Summary

Bestemmelse af termiske grænser for dyreplankton ved hjælp af en varmeblok

Published: November 18, 2022
doi:

Summary

Denne protokol illustrerer brugen af kommercielt tilgængelige komponenter til at generere en stabil og lineær termisk gradient. En sådan gradient kan derefter anvendes til at bestemme den øvre termiske grænse for planktoniske organismer, især hvirvelløse larver.

Abstract

Termiske grænser og bredde er blevet brugt i vid udstrækning til at forudsige artsfordelingen. Da den globale temperatur fortsætter med at stige, er det afgørende at forstå, hvordan termisk grænse ændres med akklimatisering, og hvordan den varierer mellem livsstadier og populationer, for at bestemme arternes sårbarhed over for fremtidig opvarmning. De fleste marine organismer har komplekse livscyklusser, der omfatter tidlige planktoniske stadier. Mens kvantificering af den termiske grænse for disse små tidlige udviklingsstadier (titusinder til hundreder af mikron) hjælper med at identificere udviklingsmæssige flaskehalse, kan denne proces være udfordrende på grund af den lille størrelse af målorganismer, stort bænkpladsbehov og høje indledende fabrikationsomkostninger. Her præsenteres en opsætning, der er rettet mod små mængder (ml til ti ml). Denne opsætning kombinerer kommercielt tilgængelige komponenter for at generere en stabil og lineær termisk gradient. Produktionsspecifikationer for opsætningen samt procedurer til at introducere og opregne levende versus døde individer og beregne dødelig temperatur præsenteres også.

Introduction

Termisk tolerance er nøglen til organismers overlevelse og funktion 1,2. Da planeten fortsætter med at varme på grund af menneskeskabte kulstofemissioner, lægges der stigende vægt på bestemmelse og anvendelse af termiske grænser3. Forskellige endepunkter, såsom dødelighed, manglende udvikling og tab af mobilitet, er blevet brugt til at bestemme både øvre og nedre termiske grænser4. Disse termiske grænser betragtes ofte som en proxy for en organismes termiske niche. Disse oplysninger bruges igen til at identificere arter, der er mere sårbare over for global opvarmning, samt forudsige fremtidig artsfordeling og de resulterende artsinteraktioner 3,5,6,7. Det kan dog være udfordrende at bestemme termiske grænser, især for små planktoniske organismer.

For planktoniske organismer, især larvestadierne hos marine hvirvelløse dyr, kan den termiske grænse bestemmes ved kronisk eksponering. Kronisk eksponering opnås ved at opdrætte larver ved flere temperaturer over dage til uger og bestemme den temperatur, hvor larveoverlevelse og / eller udviklingshastighed reducerer 8,9,10. Denne tilgang er imidlertid temmelig tidskrævende og kræver store inkubatorer og erfaring med larvehold (se reference11 for en god introduktion til dyrkning af marine hvirvelløse larver).

Alternativt kan akut eksponering for termisk stress bruges til at bestemme termiske grænser. Ofte involverer denne bestemmelsesmetode at placere små hætteglas med larver i temperaturstyrede tørre bade 12,13,14, udnytte termiske gradientfunktioner i PCR-termiske cyklere15,16 eller lægge glasflasker / mikrocentrifugerør langs en termisk gradient genereret ved påført opvarmning og afkøling på enderne af store aluminiumsblokke med huller, hvor hætteglassene passer tæt17, 18,19. Typiske tørre bade genererer en enkelt temperatur; Derfor skal togsæt betjenes samtidigt for at vurdere ydeevnen på tværs af en række temperaturer. Termiske cyklister genererer en gradient, men rummer kun et lille prøvevolumen (120 μL) og kræver omhyggelige manipulationer. I lighed med termiske cyklister skaber store aluminiumblokke lineære og stabile temperaturgradienter. Begge tilgange kan kombineres med logistisk eller probit regression for at beregne den dødelige temperatur for 50% procent af befolkningen (LT50)12,20,21. De anvendte aluminiumsblokke var imidlertid ~ 100 cm lange; Denne størrelse kræver et stort laboratorierum og adgang til specialiserede computer numeriske kontrolfræsemaskiner til at bore hullerne. Sammen med at bruge to vandbade af forskningskvalitet til at opretholde måltemperaturen, er de økonomiske omkostninger ved at samle opsætningen høje.

Derfor sigter dette arbejde mod at udvikle et alternativt middel til at generere en stabil, lineær temperaturgradient med kommercielt tilgængelige dele. Et sådant produkt skal have et lille fodaftryk og bør let kunne anvendes til forsøg med akut termisk stresseksponering for planktonorganismer. Denne protokol er udviklet med zooplankton, der er <1 mm i størrelse som målorganismer, og dermed blev den optimeret til brug af et 1,5 eller 2 ml mikrocentrifugerør. Større undersøgelsesorganismer vil kræve beholdere, der er større end de 1,5 ml mikrocentrifugerør, der anvendes, og forstørrede huller i aluminiumsblokkene.

Ud over at gøre forsøgsapparatet mere tilgængeligt har dette arbejde til formål at forenkle databehandlingsrørledningen. Mens kommerciel statistisk software giver rutiner til at beregne LT50 ved hjælp af logistisk eller probit regression, er licensomkostningerne ikke trivielle. Derfor vil et brugervenligt script, der er afhængig af det open source statistiske program R22 , gøre dataanalyse mere tilgængelig.

Denne protokol viser, hvordan en kompakt varmeblok kan fremstilles med kommercielt tilgængelige dele og anvendes til at udsætte zooplankton (larver af sanddollaren Dendraster excentricus) for akut varmestress for at bestemme deres øvre termiske grænse.

Protocol

1. Fremstilling af varmeblokken Tilslut 120 V, 100 W strimmelvarmeren til reostaten (se Materialetabel). Forbered aluminiumsblokken på 20,3 cm x 15,2 cm x 5 cm x 5 tommer ved at bore 60 huller i et 6 x 10 gitter (se Materialetabel). Sørg for, at hullerne er fordelt 2 cm fra centrum til centrum i begge retninger. Hver skal være 1,1 cm i diameter og 4,2 cm dyb (figur 1).BEMÆRK: Udfør boringen på en fræsemaskine e…

Representative Results

Målet med denne protokol er at bestemme den øvre termiske grænse for zooplankton. For at gøre det er der brug for en stabil og lineær termisk gradient. Den foreslåede opsætning var i stand til at generere en termisk gradient fra 14 °C til 40 °C ved at indstille vandbadstemperaturen til 8 °C og varmeapparatet til 39 °C (figur 2A). Temperaturgradienten kan indsnævres og forskydes ved at ændre slutpunktsværdierne. En termisk gradient med et smallere område (19 °C til 37 °C) ble…

Discussion

Denne protokol giver en tilgængelig og tilpasselig tilgang til at bestemme de termiske grænser for små planktonorganismer gennem akut termisk eksponering. Det 10-hullers design og fleksible temperaturendepunkter, der styres af vandbadet i den nedre ende og varmelegemet i den øvre ende, gør det muligt at bestemme LT50 med præcision. Ved hjælp af denne fremgangsmåde kunne der påvises en forskel i den termiske grænse, der er <1 °C (figur 3). Denne fremgangsmåde giver en h…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbejde støttes af fakultetets forskningsfond for Swarthmore College [KC] og Robert Reynolds og Lucinda Lewis ’70 Summer Research Fellowship for BJ.

Materials

0.45 µm membrane filter VWR 74300-042
½” Acrylic sheet McMaster-Carr 8560K266 Used to construct a ridged case with sufficient insulation.
1 mL syringe VWR 76290-420
2 Channel 7 Thermocouple Types Datalogger Omega Engineering HH506A Can be replaced with any thermometer that will fit inside a microcentrifuge tube
Automatic pipette  Ranin 
Bolt- and Clamp-Mount Strip Heater
with 430 Stainless Steel Sheath, 120V AC, 1-1/2" Wide, 100W
McMaster-Carr 3619K32
Crystal Sea Bioassay Mix Pentair CM2B Use to make aritifical seawater 
Denraster excentricus M-Rep  Sand dollars from California 
Dissecting microscope  Nikon  SMZ645
DIYhz Aluminum Water Cooling Block, Liquid Water Cooler Heat Sink System for PC Computer CPU Graphics Radiator Heatsink Endothermic Head Silver(40 mm x 120 mm x 12 mm) Amazon Connects to water bath and used to cool one end of the block.
Easy-to-Machine MIC6 Cast Aluminum Sheet 2" thick 8" x 8"  McMaster-Carr 86825K953 Machined to 2" x 6" x 8" with 60 equally spaced holes (11 mm dia., 42 mm depth) with two addition holes drilled in one side for thermostat probes.
Economical Flexible Polyethylene Foam Pipe Insulation McMaster-Carr 4530K121 Covers the plastic tubing between chiller and block to reduce heat loss. Can be omitted if temperature range is close to room temperature 
EVERSECU 72w 110-240v Aquarium Water Chiller Warmer/Cooler Temperature Controller for Fish Shrimp Tank Marine Coral Reef Tank Below 20 L/30 L Aquarium Chiller Amazon Can be used in place of the lab-grade water bath 
Example with larval sand dollar 
GENNEL 100 g Silver Silicone Thermal Conductive Compound Grease Paste For GPU CPU IC LED Ovens Cooling Amazon Improves the thermal conductance between the block and the heating and cooling elements.
Inkbird WiFi Reptile Thermostat Temperature Controller with 2 Probes and 2 Outlets, IPT-2CH Reptiles Heat Mat Thermostat (Max 250 W per Outlet) Amazon Monitors hot and cold ends. Maintains hot end in range
Lauda Ecoline Silver Air-Cooled Refrigerated Circulators VWR 89202-386 Can be replaced with an aquarium chiller 
Microcentrifuge Tubes VWR 76019-014 If larger animals are used, scanilation vials (VWR 66022-004) is a good alternative 
Nitex mesh filter  Self made Used hot glue to attached Nitex mesh to 1/2" PVC tubing 
Pasteur pipette VWR 14673-010
Potassium Chloride (0.35 M)  Millpore-Sigma P3911-500G
R statistical software.  The R Project for Statistical Computing
Syringe needle VWR 89219-346 Depending on size of target organism gague 14 and 16 can be used
Tygon Tubing  McMaster-Carr 5233K65 Adjust to match the chiller and block used 
Zoo Med Repti Temp Rheostat Chewy.com Rated to 150 W and rewired to feed directly into the heating element. Used to control rate of heat output

References

  1. Dowd, W. W., King, F. A., Denny, M. W. Thermal variation, thermal extremes and the physiological performance of individuals. Journal of Experimental Biology. 218 (12), 1956-1967 (2015).
  2. García, F. C., Bestion, E., Warfield, R., Yvon-Durocher, G. Changes in temperature alter the relationship between biodiversity and ecosystem functioning. Proceedings of the National Academy of Sciences. 115 (43), 10989-10994 (2018).
  3. Sinclair, B. J., et al. Can we predict ectotherm responses to climate change using thermal performance curves and body temperatures. Ecology Letters. 19 (11), 1372-1385 (2016).
  4. Lutterschmidt, W. I., Hutchison, V. H. The critical thermal maximum: history and critique. Canadian Journal of Zoology. 75 (10), 1561-1574 (1997).
  5. Bennett, J. M., et al. The evolution of critical thermal limits of life on Earth. Nature Communications. 12 (1), 1198 (2021).
  6. Sunday, J. M., Bates, A. E., Dulvy, N. K. Thermal tolerance and the global redistribution of animals. Nature Climate Change. 2 (9), 686-690 (2012).
  7. Deutsch, C. A., et al. Impacts of climate warming on terrestrial ectotherms across latitude. Proceedings of the National Academy of Sciences. 105 (18), 6668-6672 (2008).
  8. Collin, R., Chan, K. Y. K. The sea urchin Lytechinus variegatus lives close to the upper thermal limit for early development in a tropical lagoon. Ecology and Evolution. 6 (16), 5623-5634 (2016).
  9. Wang, W., Ding, M. -. w., Li, X. -. x., Wang, J., Dong, Y. -. w. Divergent thermal sensitivities among different life stages of the pulmonate limpet Siphonaria japonica. Marine Biology. 164 (6), 1-10 (2017).
  10. Mak, K. K. -. Y., Chan, K. Y. K. Interactive effects of temperature and salinity on early life stages of the sea urchin Heliocidaris crassispina. Marine Biology. 165 (3), 1-11 (2018).
  11. Strathmann, R. R. Culturing larva of marine invertebrates. Developmental Biology of the Sea Urchin and Other Marine Invertebrates. , 1-25 (2014).
  12. Stillman, J. H., Somero, G. N. A comparative analysis of the upper thermal tolerance limits of Eastern Pacific porcelain crabs, Genus Petrolisthes: Influences of latitude, vertical Zonation, acclimation, and phylogeny. Physiological and Biochemical Zoology. 73 (2), 200-208 (2000).
  13. Sasaki, M. C., Dam, H. G. Integrating patterns of thermal tolerance and phenotypic plasticity with population genetics to improve understanding of vulnerability to warming in a widespread copepod. Global Change Biology. 25 (12), 4147-4164 (2019).
  14. Sasaki, M. C., Dam, H. G. Genetic differentiation underlies seasonal variation in thermal tolerance, body size, and plasticity in a short-lived copepod. Ecology and Evolution. 10 (21), 12200-12210 (2020).
  15. Kelly, M. W., Sanford, E., Grosberg, R. K. Limited potential for adaptation to climate change in a broadly distributed marine crustacean. Proceedings of the Royal Society B: Biological Sciences. 279 (1727), 349-356 (2012).
  16. Rivera, H. E., Chen, C. -. Y., Gibson, M. C., Tarrant, A. M. Plasticity in parental effects confers rapid larval thermal tolerance in the estuarine anemone Nematostella vectensis. Journal of Experimental Biology. 224 (5), 236745 (2021).
  17. Sewell, M. A., Young, C. M. Temperature limits to fertilization and early development in the tropical sea urchin Echinometra lucunter. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology. 236 (2), 291-305 (1999).
  18. Walther, K., Crickenberger, S. E., Marchant, S., Marko, P. B., Moran, A. L. Thermal tolerance of larvae of Pollicipes elegans, a marine species with an antitropical distribution. Marine Biology. 160 (10), 2723-2732 (2013).
  19. Byrne, M., Gall, M. L., Campbell, H., Lamare, M. D., Holmes, S. P. Staying in place and moving in space: contrasting larval thermal sensitivity explains distributional changes of sympatric sea urchin species to habitat warming. Global Change Biology. 28 (9), 3040-3053 (2022).
  20. Zippay, M. L., Hofmann, G. E. Physiological tolerances across latitudes: thermal sensitivity of larval marine snails (Nucella spp). Marine Biology. 157 (4), 707-714 (2010).
  21. Collin, R., Rebolledo, A. P., Smith, E., Chan, K. Y. K. Thermal tolerance of early development predicts the realized thermal niche in marine ectotherms. Functional Ecology. 35 (8), 1679-1692 (2021).
  22. R Core Team. R: A language and environment for statistical computing. R Foundation for Statistical Computing. , (2021).
  23. Venables, W. N., Ripley, B. D. . Modern Applied Statistics with S-PLUS. Fourth edn. , (2002).
  24. Fumo, J. T., et al. Contextualizing marine heatwaves in the southern California bight under anthropogenic climate change. Journal of Geophysical Research: Oceans. 125 (5), (2020).
  25. Wheeler, M. W., Park, R. M., Bailer, A. J. Comparing median lethal concentration values using confidence interval overlap or ratio tests. Environmental Toxicology and Chemistry: An International Journal. 25 (5), 1441-1444 (2006).
  26. Kingsolver, J. G., MacLean, H. J., Goddin, S. B., Augustine, K. E. Plasticity of upper thermal limits to acute and chronic temperature variation in Manduca sexta larvae. Journal of Experimental Biology. 219 (9), 1290-1294 (2016).
  27. Kuo, E. S. L., Sanford, E. Geographic variation in the upper thermal limits of an intertidal snail: implications for climate envelope models. Marine Ecology Progress Series. 388, 137-146 (2009).
  28. Hammond, L. M., Hofmann, G. E. Thermal tolerance of Strongylocentrotus purpuratus early life history stages: mortality, stress-induced gene expression and biogeographic patterns. Marine biology. 157 (12), 2677-2687 (2010).
  29. Sasaki, M., Dam, H. G. Global patterns in copepod thermal tolerance. Journal of Plankton Research. 43 (4), 598-609 (2021).
check_url/64762?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Chan, K. Y. K., Jorgensen, B. K., Scoma, S. Thermal Limits Determination for Zooplankton Using a Heat Block. J. Vis. Exp. (189), e64762, doi:10.3791/64762 (2022).

View Video