler av antikroppar riktade mot cellytemolekyler, vilket utnyttjar de mycket flexibla funktionerna hos fullspektrumflödescytometri. Fördelen med att använda fullspektrumflödescytometri jämfört med konventionell flödescytometri är dess förmåga att skilja de fluorescerande signalerna från mycket överlappande färgämnen, vilket ökar antalet ytmarkörer som samtidigt kan bedömas i varje prov. Konventionell flödescytometri använder bandpassfilter och är begränsad till en fluorokrom per detektorsystem6. Fullspektrumflödescytometri samlar signaler över hela spektrumet av fluorokrom med hjälp av 64 detektorer på ett femlaserspektralflödescytometrisystem 7,8. Dessutom utnyttjar fullspektrumflödescytometri APD-detektorer (Avalanche Photo Diode) som har ökad känslighet i förhållande till fotomultiplikatorrördetektorer som finns på konventionella flödescytometrar8. Följaktligen är detta tillvägagångssätt idealiskt för de heterogena cellpopulationerna, såsom perifera mononukleära celler eller murina sekundära lymfoida organcellsuspensioner, eftersom det eliminerar behovet av isolering av specifika T-cellpopulationer före kalciumfärgmärkning. Istället kan cellytemarköruttrycksprofiler och flödescytometri gating efter datainsamling användas för att bedöma kalciumsvar i varje population av intresse. Som framgår av denna rapport kan Indo-1 enkelt kombineras med åtta fluorkromkonjugerade antikroppar, vilket resulterar i totalt 10 unika spektrala signaturer. Dessutom kan denna metod lätt tillämpas på blandningar av celler från kongeniskt distinkta muslinjer, vilket möjliggör samtidig analys av kalciumsvar i T-celler av vildtyp jämfört med dem från en genriktad muslinje.

Protocol

Möss upprätthölls vid University of Colorado Anschutz Medical campus i enlighet med IACUC-protokoll. Alla möss avlivades enligt AAALAC-standarder. 1. Beredning av immunceller från mjälten OBS: Avliva naiva möss med CO2 eutanasi. C57BL / 6 möss som köpts från Jackson Laboratories och avlats internt används för experiment vid 6-12 veckors ålder. Både manliga och kvinnliga möss används för experiment. Desinficera m…

Representative Results

Det experimentella arbetsflödet för att bedöma kalciumsvar i primära murina T-celler med användning av ett Indo-1-ratiometriskt färgämne med multiplexerande ytfläckar visas i figur 1. Efter skörd och bearbetning av mussplenocyterna till en enda cellsuspension färgas cellerna med en Indo-1 AM-ester och ytfärgas med fluorkrombundna antikroppar. När färgämnesladdningen och antikroppsfärgningen är klar värms lymfocytproverna upp till en biologisk temperatur (37 °C). Proverna an…

Discussion

Detta protokoll beskriver en optimerad analys utformad för att mäta kalciumsvar i primära murina T-celler laddade med titrerade Indo-1-ratiometriska indikatorfärgämne med fullspektrumflödescytometri 7,8. Fördelen med att utföra kalciumflödesanalyser med fullspektrumflödescytometri är förmågan att multiplexera ytcellmarkörfärgning i kombination med bedömning av Indo-1-fluorescens. Fullspektrumflödescytometri har fördelen att tillåta användning …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

R01AI132419, CU | AMC ImmunoMicro Flow Cytometry Shared Resource, RRID:SCR_021321, Stort tack till våra kollegor på Cytek för kontinuerliga diskussioner om fullständig spektralcytometrisk analys på Aurora och SpectroFlo-programvaran. Siffror skapades med BioRender.com.

Materials

12 well TC treated plates Cell Treat 229111
50 mL conical Greiner Bio1 41-12-17-03 50 mL Polypropylene centrifuge tubes with cap
5mL polysterene flow tubes Corning 352052
5mL syringe BD syringe 309646 plunger only is used sheith is discarded
70uM filter Greiner bio1 542070
aCD3 (17A2) Biolegend 100202
AKC lysis Buffer Gibco A1049201
Aurora Spectral Flowcytometer https://cytekbio.com/pages/aurora
Bath Beads coleparmer Item # UX-06274-52
CD19 PE Tonbo 50-0193-U100
CD1d Tetramer APC NIH
CD25 PECy7 ebioscience 15-0251
CD4 APC Cy7 Tonbo 25-0042-U100
CD8a FITC ebioscience 11-0081-85
Cell Incubator Formal Scientific
Dissection Tools forceps McKesson #487593 Tissue Forceps McKesson Adson 4-3/4 Inch Length Office Grade Stainless Steel NonSterile NonLocking Thumb Handle 1 X 2 Teeth
Dissection Tools Scissors McKesson #970135 Operating Scissors McKesson Argent™ 4-1/2 Inch Surgical Grade Stainless Steel Finger Ring Handle Straight Sharp Tip / Sharp Tip
DPBS 1x Gibco 14190-136 DPBS 
EGTA Fisher NC1280093
FBS Hyclond SH30071.03 lot AE29165301
FlowJo Software https://www.flowjo.com/
Indo1-AM Ester Dye ebioscience 65-085-39 Calcium Loading Dye 
ionomycin Millipore 407951-1mg
Live/Dead Ghost 540 Tonbo 13-0879-T100
Microcentrifuge tubes 1.7mL Light Labs A-7001
Penicillin/Streptomycin/L-Glutamine Gibco 10378-016
PRN694 Med Chem Express Hy-12688
Purified Anti-Mouse CD16/CD32 (FC Shield) (2.4G2) Tonbo 70-0161-M001 FC Block
RPMI Gibco 1875093  + phenol red
RPMI phenol free Gibco 11835030  -phenol red
Table top centrifuge Beckman Coulter Allegra612
TCRβ PerCP Cy5.5 ebioscience 45-5961-82
TCRγ/δ Pe Cy5 ebioscience 15-5961-82
Vi-Cell Blu Reagent Pack Product No: C06019 Includes Tripan
Vi-Cell Blu Beckman Coulter
Waterbath Fisher Brand Dry bath

References

  1. Weiss, A., Imboden, J., Shoback, D., Stobo, J. Role of T3 surface molecules in human T-cell activation: T3-dependent activation results in an increase in cytoplasmic free calcium. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 81 (13), 4169-4173 (1984).
  2. Huang, G. N. Cell calcium mobilization study (flow cytometry). Bio-Protocol. 2 (9), 171 (2012).
  3. June, C. H., Moore, J. S. Measurement of intracellular ions by flow cytometry. Current Protocols in Immunology. , (2004).
  4. Posey, A. D., Kawalekar, O. U., June, C. H. Measurement of intracellular ions by flow cytometry. Current Protocols in Cytometry. 72, 1-21 (2015).
  5. Grynkiewicz, G., Poenie, M., Tsien, R. Y. A new generation of Ca2+ indicators with greatly improved fluorescence properties. The Journal of Biological Chemistry. 260 (6), 3440-3450 (1985).
  6. McKinnon, K. M. Flow cytometry: An overview. Current Protocols in Immunology. 120, 1-11 (2018).
  7. Nolan, J. P., Condello, D. Spectral flow cytometry. Current Protocols in Cytometry. , (2013).
  8. Bonilla, D. L., Reinin, G., Chua, E. Full spectrum flow cytometry as a powerful technology for cancer immunotherapy research. Frontiers in Molecular Biosciences. 7, 612801 (2021).
  9. Zhong, Y., et al. Targeting Interleukin-2-inducible T-cell Kinase (ITK) and Resting Lymphocyte Kinase (RLK) using a novel covalent inhibitor PRN694. The Journal of Biological Chemistry. 290 (10), 5960-5978 (2015).
  10. Gallagher, M. P., et al. Hierarchy of signaling thresholds downstream of the T-cell receptor and the Tec kinase ITK. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 118 (35), 2025825118 (2021).
  11. Andreotti, A. H., Schwartzberg, P. L., Joseph, R. E., Berg, L. J. T-Cell signaling regulated by the tec family kinase, Itk. Cold Spring Harbor Perspectives in Biology. 2 (7), 002287 (2010).
  12. Nakamura, Y. EGTA can inhibit vesicular release in the nanodomain of single Ca2+ channels. Frontiers in Synaptic Neurosciene. 11, 26 (2019).
  13. Cytek Aurora Users Guide. Cytek Available from: https://depts.washington.edu/flowlab/Cell%20Analysis%20Facility/Aurora%20User%20Guide.pdf (2022)
  14. SpctroFlo Software. Cytek Available from: https://cytekbio.com/pages/spectro-flo (2022)
  15. FlowJo Software. Becton-Dickinson Available from: https://www.flowjo.com/solutions/flowjo (2022)
  16. Godfrey, D. I., Zlotnik, A. Control points in early T-cell development. Immunology Today. 14 (11), 547-553 (1993).
  17. Vossen, A. C., et al. Fc receptor binding of anti-CD3 monoclonal antibodies is not essential for immunosuppression, but triggers cytokine-related side effects. European Journal of Immunology. 25 (6), 1492-1496 (1995).
check_url/64526?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Perrenoud, L., Conley, J., Berg, L. J. Analysis of T-cell Receptor-Induced Calcium Influx in Primary Murine T-cells by Full Spectrum Flow Cytometry. J. Vis. Exp. (190), e64526, doi:10.3791/64526 (2022).

View Video