Osteoclasten zijn de voornaamste botresorberende cellen in het lichaam. Het vermogen om osteoclasten te isoleren in grote aantallen heeft tot aanzienlijke vooruitgang in het inzicht van osteoclast biologie. In dit protocol beschrijven we een werkwijze voor het isoleren, kweken en kwantificeren van osteoclasten in vitro.
Osteoclasten zijn zeer gespecialiseerde cellen die zijn afgeleid van de monocyt / macrofagen van het beenmerg. Hun unieke capaciteit om zowel de organische als anorganische matrices bot resorberen betekent dat zij een belangrijke rol in de regulering skelet remodeling. Samen osteoblasten en osteoclasten zijn verantwoordelijk voor het dynamisch koppelen proces dat zowel botresorptie en botvorming gezamenlijk optreden om het normale skelet in gezondheid en ziekte handhaven omvat.
Als belangrijkste botresorberende cellen in het lichaam, kunnen veranderingen in osteoclastdifferentiatie of functie leiden tot ingrijpende effecten in het lichaam. Ziekten geassocieerd met veranderde functie van osteoclasten kan in ernst variëren van dodelijke neonatale ziekte gevolg van het niet een merg ruimte hematopoiese vormen om vaker waargenomen aandoeningen zoals osteoporose, waarbij overmatige osteoclastische botresorptie predisponeert vorming breken.
ent "> Het vermogen om osteoclasten te isoleren in hoge aantallen in vitro is toegestaan aanzienlijke vooruitgang in het inzicht van de botombouw cyclus en is de weg voor de ontdekking van nieuwe therapeutische strategieën die deze ziekten te bestrijden verhard.Hier beschrijven we een protocol voor het isoleren en kweken osteoclasten uit muizen beenmerg dat grote aantallen osteoclasten oplevert.
Botremodellering is dynamisch en het gaat om de koppeling van botvorming met botresorptie 1. Dit strak gereguleerd proces is verantwoordelijk voor het skelet tijdens normale homeostase, en in reactie op letsel en ziekte.
Osteoclasten zijn uniek, meerkernige cellen die in staat zijn resorbeerbare zowel de organische als anorganische matrices van bot. Osteoclasten zijn afgeleid van de monocyt / macrofagen van het beenmerg 2-5. Afwijkingen in de functie of vorming van osteoclasten kan resulteren in verschillende klinische aandoeningen, waaronder gemeenschappelijke aandoeningen zoals osteoporose.
Het vermogen om osteoclasten in vitro genereren is toegestaan aanzienlijke vooruitgang in ons begrip van botbiologie 6. Daardoor worden nieuwe opkomende therapeutische middelen aan osteoclasten ziekten die verantwoordelijk zijn voor aanzienlijke morbiditeit en mortaliteit behandelen 7 </sup>. Homeostatische onderhoud van de botmassa en kracht vereist de gezamenlijke actie van botvormende osteoblasten en-botresorberende osteoclasten 8,9. Bothomeostase gewijzigd wordt een aantal ziekten, waaronder postmenopauzale osteoporose, waarbij verhoogde osteoclastische activiteit leidt tot pathogene verlies van botmassa en dichtheid 10. Met toenemende beschikbaarheid van transgene muismodellen voor humane ziekten, is er meer gelegenheid om de rol van de osteoclasten ontcijferen menselijke botziekte 11-13.
Talrijke protocollen voor osteoclasten kweektechnieken verschijnen in de literatuur vele variaties beschreven 9,12,14. Xing en collega's beschrijven soortgelijke methodologie de hieronder beschreven in de beschrijving van osteoclastogenic assays van murine beenmergcellen protocol. Echter de beenmergcellen na lang bot oogst vrij, Xing et al. Spoel de mergholte met α-MEM compleet medium14. Catalfamo onderzoekt het effect van hyperglycemie op de functie van osteoclasten en beschrijft een werkwijze waarbij alle cellen gemobiliseerd beenmerg spoelen worden gedurende 24 uur, waarna de niet-hechtende cellen verwijderd 12, een techniek die ook door Boyle et al . 9 De eerder gepubliceerde protocollen vereisen het gebruik van spoelen van het beenmerg, een vervelende praktijk, die ook introduceert het risico van een naald prikt en verlies van waardevolle beenmerg, als een beide uiteinden van het bot moet snijden. Het protocol, dat we beschrijven implementeert het gebruik van een mortier en stamper om osteoclasten te isoleren, die vergelijkbaar is met de werkwijze beschreven door macrofaag isolatie Weischenfeldt et al. 15
Onze ervaring is echter dat osteoclast isolatie en in vitro kweek met eerder gepubliceerde technieken leidt tot variabele resultaten inzake osteoclast productie, vaak resulterendin een onvermogen te cultiveren osteoclasten. Daarom hebben we een protocol waarmee de consequente scheiding van muis beenmerg grote aantallen meerkernige osteoclasten in vitro produceren met een geschatte opbrengst van 70-80% van de cellen aanvankelijk vormen macrofagen uitgeplaat en vervolgens osteoclasten ontwikkeld in aanwezigheid van osteoclasten inductie media.
Een mogelijkheid om eenvoudig te isoleren en te kweken grote aantallen osteoclasten in vitro is verantwoordelijk voor het helpen om het begrip van botbiologie en osteoclasten gemedieerde ziekten vooruit geweest. Het was de identificatie van RANKL die leiden tot deze, wanneer het onlangs geïdentificeerd als de belangrijkste regulator van osteoclastvorming, differentiatie en overleving 16-18.
Het is onze ervaring dat het in vitro kweken van osteoclasten uit beenme…
The authors have nothing to disclose.
Wij erkennen de steun van NIH subsidies R01 DE021683, R01 DE019434, U01 HL099776, The Oak Foundation en The Hagey Laboratorium voor Pediatrische Regenerative Medicine.
Name of the Material/Equipment | Company | Catalog Number | Comments/Description |
MEM, no glutamine, no phenol red | Gibco | 51200-038 | |
M-CSF, recombinant mouse | Gibco | PMC2044 | |
Recombinant Mouse TRANCE/RANK L/TNFSF11 (E. coli expressed) | R&D Systems | 462-TEC-010 | |
Prostaglandin E2 | Sigma-Aldrich | ||
Histopaque-1077 | Sigma-Aldrich | 10771 | |
Acid Phosphatase, Lekocyte (TRAP) kit | Sigma-Aldrich | 387A | |
Osteoassay bone resorption plates, 24 well plates | Corning Life Sciences | 3987 |