Summary

Zellkernisolierung aus kardialen Vorläuferzellen der Maus für die Erstellung von Epigenom- und Genexpressionsprofilen mit Einzelzellauflösung

Published: May 12, 2023
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Summary

Hier stellen wir ein Protokoll vor, das die Präparation von Zellkernen beschreibt. Nach Mikrodissektion und enzymatischer Dissoziation von Herzgewebe in Einzelzellen wurden die Vorläuferzellen eingefroren, gefolgt von der Isolierung von reinen lebensfähigen Zellen, die für die Einzelkern-RNA-Sequenzierung und den Einzelkern-Assay für Transposase-zugängliches Chromatin mit Hochdurchsatz-Sequenzierungsanalysen verwendet wurden.

Abstract

Das sich entwickelnde Herz ist eine komplexe Struktur mit verschiedenen Vorläuferzellen, die von komplexen Regulationsmechanismen gesteuert werden. Die Untersuchung der Genexpression und des Chromatinzustandes einzelner Zellen ermöglicht die Identifizierung des Zelltyps und -zustands. Einzelzell-Sequenzierungsansätze haben eine Reihe wichtiger Merkmale der kardialen Vorläuferzellheterogenität aufgezeigt. Diese Methoden sind jedoch in der Regel auf frisches Gewebe beschränkt, was Studien mit unterschiedlichen Versuchsbedingungen einschränkt, da das frische Gewebe im selben Durchlauf auf einmal verarbeitet werden muss, um die technische Variabilität zu reduzieren. Daher werden in diesem Bereich einfache und flexible Verfahren zur Datengewinnung aus Methoden wie der Einzelkern-RNA-Sequenzierung (snRNA-seq) und dem Einzelkern-Assay für Transposase-zugängliches Chromatin mit Hochdurchsatzsequenzierung (snATAC-seq) benötigt. In dieser Arbeit stellen wir ein Protokoll zur schnellen Isolierung von Zellkernen für nachfolgende Single-Nuclei-Dual-Omics (kombinierte snRNA-seq und snATAC-seq) vor. Diese Methode ermöglicht die Isolierung von Zellkernen aus gefrorenen Proben kardialer Vorläuferzellen und kann mit Plattformen kombiniert werden, die mikrofluidische Kammern verwenden.

Introduction

Unter den Geburtsfehlern sind angeborene Herzfehler (KHK) am häufigsten und treten jedes Jahr bei etwa 1 % der Lebendgeburtenauf 1,2. Genetische Mutationen werden nur in einer Minderheit der Fälle identifiziert, was darauf hindeutet, dass andere Ursachen, wie z. B. Anomalien in der Genregulation, an der Ätiologie der KHK beteiligt sind 2,3. Die kardiale Entwicklung ist ein komplexer Prozess verschiedener und interagierender Zelltypen, was die Identifizierung kausaler nicht-kodierender Mutationen und ihrer Auswirkungen auf die Genregulation schwierig macht. Die Organogenese des Herzens beginnt mit zellulären Vorläuferzellen, aus denen verschiedene Subtypen von Herzzellen hervorgehen, darunter Myokard-, Fibroblasten-, Epikard- und Endokardzellen 4,5. Die Einzelzellgenomik entwickelt sich zu einer Schlüsselmethode für die Untersuchung der Herzentwicklung und die Bewertung der Auswirkungen zellulärer Heterogenität auf Gesundheit und Krankheit6. Die Entwicklung von Multi-Omics-Methoden zur gleichzeitigen Messung verschiedener Parameter und der Ausbau von Rechenpipelines haben die Entdeckung von Zelltypen und -subtypen im normalen und erkrankten Herzen ermöglicht6. Dieser Artikel beschreibt ein zuverlässiges Einzelkern-Isolationsprotokoll für gefrorene kardiale Vorläuferzellen, das aus Mausembryonen gewonnen wurde und mit nachgeschalteten snRNA-seq und snATAC-seq (sowie snRNA-seq und snATAC-seq kombiniert) kompatibel ist7,8,9.

ATAC-seq ist eine robuste Methode, die die Identifizierung regulatorisch offener Chromatinregionen und die Positionierung von Nukleosomenermöglicht 10,11. Diese Informationen werden verwendet, um Rückschlüsse auf den Ort, die Identität und die Aktivität von Transkriptionsfaktoren zu ziehen. Die Aktivität von Chromatinfaktoren, einschließlich Remodelern, sowie die Transkriptionsaktivität der RNA-Polymerase können somit analysiert werden, da die Methode für die Messung quantitativer Veränderungen in der Chromatinstruktur hochempfindlich ist 1,2. Somit bietet ATAC-seq einen robusten und unparteiischen Ansatz, um die Mechanismen aufzudecken, die die transkriptionelle Regulation in einem bestimmten Zelltyp steuern. ATAC-seq-Protokolle wurden auch validiert, um die Chromatinzugänglichkeit in einzelnen Zellen zu messen, was die Variabilität der Chromatinarchitektur innerhalb von Zellpopulationen aufzeigt10,12,13.

Obwohl es in den letzten Jahren bemerkenswerte Fortschritte auf dem Gebiet der Einzelzellen gegeben hat, besteht die Hauptschwierigkeit in der Verarbeitung der frischen Proben, die für die Durchführung dieser Experimente benötigt werden14. Um diese Schwierigkeit zu umgehen, wurden verschiedene Tests mit dem Ziel durchgeführt, Analysen wie snRNA-seq und snATAC-seq mit gefrorenem Herzgewebe oder -zellen durchzuführen15,16.

Mehrere Plattformen wurden verwendet, um Einzelzell-Genomikdaten zu analysieren17. Die weit verbreiteten Plattformen für die Einzelzell-Genexpression und die ATAC-Profilerstellung sind Plattformen für die Verkapselung mehrerer mikrofluidischer Tröpfchen17. Da diese Plattformen mikrofluidische Kammern verwenden, können Schmutz oder Aggregate das System verstopfen, was zu unbrauchbaren Daten führt. Der Erfolg von Einzelzellstudien hängt also von der genauen Isolierung einzelner Zellen/Kerne ab.

Das hier vorgestellte Protokoll verwendet einen ähnlichen Ansatz wie neuere Studien, in denen snRNA-seq und snATAC-seq verwendet werden, um angeborene Herzfehler zu verstehen 18,19,20,21,22,23. Bei diesem Verfahren wird die enzymatische Dissoziation von frisch mikropräpariertem Herzgewebe mit anschließender Kryokonservierung von kardialen Vorläuferzellen der Maus verwendet. Nach dem Auftauen werden die lebensfähigen Zellen gereinigt und für die Kernisolierung aufbereitet. In dieser Arbeit wurde dieses Protokoll erfolgreich verwendet, um snRNA-seq- und snATAC-seq-Daten aus der gleichen Kernpräparation von kardialen Vorläuferzellen der Maus zu erhalten.

Protocol

Das in dieser Studie angewandte Tierverfahren wurde von den Tierethikkommissionen der Universität Aix-Marseille (C2EA-14) genehmigt und gemäß den Protokollen durchgeführt, die von der ernannten nationalen Ethikkommission für Tierversuche (Ministère de l’Education Nationale, de l’Enseignement Supérieur et de la Recherche; Autorisierung Apafis Nr. 33927-2021111715507212). 1. Einrichten der zeitgesteuerten Paarung vor der Präparation Um Mausembryonen zu erzeugen…

Representative Results

Im Vergleich zur Herstellung von Einzelzellsuspensionen für Einzelzellansätze ist die Herstellung von Einzelkernsuspensionen wesentlich anspruchsvoller und erfordert einen höheren Auflösungs- und Verarbeitungsgrad. Der Schlüsselfaktor für eine erfolgreiche Kombination von snRNA-seq und snATAC-seq ist eine saubere und intakte Zellkernsuspension. Das Protokoll für eine effiziente Zellkernisolierung muss an jeden Gewebetyp und -zustand (frisch oder gefroren) angepasst werden. In dieser Arbeit wird ein optimiertes Pro…

Discussion

Die Analyse der zellulären Zusammensetzung des sich entwickelnden Herzens durch kombinierte snRNA-seq- und snATAC-seq-Studien liefert ein tieferes Verständnis der Entstehung von angeborenen Herzfehlern26. Mehrere Forschungslabore haben die Auswirkungen der Kryokonservierung von Herzgewebe auf snRNA-seq27 untersucht. Die Durchführung von snRNA-seq und snATAC-seq unter Verwendung von frischem, mikropräpariertem Gewebe aus Mausmodellen menschlicher Krankheiten kann beim Ve…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Diese Forschung wurde durch ERA-CVD-2019 und ANR-JCJC-2020 bis SS unterstützt. Wir danken der Genomics and Bioinformatics Facility (GBiM) des U 1251/Marseille Medical Genetics Lab und den anonymen Gutachtern für ihre wertvollen Kommentare.

Materials

2100 Bioanalyzer Instrument Agilent No catalog number
5M Sodium chloride (NaCl) Sigma 59222C-500ML 
BSA 10%  Sigma A1595-50ML
Chromium Next GEM Chip J Single Cell Kit, 16 rxns 10X Genomics 1000230
Chromium Next GEM Single Cell Multiome ATAC + Gene Expression Reagent Bundle, 4 rxns (including Nuclei Buffer 20X) 10X Genomics 1000285
Countess cell counting chamber slides Invitrogen C10283
Countess III FL Thermofisher No catalog number
Digitonin (5%) Thermofisher BN2006
DMSO Sigma D2650-5x5ML
DNA LoBind Tubes  Eppendorf 22431021
D-PBS Thermofisher 14190094 Sterile and RNase-free
Dual Index Kit TT Set A 96 rxns 10X Genomics 1000215
Falcon 15 mL Conical Centrifuge Tubes  Fisher Scientific  352096
Falcon 50 mL Conical Centrifuge Tubes  Fisher Scientific  10788561
HI-FBS Thermofisher A3840001 Heat inactivated
High sensitivity DNA kit Agilent 5067-4626
Igepal CA-630 Sigma I8896-50ML
LIVE/DEAD Viability/Cytotoxicity Kit Thermofisher L3224
MACS Dead Cell Removal kit: Dead Cell Romoval MicroBeads, Binding Buffer 20X Miltenyi Biotec 130-090-101
MACS SmartStrainers (30 µm) Miltenyi Biotec 130-098-458
Magnesium chloride (MgCl2) Sigma M1028-100ML
Milieu McCoy 5A  Thermofisher 16600082
MS Columns Miltenyi Biotec 130-042-201
NovaSeq 6000 S2 Illumina No catalog number
Penicillin Streptomycin (Pen/Strep) Thermofisher 15070063
PluriStrainer Mini 40µm PluriSelect V-PM15-2021-12
Rock inhibitor Enzo Life Sciences ALX-270-333-M005
Single Index Kit N Set A, 96 rxn 10X Genomics 1000212
Standard 90mm Petri dish Sterilin Thermofisher 101R20
Sterile double-distilled water Thermofisher R0582
Trizma Hydrochloride solution (HCl) Sigma T2194-100ML 
Trypan Blue stain (0.4%) Invitrogen T10282
Trypsin 0.05% – EDTA 1X Thermofisher 25300054
Tween20 Sigma P9416-50ML 
Wide orifice filtered pipette tips 200 μl Labcon 1152-965-008-9
ZEISS SteREO Discovery.V8 ZEISS No catalog number

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Ibrahim, S., Robert, C., Humbert, C., Ferreira, C., Collod, G., Stefanovic, S. Nuclei Isolation from Mouse Cardiac Progenitor Cells for Epigenome and Gene Expression Profiling at Single-Cell Resolution. J. Vis. Exp. (195), e65328, doi:10.3791/65328 (2023).

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