Summary

Isolamento de Células Endoteliais da Veia Samá Humana e Exposição a Níveis Controlados de Tensão de Cisalhamento e Estiramento

Published: April 21, 2023
doi:

Summary

Descrevemos um protocolo para isolar e cultivar células endoteliais da veia safena humana (hSVECs). Também fornecemos métodos detalhados para produzir tensão de cisalhamento e alongamento para estudar tensões mecânicas em hSVECs.

Abstract

A cirurgia de revascularização miocárdica (CRM) é um procedimento para revascularizar o miocárdio isquêmico. A veia safena continua sendo utilizada como conduto de revascularização miocárdica, apesar da reduzida perviedade a longo prazo em relação aos condutos arteriais. O aumento abrupto do estresse hemodinâmico associado à arterialização do enxerto resulta em dano vascular, principalmente endotélio, que pode influenciar na baixa patência da ponte de veia safena (EVS). Descrevemos o isolamento, caracterização e expansão das células endoteliais da veia safena humana (HCSV). As células isoladas por digestão da colagenase exibem a morfologia típica do paralelepípedo e expressam marcadores de células endoteliais CD31 e VE-caderina. Para avaliar a influência das tensões mecânicas, protocolos foram utilizados neste estudo para investigar os dois principais estímulos físicos, tensão de cisalhamento e estiramento, em EVS arterializadas. As HVEs são cultivadas em uma câmara de fluxo de placa paralela para produzir tensão de cisalhamento, mostrando alinhamento na direção do fluxo e aumento da expressão de KLF2, KLF4 e NOS3. hSVECs também podem ser cultivados em uma membrana de silicone que permite o estiramento celular controlado mimetizando estiramento venoso (baixo) e arterial (alto). O padrão de F-actina das células endoteliais e a secreção de óxido nítrico (NO) são modulados de acordo com o estiramento arterial. Em resumo, apresentamos um método detalhado para isolar as HVECs para estudar a influência do estresse mecânico hemodinâmico em um fenótipo endotelial.

Introduction

A disfunção das células endoteliais (CE) é peça-chave na falência do enxerto de veia safena 1,2,3,4. O aumento sustentado do shear stress e do estiramento cíclico induz o fenótipo pró-inflamatório das células endoteliais da veia safena humana (hSVECs)3,4,5,6. As vias moleculares subjacentes ainda não são totalmente compreendidas, e protocolos padronizados para estudos in vitro podem alavancar os esforços para novos insights na área. Aqui, descrevemos um protocolo simples para isolar, caracterizar e expandir as HVECs e como expô-las a níveis variáveis de tensão de cisalhamento e estiramento cíclico, mimetizando as condições hemodinâmicas venosas e arteriais.

As hSVECs são isoladas por incubação da colagenase e podem ser utilizadas até a passagem 8. Esse protocolo requer menor manipulação do vaso em comparação com os outros protocolosdisponíveis7, o que reduz a contaminação com células musculares lisas e fibroblastos. Por outro lado, é necessário um segmento de vaso maior, de pelo menos 2 cm, para que a extração do CE seja eficiente. Na literatura, tem sido relatado que CEs de grandes vasos também podem ser obtidas por remoçãomecânica7,8. Embora eficaz, a abordagem física tem como desvantagens o baixo rendimento da CE e a maior contaminação por fibroblastos. Para aumentar a pureza, são necessários passos extras utilizando esferas magnéticas ou triagem celular, aumentando o custo do protocolo devido à aquisição de esferas e anticorpos 7,8. O método enzimático apresenta resultados mais rápidos e melhores quanto à pureza e viabilidade da CE 7,8.

As CE mais utilizadas para o estudo da disfunção endotelial são as células endoteliais da veia umbilical humana (HUVECs). Sabe-se que o fenótipo da CE se altera nos diferentes leitos vasculares, sendo essencial o desenvolvimento de métodos que representem o vaso sobinvestigação9,10. Nesse sentido, o estabelecimento de um protocolo para isolar uma EVSS e cultivá-la sob estresse mecânico é uma ferramenta valiosa para entender a contribuição da disfunção da VExs na doença do enxerto venoso.

Protocol

Segmentos não utilizados de veias safenas foram obtidos de pacientes submetidos à cirurgia de revascularização miocárdica aortoventricular no Instituto do Coração (InCor) da Faculdade de Medicina da Universidade de São Paulo. Todos os indivíduos deram consentimento informado para participar do estudo, que foi revisado e aprovado pelo comitê de ética local. 1. Isolamento, cultura e caracterização de células endoteliais primárias da veia safena humana (hSVECs) <…

Representative Results

Normalmente, as CE aderidas podem ser observadas 3-4 dias após a extração. Os hSVECs inicialmente formam aglomerados de células e exibem uma morfologia típica de “paralelepípedos” (Figura 1B). Expressam os marcadores CE CD31 (Figura 1C,D) e VE-caderina (Figura 1D). Os hSVECs podem ser facilmente propagados em uma placa de cultura celular tratada não revestida e retêm o fenótipo endotelial em cultura até oi…

Discussion

O segmento da veia safena deve ter pelo menos 2 cm para isolar com sucesso as HCSV. Pequenos segmentos são difíceis de manusear e amarrar as extremidades do vaso para manter a solução de colagenase para isolar as células. A área luminal reduzida não produz células suficientes para expandir a cultura. Para minimizar o risco de contaminação com não-CE, a manipulação do segmento da veia safena precisa ser muito suave durante todo o procedimento. É importante ter cuidado ao introduzir as pontas da pipeta nas su…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

O JEK é apoiado por bolsas da Fundação de Amparo à Pesquisa do Estado de São Paulo [FAPESP-INCT-20214/50889-7 e 2013/17368-0] e do Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico-CNPq (INCT-465586/2014-7 e 309179/2013-0). A AAM é apoiada por bolsas da Fundação de Amparo à Pesquisa do Estado de São Paulo (FAPESP 2015/11139-5) e do Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico-CNPq (Universal – 407911/2021-9).

Materials

0.25% Trypsin-0.02% EDTA solution Gibco 25200072
15 µ slide I 0.4 Luer  Ibidi 80176
4',6-Diamidino-2-Phenylindole, Dilactate (DAPI) Thermo Fisher Scientific D3571
6-wells equibiaxial loading station of 25 mm  Flexcell International Corporation LS-3000B25.VJW
8-well chamber slide with removable well Thermo Fisher Scientific 154453
Acetic Acid (Glacial) Millipore 100063
Acrylic sheet 1 cm thick Plexiglass
Anti-CD31 antibody Abcam ab24590
Anti-CD31, FITC antibody Thermo Fisher Scientific MHCD3101
Anti-VE-cadherin antibody Cell Signaling 2500
Bioflex plates collagen I Flexcell International Corporation BF3001C
Bovine serum albumin solution Sigma-Aldrich A8412
Cotton suture EP 3.5 15 x 45 cm Brasuture AP524
Cyclophilin forward primer Thermo Fisher Scientific Custom designed
Cyclophilin reverse primer Thermo Fisher Scientific Custom designed
Dimethyl sulfoxide (DMSO) Sigma-Aldrich D4540
EBM-2 basal medium Lonza CC3156
EGM-2 SingleQuots supplements Lonza CC4176
Fetal bovine serum (FBS) Thermo Fisher Scientific 2657-029
Flexcell FX-5000 tension system Flexcell International Corporation FX-5000T
Fluoromount aqueous mounting medium Sigma-Aldrich F4680
Gelatin from porcine skin Sigma-Aldrich G2500
Glycerol Sigma-Aldrich G5516
Goat anti-Mouse IgG Alexa Fluor 488 Thermo Fisher Scientific A11001
Goat anti-Rabbit IgG Alexa Fluor 488 Thermo Fisher Scientific A11008
Heparin sodium from porcine intestinal mucosa 5000 IU/mL Blau Farmacêutica SKU 68027
Ibidi pump system (Pump + Fluidic Unit) Ibidi 10902
KLF2 forward primer Thermo Fisher Scientific Custom designed
KLF2 reverse primer Thermo Fisher Scientific Custom designed
KLF4 forward primer Thermo Fisher Scientific Custom designed
KLF4 reverse primer Thermo Fisher Scientific Custom designed
NOA 280 nitric oxide analyzer Sievers Instruments NOA-280i-1
NOS3 forward primer Thermo Fisher Scientific Custom designed
NOS3 reverse primer Thermo Fisher Scientific Custom designed
Paraformaldehyde (PFA) Sigma-Aldrich 158127
Perfusion set 15 cm, ID 1.6 mm, red, 10 mL reservoirs Ibidi 10962
Phalloidin – Alexa Fluor 488 Thermo Fisher Scientific A12379
Phalloidin – Alexa Fluor 568 Thermo Fisher Scientific A12380
Phosphate buffered saline (PBS), pH 7.4 Thermo Fisher Scientific 10010031
Potassium Iodide Sigma-Aldrich 221945
QuanTitec SYBR green PCR kit Qiagen 204143
QuantStudio 12K flex platform  Applied Biosystems 4471087
RNeasy micro kit  Quiagen 74004
Slide glass (24 mm x 60 mm) Knittel Glass VD12460Y1D.01
Sodium nitrite Sigma-Aldrich 31443
SuperScript IV first-strand synthesis system Thermo Fisher Scientific 18091200
Triton X-100 Sigma-Aldrich T8787
Trypan blue stain 0.4% Gibco 15250-061
Type II collagenase from Clostridium histolyticum Sigma-Aldrich C6885

References

  1. Allaire, E., Clowes, A. W. Endothelial cell injury in cardiovascular surgery: the intimal hyperplastic response. The Annals of Thoracic Surgery. 63 (2), 582-591 (1997).
  2. Ali, M. H., Schumacker, P. T. Endothelial responses to mechanical stress: where is the mechanosensor. Critical Care Medicine. 30 (5), S198-S206 (2002).
  3. Ward, A. O., Caputo, M., Angelini, G. D., George, S. J., Zakkar, M. Activation and inflammation of the venous endothelium in vein graft disease. Atherosclerosis. 265, 266-274 (2017).
  4. Ward, A. O., et al. NF-κB inhibition prevents acute shear stress-induced inflammation in the saphenous vein graft endothelium. Scientific Reports. 10 (1), 15133 (2020).
  5. Golledge, J., Turner, R. J., Harley, S. L., Springall, D. R., Powell, J. T. Circumferential deformation and shear stress induce differential responses in saphenous vein endothelium exposed to arterial flow. The Journal of Clinical Investigation. 99 (11), 2719-2726 (1997).
  6. Girão-Silva, T., et al. High stretch induces endothelial dysfunction accompanied by oxidative stress and actin remodeling in human saphenous vein endothelial cells. Scientific Reports. 11 (1), 13493 (2021).
  7. Ataollahi, F., et al. New method for the isolation of endothelial cells from large vessels. Cytotherapy. 16 (8), 1145-1152 (2014).
  8. Torres, C., Machado, R., Lima, M. Flow cytometric characterization of the saphenous veins endothelial cells in patients with chronic venous disease and in patients undergoing bypass surgery: an exploratory study. Heart and Vessels. 35 (1), 1-13 (2020).
  9. Aird, W. C. Phenotypic heterogeneity of the endothelium: II. Representative vascular beds. Circulation Research. 100 (2), 174-190 (2007).
  10. Jambusaria, A., et al. Endothelial heterogeneity across distinct vascular beds during homeostasis and inflammation. eLife. 9, e51413 (2020).
  11. Carneiro, A. P., Fonseca-Alaniz, M. H., Dallan, L. A. O., Miyakawa, A. A., Krieger, J. E. β-arrestin is critical for early shear stress-induced Akt/eNOS activation in human vascular endothelial cells. Biochemical and Biophysical Research Communications. 483 (1), 75-81 (2017).
  12. Davis, M. E., Cai, H., Drummond, G. R., Harrison, D. G. Stress regulates endothelial nitric oxide synthase expression through c-Src by divergent signaling pathways. Circulation Research. 89 (11), 1073-1080 (2001).
  13. Dekker, R. J., et al. Prolonged fluid shear stress induces a distinct set of endothelial cell genes, most specifically lung Kruppel-like factor (KLF2). Blood. 100 (5), 1689-1698 (2002).
  14. Hamik, A., et al. Kruppel-like factor 4 regulates endothelial inflammation. The Journal of Biological Chemistry. 282 (18), 13769-13779 (2007).
  15. Beamish, J. A., He, P., Kottke-Marchant, K., Marchant, R. E. Molecular regulation of contractile smooth muscle cell phenotype: implications for vascular tissue engineering. Tissue Engineering. Part B, Reviews. 16 (5), 467-491 (2010).
check_url/fr/65122?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Girão-Silva, T., Fonseca-Alaniz, M. H., Oliveira Dallan, L. A., Valãdao, I. C., Oliveira da Rocha, G. H., Krieger, J. E., Miyakawa, A. A. Human Saphenous Vein Endothelial Cell Isolation and Exposure to Controlled Levels of Shear Stress and Stretch. J. Vis. Exp. (194), e65122, doi:10.3791/65122 (2023).

View Video