Summary

Situ Shewanella Corynebacterium MR1 biyofilmler SALVI ve ToF-SIMS tarafından karakterizasyonu

Published: August 18, 2017
doi:

Summary

Bu makale bir biyofilm in situ uçuş zaman ikincil iyon kütle spektrometresi sulu durumda, kimyasal eşleştirmesi bir mikrosıvısal reaktör, sıvı vakum arabirimi analiz için sistemi tarafından etkinleştirilmiş için için büyüyen bir yöntem sunar. Shewanella Corynebacterium Bay-1 yeşil Floresans protein ile bir model olarak kullanıldı.

Abstract

Bakteriyel biyofilmler onların kendi ürettiği ekstraselüler polimer maddeler (EPS) ve çevre Mikrobiyolojisi kendi rollerini anlamak için büyük ölçüde incelendiği yüzey ilişkili topluluklar vardır. Bu çalışmada biyofilm eki için analiz sıvı vakum arabirimi (SALVI) adlı sistemine yetiştirmek ve in situ kimyasal bir yaşam biyofilm eşlenmesinin uçuş zaman ikincil iyon kütle spektrometresi (ToF-SIMS) elde etmek için bir yöntem özetliyor. Bu bakteri ile bizim özel tertibat SALVI kanal içinde ve dışında kültür aracılığıyla yanı sıra biyofilm varlığı ve kalınlığı ToF-SIMS analiz önce tespit etmek için optik görüntüleme teknikleri aracılığıyla yapılır. Sonuçlarımız Shewanella biyofilm karakteristik doruklarına doğal sulu haliyle göstermek onun yerelleştirilmiş su küme ortamında, hem de EPS vurgulayarak aynı biyofilm’ın büyük ölçüde farklı olan parçaları, sıvı kaybı Devlet. Bu sonuçlar in situ biyofilm görüntüleme için bir vakum tabanlı kimyasal görüntüleme aletle sağlar SALVI atılım kapasitesini gösterir.

Introduction

Bakteriyel biyofilmler neyin hücreleri eklemek ve birçok olası ortamlarda hayatta edebiliyoruz olumsuz fiziksel ve mekanik uyaranlara değişen hayatta kalmak bakteri için bir savunma olarak zaman içinde geliştiğini yüzey ilişkili topluluklar vardır. 1 , 2 biyofilmler büyük ölçüde incelenmiştir ve Biyomedikal, Biyomedikal Mühendisliği, tarım ve endüstriyel araştırma ve geliştirme gibi birçok alanda uygulamaları vardır. 1 , 2 kimyasal eşleme onların kendi ürettiği ekstraselüler polimer madde (EPS) ve yerel su-küme çevreleri de dahil olmak üzere bu karmaşık mikrobiyal toplulukların anlama doğru kazanıyor esastır ve detaylı biyolojik faaliyetlerini tasviri. 2

Biyofilmler var ve çok sulu bir devlet içinde büyür. Bu vakum uçucu sıvılar eğitim zorluk nedeniyle uçuş zaman ikincil iyon kütle spektrometresi (ToF-SIMS) gibi vakum tabanlı yüzey analiz teknikleri kullanarak büyük bir meydan okuma sunuyor. Sonuç olarak, vakum tabanlı yüzey analiz teknikleri biyofilm örnekleri kurutulmuş durumlarına, neredeyse sadece eğitim için sınırlı olmuştur. Ancak, bir biyofilm kurutulmuş haliyle okuyan onun gerçek biyolojik microenvironment doğru incelenmesi engeller. Bu kez situ içinde sıvı çalışmaları için Kuru biyofilm kitle spektral sonuçları karşılaştırarak sonra gösterdi EPS bütünlüğü ve biyofilm Morfoloji, köklü değişikliklere neden olur. 3 , 4 bu makale biyofilmler onların doğal sulu devlet içinde bizim sistem kullanım analizi, sıvı vakum arabirimi (SALVI),5,6 mikrosıvısal reaktör için istihdam ederek eğitim için bir çözüm sunar bu Böylece hala bir vakum içinde sıvı matris yapısal bütünlüğünü koruyarak ikincil iyon sonda ışın doğrudan erişim sağlayan polydimethylsiloxane (PMDS), yapılan bir microchannel onun ince silikon Nitrür (günah) membran altında sıvı içerir odası. 7 , 8

S. Corynebacterium Bay-1 yeşil Floresans protein (GFP) hızlı mutasyona metabolik çok yönlülük ve dayanıyordu çevre ve uygulamalı Mikrobiyoloji içinde yaygın kullanımı nedeniyle bu biyofilm yordamı illüstrasyon için bir model organizma olarak seçildi ağır metal azaltma ve ekstraselüler elektron transferi için kendi benzersiz yeteneğini. 9 , 10 , 11 Ayrıca, GFP varlığı kolay sürekli biyofilm-Floresans mikroskobu ile izleme, floresein isothiocyanate (FITC) filtre kullanarak kalınlığı için izin. Bizim önceki çalışmalar bu bakteri operando içinde Floresans Imaging’i kullanma ilâ 100 mikrometre kalınlığında bir biyofilm büyümesi için günah penceresine ek lehine kanıt göstermiştir. 4 , 12 bu kağıt sadece onay Floresans mikroskobu aracılığıyla biyofilm’ın varlığının ele alınacak, SALVI süper çözünürlük gibi diğer optik görüntüleme yöntemleri ile uyumlu iken Floresans görüntüleme (yani, yapılandırılmış aydınlatma mikroskobu (SIM)9) ve confocal lazer mikroskobu (CLSM)4Imaging tarama). Optik görüntü biyofilm kalınlığını ölçmek için hizmet ve göründüğü kalınlığı ve onun eki günah penceresine onaylayan bir 3D görüntü, biyofilm şeklinde elde edilir. 9 iken GFP SIMS analizde kullanılan, Corynebacterium S. GFP olmadan büyüme eğrisi için optik yoğunluk bu tek gerekli ölçüyü kullanıldı ve floresan herhangi bir görüntüleme gerek yoktu. Genel olarak, GFP arasındaki farkı öğesini ve büyüme eğrisi etiketsiz türler önemsizdir. Ayrıca, bu iletişim kuralını yordamı açıklamak için bir model organizma S. Corynebacterium Bay-1 GFP kullanırken bu yordamı SALVI içinde ekimi için gerekli olabilir bakteriyel herhangi bir zorlanma için tasarlanmıştır. Rağmen bilgi gerekli bakteri baskı göz önüne alındığında, süresi, sıcaklık ve oksijen çevre gibi bazı büyüme koşullar kullanılmak üzere bakteri suşu içerecek şekilde değişiklik yapmanız gerekebilir. Büyüme orta için kültür için “nanowires” orta, tryptic soya suyu (TSB) dekstroz ve tryptic soya agar (TSA) dekstroz olmadan olmadan bu yordamı kullanır. “Nanowires” orta kompozisyon özel olarak büyüme ve membran uzantıları izleme için formüle edilmiştir ve küçük tel ve orta kompozisyon şekillenmeye görünen S. Corynebacterium periplasm oldu önceki araştırma içinde kurulan. 13 , 14

Situ üzerinde bizim önceki iletişim kuralı sıvı ToF-SIMS SALVI protein immobilizasyon ve günah, hem de detaylı bir protokol ToF-SIMS analiz ve veri azaltma eki için sunabileceği yarar resimli. 12 veri azaltma adımları yinelemek yerine, bu kağıt kurma ve biyofilmler bizim SALVI microchannel yanı sıra biyofilm varlığı ve kalınlığı önceden tespit etmek için görüntüleme adımları içinde yetiştirilmesi benzersiz bir yaklaşım yerine odaklanmak için görev yapacak ToF-SIMS analiz için. Biyofilmler daha önce örnekleri vakum tabanlı yüzey analitik teknikler TMMOB içinde sadece kurutulmuş için sınırlı sahip iken, canlı biyofilmler detaylı EPS ve biyofilm kimyasal eşleme şimdi in situ bu yeni özellik nedeniyle elde edilebilir.

Protocol

1. hazırlık malzemeleri Hazırlık orta boru Serum şişeleri (bir biyofilm kültür ve üç büyüme eğrisi gerekli ücret gerekli) Not: giriş, herhangi bir büyüme belirtildiği gibi Orta bakteri ilgi zorlanma için gerekli besin sağlamak uygun-ebilmek var olmak kullanmak için bu yordamı; Bu durumda, " nanowires " medya ve TSB dekstroz orta olmadan S. Corynebacterium Bay-1 GFP büyümesi için kullanıldı. 13 büyüme o…

Representative Results

Temsilcisi bu sonuçları nasıl ekli biyofilm kimyasal profil tespit edilebilir ve yorumlanır, ToF-SIMS elde gibi göstermek için hizmet. ToF-SIMS veri toplama, kısaca yordamlar bölümünde vurgulanan gelen kitle spectra komplo sonra en yüksek kimlik kimlikler her ilgili m/z değeri atamak için yapılmalıdır. Bu bakteri ve okudu, çeşitli su kümeleri, yağ asitleri ve protein parçaları gibi bakteri içinde bulunması beklenen belirli kimyasal parçaları üzerinde kütle spek…

Discussion

Günlük-aşamasında aşı sonra gün ve 3.1 adımda anlatıldığı gibi sağlıklı ve görüntüleme için kalın önce hangi biyofilm büyümesini sıcaklık test etmek önemlidir. Bu yordam özellikle S. Corynebacterium MR1 biyofilm oda sıcaklığında kültür kapsar; ancak farklı oda sıcaklığında büyüme oranının etkisi altına alabiliyor. Bu nedenle, bu biyofilm ToF-SIMS analize devam etmeden önce hazır olup olmadığını anlamak için optik görüntüleme kullanmak önemlidir. Benzer şekilde, farkl…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Destek için Pacific Northwest Ulusal Laboratuvarı (PNNL) toprak ve Biyolojik Bilimler (EBD) misyonu tohum laboratuvar yönelik araştırma ve geliştirme (LDRD) Fonu için sana şükrediyoruz. Enstrümantal erişim bir W. R. Wiley çevre moleküler Bilimleri Laboratuvarı (EMSL) genel kullanıcı öneri ile sağlandı. EMSL sponsor tarafından Office biyolojik ve çevresel araştırma (BER) PNNL adlı bir Ulusal Bilimsel kullanıcı tesisidir. Yazarlar Dr Yuanzhao Ding el yazması okuma ve yararlı geribildirim sağlama ispat için teşekkür ederiz. PNNL için sözleşme DE-AC05-76RL01830 altında DOE Battelle tarafından işletilmektedir.

Materials

ToF-SIMS IONTOF TOF.SIMS 5 Resolution:>10,000 m/Δm for mass resolution;>4,000 m/Δm for high spatial resolution
System for Analysis at the Liquid Vacuum Interface (SALVI) Pacific Northwest National Laboratory N/A SALVI is a unique, self-contained, portable analytical tool that, for the first time, enables vacuum based scientific instruments such as time-of-flight secondary ion mass spectrometry (ToF-SIMS) to analyze liquid surfaces in their natural state at the molecular level.
-80°C Freezer New Brunswick Scientific N/A U410 Premium Energy Efficient Ultra-Low Temperature Freezer
4°C Refrigerator BioCold Scientific N/A COLDBOX1
Orbital Shaker New Brunswick Scientific N/A Innova 4900 Multi-Tier Environmental Shaker, set at 30 degrees Celsius for serum bottle and flask culturing, set at 150rpm.
Syringe Pump Cole-Parmer EW-74905-02 Cole-Parmer Syringe Pump, Infusion Only, Touchscreen Control 74905-02, used for injecting liquid into the tubing system and SALVI at a constant flowrate.
Incubator Barnstead International LT1465X3 Lab-Line incubator, set at 30 degrees Celsius for plate culturing.
Autoclave Getinge 533LS Used to sterilize PEEK fittings, tubing systems, serum vials, and medium. Model 533LS Vacuum Steam Sterilizer
Spectrophotometer Thermo Fisher Scientific 4001-000 GENESYS 20 spectrophotometer for OD600 readings of cuvettes for growth curves.
Biological Safety Cabinet Thermo Fisher Scientific 1385 1300 Series AZ Biological Safety Cabinet
Fluorescence Microscope Nikon N/A Nikon OPTIPHOT-2 fluorescence microscope with camera and super high pressure mercury lamp power supply.
pH Meter Mettler Toledo 51302803 Used to test the pH of the “nanowires” medium after finished and before autoclaving.
PEEK Union Valco ZU1TPK For connecting the inlet and outlet of SALVI, the syringe to the tubing system, and the inlet of the SALVI to the drip chamber of the tubing system.
5 Axes Sample Stage IONTOF N/A Stage is self-made for mounting SALVI in ToF-SIMS.
Barnstead Nanopure Water Purification System Thermo Fisher Scientific D11921 ROpure LP Reverse Osmosis filtration module (D2716)
Pipette Thermo Fisher Scientific 21-377-821 Range: 100 to 1,000 µL.
Pipette Tip Neptune 2112.96.BS 1,000 µL pipette tips
Razor Blade Handle Stanley N/A Stanley Bostitch Razor Blade Scraper with 5 Single-Edge Blades, used for cutting PTFE tubing
Syringe BD 309659 1 mL
Syringe BD 309657 3 mL
Syringe BD 309646 5 mL; Used for making the drip chamber
Syringe BD 309604 10 mL
Syringe BD 302830 20 mL
Disposable Pipette Thermo Fisher Scientific 13-678-11 25 mL Fisherbrand™ Sterile Polystyrene Disposable Serological Pipets with Magnifier Stripe, for filling serum bottles.
Electric Pipette Filler Pipet-aid P-57260 Vacuum pressure electric serological pipette filler
Serum Bottle Sigma 33109-U Holds approximately 69 mL of liquid for culture growth, optimum for use of 20mL culture per bottle.
Anaerobic Culture Tube VWR 89167-178 Anaerobic Tubes, 18 x 150 mm, Supplied with 20 mm Blue Butyl Rubber Stopper and Aluminum Seal.
Rubber Stopper Sigma 27235-U Silicone stopper, used for sealing serum bottles and for creating the tubing system/drip chamber.
Aluminum Crimp Seal (without septum) Sigma 27227-U Aluminum seal for top of serum bottle for use with serum bottle crimper.
Serum Bottle Aluminum Seal Crimper Wheaton 224307 30 mm crimper with standard seal.
PTFE Tubing Supelco 58697-U 1.58 mm OD x 0.5 mm ID 50 ft. PTFE Teflon tubing, used for creating the tubing system.
Disposable Cuvettes GMBH 759085D 1.5 Ml for use with spectrophotometer.
Needle BD 303015 22G; used for serum bottle injection.
Needle BD 305120 23G; used for punching-through rubber stopper to create drip tubing system.
Shewanella oneidensis MR-1 with GFP N/A N/A Matthysse AG, Stretton S, Dandie C, McClure NC, & Goodman AE (1996) Construction of GFP vectors for use in Gram-negative bacteria other than Escherichia coli. FEMS Microbiol Lett 145(1):87-94. 
Ethanol Thermo Fisher Scientific  S25310A 95% Denatured
TSA BD 212305 Tryptic soy agar for culturing the model organism (S. oneidensis) used in this protocol
PIPES Buffer Sigma P-1851 Used for “nanowires” medium {Hill, E.A. 2007}
Sodium Hydroxide Sigma S-5881 Used for “nanowires” medium {Hill, E.A. 2007}
Ammonium Chloride Sigma A-5666 Used for “nanowires” medium {Hill, E.A. 2007}
Potassium Chloride Sigma P-4504 Used for “nanowires” medium {Hill, E.A. 2007}
Sodium Phosphate Monobasic Sigma S-9638 Used for “nanowires” medium {Hill, E.A. 2007}
Sodium Chloride Thermo Fisher Scientific S271-3 Used for “nanowires” medium, and used to make mineral solution used for “nanowires” medium {Hill, E.A. 2007}
Sodium lactate Sigma L-1375 60%(w/w) syrup @ 98% pure, d=1.3 g/mL, 7M, used for “nanowires” medium {Hill, E.A. 2007}
Sodium Bicarbonate Sigma S-5761 Used to make ferric NTA solution, used for “nanowires” medium {Hill, E.A. 2007}
Nitrilotriacetic Acid Trisodium Salt Sigma N-0253 Used to make ferric NTA solution, used for “nanowires” medium {Hill, E.A. 2007}
Iron (III) Chloride Sigma 451649 Used to make ferric NTA solution, used for “nanowires” medium {Hill, E.A. 2007}
Magnesium Sulfate Sigma 208094 Used to make minerals solution, used for “nanowires” medium {Hill, E.A. 2007}
Manganese (II) Sulfate Monohydrate Sigma M-7634 Used to make minerals solution, used for “nanowires” medium {Hill, E.A. 2007}
Iron(II) Sulfate Heptahydrate Sigma 215422 Used to make minerals solution, used for “nanowires” medium {Hill, E.A. 2007}
Calcium Chloride Dihydrate Sigma 223506 Used to make minerals solution, used for “nanowires” medium {Hill, E.A. 2007}
Cobalt(II) Chloride Sigma 60818 Used to make minerals solution, used for “nanowires” medium {Hill, E.A. 2007}
Zinc Chloride Sigma 229997 Used to make minerals solution, used for “nanowires” medium {Hill, E.A. 2007}
Copper(II) Sulfate Pentahydrate Sigma C-8027 Used to make minerals solution, used for “nanowires” medium {Hill, E.A. 2007}
Aluminum Potassium Sulfate Dodecahydrate Sigma 237086 Used to make minerals solution, used for “nanowires” medium {Hill, E.A. 2007}
Boric Acid Sigma B-6768 Used to make minerals solution, used for “nanowires” medium {Hill, E.A. 2007}
Sodium Molybdate Dihydrate Sigma 331058 Used to make minerals solution, used for “nanowires” medium {Hill, E.A. 2007}
Nickel(II) Chloride Sigma 339350 Used to make minerals solution, used for “nanowires” medium {Hill, E.A. 2007}
Sodium Tungstate Dihydrate Sigma 14304 Used to make minerals solution, used for “nanowires” medium {Hill, E.A. 2007}
D-Biotin Sigma 47868 Used to make vitamin solution, used for “nanowires” medium {Hill, E.A. 2007}
Folic Acid Sigma F-7876 Used to make vitamin solution, used for “nanowires” medium {Hill, E.A. 2007}
Pyridoxine Hydrochloride Sigma P-9755 Used to make vitamin solution, used for “nanowires” medium {Hill, E.A. 2007}
Riboflavin (B2) Sigma 47861 Used to make vitamin solution, used for “nanowires” medium {Hill, E.A. 2007}
Thiamine Hydrochloride Sigma T-4625 Used to make vitamin solution, used for “nanowires” medium {Hill, E.A. 2007}
Nicotinic Acid Sigma N4126 Used to make vitamin solution, used for “nanowires” medium {Hill, E.A. 2007}
D-Pantothenic Acid Hemicalcium Salt Sigma 21210 Used to make vitamin solution, used for “nanowires” medium {Hill, E.A. 2007}
Vitamin B12 Sigma V-2876 Used to make vitamin solution, used for “nanowires” medium {Hill, E.A. 2007}
4-Aminobenzoic Acid Sigma A-9878 Used to make vitamin solution, used for “nanowires” medium {Hill, E.A. 2007}
Thioctic Acid Sigma T-1395 Used to make vitamin solution, used for “nanowires” medium {Hill, E.A. 2007}

References

  1. Renner, L. D., Weibel, D. B. Physicochemical regulation of biofilm formation. MRS Bull. 36 (5), 347-355 (2011).
  2. Flemming, H. C., Wingender, J. The biofilm matrix. Nat Rev Microbiol. 8 (9), 623-633 (2010).
  3. Aldeek, F., et al. Patterned hydrophobic domains in the exopolymer matrix of Shewanella oneidensis MR-1 biofilms. Appl Environ Microbiol. 79 (4), 1400-1402 (2013).
  4. Hua, X., et al. In situ molecular imaging of a hydrated biofilm in a microfluidic reactor by ToF-SIMS. Analyst. 139 (7), 1609-1613 (2014).
  5. Yu, X. Y., Yang, L., Cowin, J. P., Iedema, M., Zhu, Z. Systems and methods for analyzing liquids under vacuum. US Patent. , (2013).
  6. Yu, X. Y., Liu, B., Yang, L., Zhu, Z., Marshall, M. J. Microfluidic electrochemical device and process for chemical imaging and electrochemical analysis at the electrode-liquid interface in situ. US Patent. , (2014).
  7. Yang, L., Yu, X. Y., Zhu, Z. H., Thevuthasan, T., Cowin, J. P. Making a hybrid microfluidic platform compatible for in situ imaging by vacuum-based techniques. J Vac Sci Technol A. 29 (6), (2011).
  8. Yang, L., Yu, X. Y., Zhu, Z. H., Iedema, M. J., Cowin, J. P. Probing liquid surfaces under vacuum using SEM and ToF-SIMS. Lab Chip. 11 (15), 2481-2484 (2011).
  9. Ding, Y., et al. In Situ Molecular Imaging of the Biofilm and Its Matrix. Anal Chem. , (2016).
  10. Yang, J., Ghobadian, S., Montazami, R., Hashemi, N. . Proceedings of the Asme 11th Fuel Cell Science, Engineering, and Technology Conference, 2013. , (2013).
  11. Yu, F., Wang, C. X., Ma, J. Applications of Graphene-Modified Electrodes in Microbial Fuel Cells. Materials. 9 (10), (2016).
  12. Yu, J., Zhou, Y., Hua, X., Zhu, Z., Yu, X. Y. In Situ Characterization of Hydrated Proteins in Water by SALVI and ToF-SIMS. J Vis Exp. (108), e53708 (2016).
  13. Hill, E. A. . Effects of Electron-Transport-System Impairment on Hydrogen Gas Production by the Bacterium Shewanella oneidensis MR-1. , (2007).
  14. McCormick, A. J., et al. Biophotovoltaics: oxygenic photosynthetic organisms in the world of bioelectrochemical systems. Energy Environ Sci. 8 (4), 1092-1109 (2015).
  15. Liu, B., et al. In situ chemical probing of the electrode-electrolyte interface by ToF-SIMS. Lab Chip. 14, 855-859 (2014).
  16. Keune, K., Hoogland, F., Boon, J. J., Peggie, D., Higgitt, C. Evaluation of the “added value” of SIMS: A mass spectrometric and spectroscopic study of an unusual Naples yellow oil paint reconstruction. Int J mass Spectrom. 284 (1-3), 22-34 (2009).
  17. Lee, M. . Mass Spectrometry Handbook. , 988 (2012).
  18. Petrovic, M., Barcelo, D. Determination of anionic and nonionic surfactants, their degradation products, and endocrine-disrupting compounds in sewage sludge by liquid chromatography/mass spectrometry. Anal Chem. 72 (19), 4560-4567 (2000).
  19. Vickerman, J. C. Molecular Imaging and Depth Profiling by Mass Spectrometry–Sims, MALDI or DESI. Analyst. 136 (11), (2011).
  20. Weng, L. T., Bertrand, P., Stonemasui, J. H., Stone, W. E. E. Tof Sims Study of the Desorption of Emulsifiers from Polystyrene Latexes. Surf Interface Anal. 21 (6-7), 387-394 (1994).
  21. Peñuelas-Urquides, K., et al. Measuring of Mycobacterium tuberculosis crowth. A correlation of the optical measurements with colony forming units. Braz J Microbiol. 44 (1), 287-289 (2013).
  22. Dohnalkova, A. C., et al. Imaging hydrated microbial extracellular polymers: comparative analysis by electron microscopy. Appl Environ Microbiol. 77 (4), 1254-1262 (2011).
  23. Yang, L., et al. In situ SEM and ToF-SIMS analysis of IgG conjugated gold nanoparticles at aqueous surfaces. Surf Interface Anal. 46, 224-228 (2013).
  24. Yu, J. C., et al. Capturing the transient species at the electrode-electrolyte interface by in situ dynamic molecular imaging. Chem Commun. 52 (73), 10952-10955 (2016).
check_url/fr/55944?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Komorek, R., Wei, W., Yu, X., Hill, E., Yao, J., Zhu, Z., Yu, X. In Situ Characterization of Shewanella oneidensis MR1 Biofilms by SALVI and ToF-SIMS. J. Vis. Exp. (126), e55944, doi:10.3791/55944 (2017).

View Video