Summary
細胞移植は、感光体喪失を特徴とするレチン系変性の治療のための戦略を表す。ここでは、移植可能な感光体の濃縮方法と、その副レチング移植を成体マウスに説明する。
Abstract
視覚障害と、レチナの光感知細胞、すなわち感光体の喪失による失明 は 、先進国における障害の主な理由を表している。細胞移植による退化光受容体の置換は、将来の臨床応用における可能な治療選択肢を表す。実際、最近の前臨床試験では、出生後4日目に新生児マウスのレチナから分離された未熟な感光体が、副腎移植後に成人マウスの残毛に溶け込む可能性があることを実証した。ドナー細胞は、内外セグメント、外核層に位置する丸い細胞体、内因性双極細胞に近接したシナプス末端を含む成熟した感光体形態を生成した。実際、最近の報告では、ドナー感光体が機能的に宿主マウスの神経回路に統合することを示した。このような細胞置換アプローチの将来の臨床適用のために、選択した細胞の精製懸濁液を生成し、眼に適切に統合するために正しい位置に配置する必要があります。感光体前駆体の濃縮のために、並べ替えは、ドナー細胞の遺伝子レポーター修飾を避けるために、特異的な細胞表面抗原に基づくべきである。ここでは、磁気関連細胞選別(MACS)−細胞表面マーカーCD73に基づく感光体特異的レポーターマウスの新生児性レチナから分離された移植可能なロッド感光体前駆体の濃縮を示す。抗CD73抗体と共にマイクロビーズ共役二次抗体を用いたインキュベーションにより、MACSによるロッド感光体前駆体の濃縮が約90%となった。フローサイトメトリーと比較して、MACSはGMP規格に適用しやすく、また、大量の細胞を相対的に短期間にソートできるという利点があります。成人野生型マウスの皮下腔への濃縮細胞懸濁液の注入は、未ソートの細胞懸濁液と比較して3倍高い集積率をもたらした。
Introduction
ビジョンは人間の主要な感覚の一つです。この感覚と失明の障害は、先進国における障害の主な理由の一つです。視力障害または失明の主な原因は、黄斑変性症、網膜色素変性症、円錐棒ジストロフィー、およびその他の条件で観察することができるように、感光体細胞喪失を特徴とする網膜変性である。現在までに、失われた視力を回復するための効果的な治療法は利用できません。2006年および2008年には、2つの異なるラボが報告され、互いに独立して、ロッド感光体前駆体細胞を成体の野生型マウスのレチナ1,2に移植することに成功した。このように、感光体前駆細胞移植の可能性も生じて退化したretinaに、退化した感光体を置き換え、視力を回復させる。実際、最近、このような移植された感光体前駆体細胞は、適切に発達した外層3、内因性双極細胞に近接したシナプス末端、および外核層2-4に位置する丸い細胞体などの成熟した野生型感光受容体の形態学的基準を引き出し、また宿主神経回路5-7に機能的に統合する能力を有することが最近実証されている。この戦略の主な原則の1つは、出生後4日目(PN4、PN0は出生日として定義される)若いマウスのレティナの使用であり、移植のための異なる細胞タイプの混合物をもたらす。将来の治療アプリケーションの背景に、この混合物は、感光体前駆細胞のために精製されなければならない。CD73は、若い感光体に特異的な第1の細胞表面マーカーとして、レティナ8-10に記載されている。ここでは、この細胞表面マーカーに基づく光受容体前駆細胞精製法と、磁気関連細胞選別法(MACS)法を用いた方法を示す。MACSは、高速なソート時間とGMP条件の調整が容易であるため、蛍光活性化細胞選別技術と比較して利点があります。成人型の野生型レチナの皮下空間に濃縮された集団を移植する際に、〜90%の濃縮率と最大3倍の高い統合率を実証することができた。従って、MACSベースの感光体前駆細胞の濃縮および皮膜下移植は、レチナル変性の治療のための再生治療戦略の開発に対する信頼できる有望な技術である。
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Protocol
動物の倫理的使用とケア声明:
すべての動物実験は、欧州連合(EU)およびドイツの法律(Tierschutzgesetz)に厳密に従って行われ、眼科および視力研究における動物の使用に関するARVO声明に従った。すべての動物実験は、TUドレスデンとランデスディレクションドレスデンの動物倫理委員会によって承認されました(承認番号:24D-9168.11-1/2008-33)。
1. 細胞解離と細胞ソートを開始する前に
- 3つの15 ml反応チューブにラベルを付けます:ウォッシュ(W)、正の分数(+)および負の分数(-)。
2. レチナ解離
- はさみを使用してPN 4の子犬の首を切る。
- 70%エタノールですぐに子犬の頭をすすいで、続いてPBSで洗浄します。
- ヘッドを冷たいHBSSに移し、目を核にします(すべてのヘッドに対してこのステップを繰り返します)。核を得るために、眼瞼を開き、視神経領域で湾曲した鉗子で目を固定する。その後、慎重に軌道から目を引きます。
- すべての目を核にした後、レティナを分離する:視神経に閉じたはさみを導入し、ブレードを開きます。ピールRPE/チョリドアウト。湾曲した鉗子を使用してレンズおよび血管を取り除く。
- 単離したレチナをパパイン溶液を含む1.5ml反応チューブ(パパイン解離キットによって提供される)に移します。
- 37°Cの水浴またはシェーカー(400rpm)で30〜60分間、パパイン溶液中のレチナをインキュベートします。
- レチナがパパイン溶液中でインキュベートする間、ピペット1mlのオボムコード溶液を15ml反応管に(ラベル「1」)にする。
- 60 μlのDNase I(10 mg/ml)+60 μlのオボムコイド溶液(キット提供)+520 μlのEBSSを15ml反応チューブ(ラベル"2")に加えます。
- パパインインキュベーション後、部分的に消化されたレティナを含むパパイン溶液を反応管「2」に移す。
- 火磨きピペットを使用して、機械的解離(10倍上下)を行います。
- 単一細胞懸濁液を反応管「1」にピペットする。細胞懸濁液をオボムコイド溶液の上に優しく重ねて2層を生成するようにしてください。
- 遠心分離機は300xg(約1,300rpm)で5分間を行った。
- 上清を捨て、500 μlのMACSバッファで細胞を再中断します。
3. 磁気関連セルソート(MACS)を用いたセルソート
- X μlラット抗CD73抗体を500 μlに加えて、10 μg/mlの最終濃度を達成します。
- 氷の上に5分をインキュベートします。
- 15 ml の反応チューブに MACS バッファーを 10 ml 充填し、300 x g の速度で 5 分間遠心分離します。
- 上清を取り除く。
- 480 μl MACS バッファーにペレットを再懸濁し、120 μlのヤギアンチラット IgG マイクロビーズを追加します。
- 氷の上に15分をインキュベート;攪拌、振ったり、混ぜたりしないでください。
- 15 mlの反応管をMACSバッファーで5 mlに充填し、300 x gで5分間遠心分離します。
- 反応管が遠心分離されているように:
- LSカラムを磁気スタンドに合わせて調整します。
- LS カラムの上に事前分離フィルタを配置します。
- 3 ml MACS バッファで事前分離フィルターと LS カラムをハイドレートし、MACS バッファを洗浄(W)チューブに集めます。
- 上清を取り除く。
- ペレットを500 μl MACSバッファに再懸濁します。
- 500 μl のセル懸濁液をフィルターにロードし、フィルターに 1 ml MACS バッファーを追加し、負の分数を負の分数 (-) 反応管に集める。
- 次に、3 x 3 ml の MACS バッファを列に追加して、列にバインドされていないセルを洗い流します。
- これらの9 ml がLSカラムを通り抜けると、磁気スタンドからカラムを取り外し、正の分数(+)反応管の上に取り付けます。
- 5 ml の MACS バッファを LS カラムに素早くロードし、LS カラムにプランジャを入れ、バッファ全体がカラムを通るまで押します。
- 300xgで5分間の正分を含む反応管を遠心分離する。
- 上清を取り外し、MACSバッファの500 μlで再中断し、4°Cに保ちます。
- 共通のセルカウントデバイスを使用してセルの合計量をカウントします。
- MACSバッファー内の2 x 105 セル/μlを含む正のソートされた分画から細胞懸濁液を調製し、4°Cに保つ
4. マウスのレチナへのMACソートされた感光体前駆細胞の移植
- 1 mlの滅菌PBSまたはHBSS、10 μl DNAse I、1-2 ml無菌脱イオン化H2O、4°Cの細胞懸濁液分画のアリコートを用意してください。
- メデトミジン塩酸塩(0.01 mg/10 g体重)の腹腔内注射(0.01mg/10 g体重)、ケタミン(0.75mg/10 g体重)で成人マウス(すなわち2~4ヶ月)を麻酔する。その後、痛みの軽減のためにブプレノルフィン(0.05 mg /kg体重)の皮下注射を行います。
- フェニレフリンの低下で瞳孔を拡張 2.5%-トロピックアミド 0.5% .
- マウスヘッドホルダーにマウスを固定し、ステレオ顕微鏡の下に置きます。
- 目の乾燥を防ぐために、Visidicゲルの滴を適用します。
- 針に30 G 1/2の無菌を使用して、スクレアラと角膜(それぞれ 、オレ)の境界に小さな穴を作ります。
- ダイヤモンドペンを使用して一般的なカバースライドを小さな(約5mm x 5mm)部分にカットし、これらの片の1つを角膜の上に置き、レティナを直接視覚化できるようにします。
- 殺菌したマイクロリットルのシリンジを脱イオン水で数回洗い流します。
- マイクロリットルシリンジに1 μlの細胞懸濁液を搭載し、結膜および結膜を通して針を直通し、点眼の半分の鼻の目視管理下に置きます。
- レチナル空間に到達するまで、静かにレチナに穴を開け、細胞懸濁液を皮下腔に注入する。
- 出血することなく網膜空間の約1/4を覆い、均一であるべき網膜の雄牛剥離を観察する。
- 注射器を優しく引き出し、レチナルホールが自動的にシールします。
- マイクロリットルシリンジを脱イオン水で数回洗い流します。
- ヘッドホルダーからマウスを離します。
- メデトミジン塩酸塩効果の逆転のためにアティパモゾール塩酸塩を注入することによってマウスを目覚めさせる。
- 暖かい暗い部屋(およそ25°C)で目覚めの時間のためのマウスを置く。
- 移植後2日後、ブプレノルフィン(体重0.05mg/kg)は、痛みの軽減のために、朝と午後に皮下注射によって投与されるべきである。
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Representative Results
マウスのレチナに統合するロッド感光体の能力を評価するために、マウスレポーターラインを使用し、GFPが神経性retinaロイシンジッパー(Nrl、Nrl-GFP)プロモーター11によって駆動される。Nrlは、成人期を通じてE12.5でその発現を開始するロッド感光体の最も初期のマーカーであり、ドナーロッド感光体細胞の特定の標識を可能にする。
PN 4 Nrl-GFPの子犬は首を切られ、目は欠核化された。次いで、レティナを、上記の方法を用いて分離および解離した。その結果生じたセル懸濁液を、CD73 ベースの MACS を使用してソートした(図1および2)。MACのソートに続いて、この手順で得られたエンリッチメントを分析しました。
図3Aに示すように、初期細胞懸濁液(Input)には30.4%のGFP陽性細胞、すなわち含まれていた。ロッド感光体。CD73ベースのMAC選別後、フローサイトメトリーによりCD73陽性画分(CD73+)の濃縮が最大86.9%観察された。CD73-負の分画(CD73-)では、GFPに対して陽性の検出を行った細胞の9.9%のみである(図3A)。CD73ベースのMACSに続くNrl-GFP陽性細胞の濃縮は、インビトロでめっきした後にさらに可視化される(図3B)。
MAC選別後、CD73陽性分画中のドナー細胞をスピンダウンし、200,000細胞/μlの最終濃度に再懸濁した。この細胞懸濁液は、野生型宿主性レチナの皮下腔への移植に更に用いた(図4)。移植後3~4週間で、宿主のレチナは固定され、単離され、切除された。いくつかのドナー細胞は、宿主の核外層に統合され、外核層における細胞体の局在化とシナプススフェルールおよび内部セグメントの形成を伴う成熟感光受容体の形態を獲得した(図5)。詳細な写真は、他のグループによってレチナをホストするために移植されたFACソートされた細胞に匹敵する結果を示す私たちのグループ3,8 によって以前に公開されています4,6,10.これらすべての研究において一貫して、移植された細胞は、水疱剥離宿主網膜によって定義される注射部位にとどまり、離れて移動しないことである。一部は宿主の残膜(すなわち 、外核層)に統合され、一部は、皮下空間3に残っている。また、統合部位におけるドナー細胞の分布は、使用するマウスモデルの種類に依存することが示されている。C57BL/6Jマウス間の移植では急性宿主/移植片拒絶反応徴候は検出されなかった。
図 1.MACSのレチナル下移植の全体的なスキームは、成人マウスのレチナに感光体前駆体を精製した。 PN 4 Nrl-GFPの子犬からのドナー細胞は単離され、続いてCD73ベースのMAC選別が行われ、マウス宿主のレチナの皮下空間に移植される。 ここをクリックすると、より大きな図が表示されます。
図 2.MACSによる移植可能な感光体の濃縮 採取したPN4の全てのレチナから生じた細胞懸濁液は、一次ラット抗CD73抗体と共にインキュベートされ、その後にマイクロビーズと共役した抗ラット抗体による洗浄およびインキュベーションが行われる。非結合抗体は洗い流される。セルサスペンションは、磁気スタンドに接続されたLSカラムを通過します。抗体によって結合された細胞は、残りの細胞が溶出して収集されている間、カラムに結合したままです(CD73陰性分数)。最後に、LSカラムを磁気スタンドから取り出し、残りの細胞を溶出して収集します(CD73陽性画分)。 完全な映画を表示するには、ここをクリックしてください。
図 3.CD73ベースのMAC選別に続くNrl-GFP陽性細胞濃縮の分析 (A) 分類前に、ドナー細胞の初期集団は、Nrl-GFP陽性細胞の30.4%を含んでいた。MACソート後、CD73+画分(86.9%)でGFP陽性細胞の濃縮を検出することができた。一方、CD73-画分はGFP+細胞の量が少ない(9.9%)しか含まれていませんでした。(B) PN4 Nrl-GFP 細胞の CD73 ベースの MAC ソートの結果を示す代表的な画像。すべての分画から100万個の細胞をラミニンコーティングされたカバーリップにメッキした。細胞を4%PFAで10分間めっきした後4時間固定した。細胞をDAPI(4',6-ジミジノ-2-フェニリンドール、1:20,000)で染色した。入力画分またはCD73-画分と比較した場合、CD73+画分中のGFP陽性細胞の有意な富化が観察された。 ここをクリックすると、より大きな図が表示されます。
図 4.副腎注射。 成体マウスのレティナへの移植プロセスの模式図。針は 、オラ・コナラの穴を通して挿入され、レンズに触れるのを避けて、ビトリアル空間をナビゲートし、視覚制御下の眼下の眼下に置かれる。穏やかな押し込みによって、針は、レティナを通してパンチされ、下の空間に置かれる。最終的に、細胞懸濁液は、剥離プロセスを評価することによって、視覚的に制御下に慎重に注入される。
図 5.移植された感光体細胞の統合。 統合CD73ベースのMACSを描いた代表的な画像は、成体マウスのretinaへの移植後のPN4 Nrl-GFP細胞をソートした。移植された感光体前駆体は、外核層(ONL)に正しく統合され、成熟した感光体形態を生成する。
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Discussion
感光体前駆細胞の低レチナル移植は、これらの光感受性細胞を有意な数1,2の宿主のレチナに統合することを達成するための信頼できるツールを表す。これにより、将来6のレチン性変性疾患の治療のための細胞療法の確立が可能になる可能性があります。現在PN4のレティナから単離されている細胞のドナー集団は、異なる細胞タイプの混合物であり、そこから、感光体前駆細胞のみが、皮膜下注射後に統合される。CD73ベースのMACソートを用いることによって、ドナー細胞懸濁液内の感光体の割合を≈90%に増加させることができ、未分類の細胞集団8と比較して野生型宿主レチナにおける約3倍の高い集積率を可能にする。フローサイトメトリーと比較して、MACSは高速選別手順の利点があり、GMP規格に比較的簡単に適用できることです。移植可能な光受容体の精製は、多能性幹細胞12〜14からの光受容体のインビトロ発生に対する最近の利点に照らして特に関心がある。分化された多能性幹細胞の培養は、多様な細胞タイプで構成されており、特定の選別手順の利用可能性を細胞移植療法における将来の使用に不可欠な前提条件としている。
MACS精製手順によれば、いくつかの点が注目に値し、大きな妨害を起させずにワークフローを確保します。並べ替えるレチナの数が多いほど、消化に必要な時間が増えます。消化後、ソート手順の間に、細胞の凝集を避ける必要があります。これは、二次抗体の添加前およびそのインキュベーション中に好ましく起こる。この場合、凝集体はピペットで直ちに除去されなければならない。MACS-負の分数を収集しながらMACSバッファの溶出の間に、カラムに3ml以上を加えないことは絶対に必要である。3 ml より多くのバッファーが追加されると、列にバッファーの圧力が高くなり過ぎる。これにより、抗体の細胞への結合が妨げ、並べ替え効率が低下します。磁気スタンドからカラムを取り外してMACS-正の分数の収集を開始する場合、このステップは迅速に行う必要があります。5 ml の MACS バッファを、できるだけ速くカラムに追加する必要があります。また、バッファ全体が列を通るまで、プランジを素早く押し込んで押す必要があります。加圧を心配する必要はありません。MACS バッファは等張性であり、変えることができる。FACSバッファー、細胞培養培地、PBS、EBSS、またはHBSSを用いることが可能である。バッファーの無菌性は、0.4 μmのフィルター膜を通してフィルタリングすることによって達成できます。
MACSによる濃縮後、以下の点を念頭に置くことで、ドナー細胞の下レチナル空間への移植に成功する。光受容体細胞は、ex vivoの治療に非常に敏感であるように思われるので、必要以上に4°Cに保つのは推奨されません。できるだけ早く移植を進める。注射針を眼球に挿入する場合、比較的鋭い金属針がレンズを損傷してレンズ誘導性の人工的な誘導を生じる可能性があるため、レンズに触れないようにすることが重要です。下レチン空間への道の最後のステップは、レティナの浸透が重要です。下レチン空間に達したかどうかを目視で観察することができないので、右押圧と組織抵抗に対する感覚を開発することが重要である。検査のために、針の頭部が正しく置かれている場合、小さい容積を適用することができ、針頭の網膜の剥離を注意深く観察すべきである。もし、出血のない丸気剥離が形成されている場合、位置は正しく、残りの溶液は慎重に適用することができる。注射中、針は組織へのさらなる損傷を避けるためにその位置に残るべきである。注射針によって作成されたレティナルホールは、針がゆっくりと引っ込まれると単独で密封されます。全体の手順は、動物にさらなるストレスや損傷を避けるために可能な最小限の時間で行われるべきです。移植の間、細胞懸濁液は、マイクロリットルシリンジを凝集し、ブロックする傾向がある。これが起こる場合、滅菌PBSまたはHBSSを用いた細胞懸濁液の希釈が示唆される。この問題を克服するもう一つの可能性は、DNAを1μl加えて細胞懸濁液に、死んだ細胞からDNA塊を溶解し、生きている細胞を接着する傾向がある。
このプロトコルは、細胞の磁気選別に限定されます。したがって、並べ替えラウンドごとに 1 つのマーカーに対してのみセルを並べ替えることができます。フローサイトメトリーと比較して、細胞を異なるマーカー(生理学的特性と異なる細胞表面マーカーを含む)を同時に使用して並べ替えることができる場合、これはこの技術の大きな欠点である。短い時間枠で異なるマーカーの並べ替えが必要な場合は、フローサイトメトリーが適切なソリューションになる場合があります。また、細胞の蛍光特性に対する選別は、例えば、遺伝子導入的に発現したGFPまたは他の生命細胞マーカーなどもこの技術では不可能である。現在、磁気ビーズと共役することができる細胞表面抗体の使用に制限されています。しかし、この技術は使用する技術機器に基づいてスケールアップすることができます。
ミルテンイバイオテックは現在、磁気細胞選別ツールの唯一のプロバイダであるため、現在までに利用可能な代替手段はありません。細胞解離には、パパイン(すなわち トリプシン)以外の酵素を使用することができる。注目に、私たちの研究室は、これが私たちの手の中で最も穏やかな解離酵素であるように見えるので、パパインで最高の結果を達成しました。パパイン消化のタイムウィンドウ(30〜60分)は可変です。この時間枠では、最適な消化は、私たちの研究室で達成されました。サンプルサイズ、サンプル品質、酵素によって、短くまたは長いインキュベーション時間が必要になる場合があります。個別のテストが推奨されます。
単一ステップMACSがフローサイトメトリーほど高い純度レベルに達しないことを考えると、この技術のさらなる応用は、望ましくない潜在的な有害な細胞の否定的な並べ替えである可能性があります。そこでは、特定のセル表面マーカーのセル分数が正の値を返し、目的のマーカーは並べ替えることができ、目的の部分はフロー内で分離されます。これは、事前または肯定的な選別ステップの後に行うことができ、異なる細胞表面マーカーを使用して細胞のさらなる識別だけでなく、フィーダー層細胞または潜在的な腫瘍発生リスクを有する多能性幹細胞培養物からの未分化細胞のような不要な細胞の除去を可能にする。したがって、MACSは、大量の培養細胞を精製するための穏やかで迅速かつ簡単な治療を表すため、将来の治療用途においてESまたはiPS細胞培養物からの光受容体の精製に適している可能性があります。MACSは、ソートステップの詳細、 すなわち 力学、流体および手順がフローサイトメトリーと比較して減少するため、GMP条件に簡単に適用することができます。注目に値します, MACS は、血液や骨髄からの細胞の濃縮のための臨床試験ですでに日常的に使用されています。.興味深いことに、MACSは、適切な細胞表面マーカーが存在しない場合でも細胞に適用することができ、遺伝的に、その後の磁気細胞選別ステップ15のために細胞を「有能」にする表面マーカーを導入することによって。
要約すると、MACSは、移植研究のために細胞表面マーカーを使用して感光体前駆細胞を豊かにするための信頼性の高い、高速なツールを表しています。さらに、GMP条件を必要とする将来の臨床応用のために容易に採用可能な方法である。
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Disclosures
著者らは、競合する財政的利益を宣言しない。
Acknowledgments
私たちは、Nrl-GFPマウス、技術サポートのためのヨッヘンハース、動物の畜産のためのシンディベーメとエメリーレスマンを提供してくれたアナンド・スワロップに感謝したいと思います。
この研究は、ドイツ・フォルシュングスゲミンシャフト(DFG):FZT 111 - 再生療法ドレスデンのセンター、CRTD種子補助金プログラム、SFB 655、およびProRetina e.Vによってサポートされました。 財団、DIGS-BB大学院プログラムドレスデン、およびフンダサンパラ・ア・シエンシア・エ・テクノロジア(SFRH/BD/60787/2009)
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Papain Dissociation System | Worthington Biochemical Corporation | LK003150 | supplied DNase I is not used in the method |
| Purified rat anti-mouse CD73, clone TY/23 | BD Pharmingen | 550738 | Stock concentration 0.5 mg/ml |
| Goat Anti-Rat IgG MicroBeads | Miltenyi | 130-048-501 | Total volume of 2 ml |
| PBS | Gibco | 10010-015 | Used to count the total number of cells |
| DNase I | Sigma | D5025-150KU | |
| HBSS | Gibco | 14025050 | Used for dissociation of the retinas |
| Trypan blue | Sigma | Fluka93595 | Used to count the total number of cells |
| Vidisic | Dr. Mann Pharma / Andreae-Noris Zahn AG | ||
| Domitor | Pfizer | 76579 | |
| Ketamine 10% | Ratiopharm | 7538843 | |
| Antisedan | Pfizer | 76590 | |
| Phenylephrin 2.5%-Tropicamid 0.5% | University Clinics Dresden Pharmacy | ||
| Preseparation Filters | Miltenyi | 130-041-407 | |
| LS Columns | Miltenyi | 130-042-401 | |
| MACS MultiStand | Miltenyi | 130-042-303 | |
| QuadroMACS Separator | Miltenyi | 130-090-976 | |
| Fire polish glass Pasteur pipette | Brand | 74777 20 | The pipette’s tips need to be fire-polished and autoclaved. |
| MACS 15 ml tube rack | Miltenyi | 130-091-052 | |
| Cell count chamber | Carl Roth | T728.1 | |
| Sterile 15 ml tubes | Greiner Bio-One | 188271 | |
| Leica M651 MSD | Leica | M651 MSD | can be used instead of Olympus SZX10 |
| Olympus SZX10 | Olympus | SZX10 | can be used instead of Leica M651 MSD |
| Olympus inverted stereo microscope CKX41 | Olympus | CKX41 | |
| Cell culture hood Thermo Scientific MSC-Advance | Thermo Scientific | 51025411 | |
| 1.5 ml Reaction tube | Sarstedt | 727706400 | |
| 2 ml Reaction tube | Sarstedt | 72695 | |
| Eppendorf Centrifuge 5702 | VWR (Eppendorf) | 521-0733 | |
| Mouse head holder | myNeurolab | 471030 | |
| BD Microlance 3 30 G 1/2 in | BD Pharmingen | 304000 | |
| Hamilton microliter syringe 5 µl, 75RN | Hamilton | 065-7634-01 | delivered without needles |
| Hamilton RN special needle 34 G | Hamilton | 065-207434 | Blunt, 12 mm length |
| Vannas-Tübingen Spring Scissors - 5 mm Blades Straight | Fine Science Tools | 15003-08 | |
| Dumont #7 Forceps - Titanium Biologie | Fine Science Tools | 11272-40 | |
| Diamond pen | Tools-tech | ||
| 15 mm x 15 mm Cover slips | Sparks | MIC3366 |
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