Summary
Deneysel otoimmün ensefalomiyelit (EAE), insan hastalığı ile güçlü bir humoral otoimmün yanıtı paylaşan bir multipl skleroz (MS) hayvan modelidir. Burada, EAE ile aşılanmış farelerin serumundaki otoantikorları ölçmek için basit ve esnek bir ELISA protokolü bildiriyoruz.
Abstract
Deneysel otoimmün ensefalomiyelit (EAE), otoimmün hastalık multipl sklerozu (MS) histopatolojik ve moleküler düzeyde özetleyen bir hastalık modelidir. EAE, immün yanıtı artırmak için spesifik adjuvanlarla birlikte kısa miyelin peptitlerinin deri altı enjeksiyonu yoluyla deney hayvanlarının aşılanmasıyla indüklenir. İnsan muadili gibi, EAE fareleri de demiyelinizan lezyonlar, merkezi sinir sistemine (CNS) bağışıklık hücresi infiltrasyonu, glia aktivasyonu ve nöronal hasar geliştirir. Tutarlı bir kanıt grubu, hem MS hem de EAE'nin etiyolojisinde B hücre disfonksiyonu için mekanik bir rolü desteklemektedir. B hücreleri, antijen sunan hücrelerin yanı sıra birincil proinflamatuar sitokinler ve otoantikor kaynağı olarak da hizmet edebilir. EAE'de, hastalığı indüklemek için kullanılan miyelin peptitlerine karşı antikorlar üretilir. Bu tür otoantikorların, CNS'ye miyelin kaybına veya patojenik T hücresi reaktivasyonuna aracılık ettiği gösterilmiştir. Bu makale, miyelin oligodendrosit glikoprotein 35-55 (MOG35-55) peptidi ile aşılanmış C57BL/6J farelerinin serumundaki otoantikorları ölçmek için etkili bir ELISA tabanlı protokolü açıklamaktadır. Önerilen yöntem, otoimmün demiyelinizasyon bağlamında anormal humoral yanıtın özgüllüğünü ve büyüklüğünü araştırmak için güçlü bir araç olarak hizmet eder.
Introduction
Multipl skleroz (MS), immün hücrelerin beyin parankimine fokal infiltrasyonu, aksonları saran miyelin kılıflarının parçalanması, glia aktivasyonu ve nöronal kayıp ile karakterize merkezi sinir sisteminin (MSS) kronik otoimmün bir hastalığıdır1. Patojenik T hücrelerinin iyi bilinen rolüne ek olarak, çok sayıda kanıt, B hücrelerinin CNS'ye karşı otoimmün tepkiye aracılık etmede rol oynadığını vurgulamıştır. B hücreleri MS beyninde klonal genişlemeye uğrar ve demiyelinize lezyonlarda miyelin bileşenlerine karşı antikorlar tespit edilmiştir 2,3. Hastalık başlangıcında periferik B hücrelerinin seçici aktivasyonu yakın zamanda belgelenmiştir, bu da bu bağışıklık hücresi bölmesinin hastalığın başlangıcında da varsayılan bir rol oynadığını düşündürmektedir4. Anti-CD20 monoklonal antikorları gibi B hücresini tüketen tedavilerin başarısı, anormal B hücresi fonksiyonu ile otoimmün demiyelinizasyonarasındaki mekanik bağlantıyı daha da doğrulamaktadır 5,6. Moleküler açıdan bakıldığında, B hücreleri otoantijen sunumu, proinflamatuar sitokin sekresyonu ve otoreaktif antikor üretimi yoluyla hastalığa katkıda bulunabilir.
Karmaşık MS fenotipinin spesifik özelliklerini özetlemek için çoklu hayvan modelleri geliştirilmiştir. Bunlar arasında, deneysel otoimmün ensefalomiyelit (EAE) en yaygın kullanılanıdır in vivo paradigma ve deney hayvanlarının miyelin oligodendrosit glikoproteini (MOG) ve miyelin bazik proteini (MBP) gibi miyelin proteinlerinden türetilen kısa peptitlerle aşılanmasına dayanır7. EAE ile aşılanmış hayvanlar, ensefalitojenik peptit8'e karşı sağlam bir humoral yanıt da dahil olmak üzere birçok yönden MS'e benzeyen demiyelinizan bir patoloji geliştirir. Bu nedenle, EAE çalışmaları, hastalık bağlamında B hücrelerinin ve otoantikorların fonksiyonunu incelemede etkili olmuştur. Örneğin, MS hastalarından izole edilen MOG'a özgü antikorların EAE modellerinde klinik seyri ağırlaştırabileceği gösterilmiştir9. Özellikle, insan MOG'unda 42. pozisyondaki prolin kalıntısının, otoantikor patojenitesini10 belirlemek için kritik olduğu gösterilmiştir. Daha yakın zamanlarda, MOG'a özgü otoantikorların sadece miyelin kaybına aracılık ederek değil, aynı zamanda CNS11 içindeki otoreaktif T hücrelerinin yeniden aktivasyonunu artırarak da hastalığı teşvik ettiği bulunmuştur.
CNS otoimmünitesinde antikor yanıtlarının önemi göz önüne alındığında, bu makale, MOG35-55 peptid ile aşılanmış C57BL / 6J farelerde otoreaktif antikorların serum seviyelerini etkili bir şekilde ölçmek için ELISA tabanlı bir protokol sunmaktadır. Protokolün ilk bölümünde, intrakardiyak ponksiyon yoluyla serum toplama yöntemi anlatılacaktır. Daha sonra, ELISA testini kurma ve verileri elde etme prosedürleri detaylandırılacaktır. Son olarak, veri analizi ve yorumlanması tartışılacaktır.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
Fareleri içeren tüm prosedürler, Doğu Carolina Üniversitesi Kurumsal Hayvan Bakımı ve Kullanımı Komitesi (IACUC) tarafından onaylanan deneysel kılavuzlara uygun olarak gerçekleştirildi. Bu çalışmada 8-10 haftalık yaşları arasında vahşi tip C57BL/6J dişi fareler kullanıldı. Hayvanlar ticari bir kaynaktan elde edilmiştir (bkz. EAE, daha önce yayınlanmış 12,13,14 raporlarını takiben indüklenmiştir.
1. Serum toplama
- Deney faresini, MOG35-55 bağışıklaması yoluyla EAE'yi indükledikten sonra gerekli zaman noktasında (kurumsal olarak onaylanmış protokolleri izleyerek) CO2 boğulması veya izofluran doz aşımı ile ötenazi yapın.
NOT: Toplam fare sayısı ve serum toplanması için zaman noktaları, spesifik deneye göre değişebilir. - Hayati belirtilerin yokluğu ayak parmağı veya kuyruk tutamağı ile onaylandıktan sonra, fareyi bir diseksiyon tepsisine dorsal yaslanma pozisyonuna getirin ve uzuvları pim veya bantla yerine sabitleyin. Hayvanın göğüs kafesini aydınlatmak için fare gövdesini LED ışık kaynağına yönlendirin ( Malzeme Tablosuna bakın).
- Fare kürküne %70 etanol püskürtün ve herhangi bir organ ve ana damardan kaçınmaya dikkat ederek, disektör makasını kullanarak karın boyunca pelvisten ksifoide kadar 3-4 cm'lik bir orta hat kesisi yapın (Şekil 1A-C). Prosedürü kolaylaştırmak için, cildi ksifoid süreci boyunca tutmak için forseps kullanın.
- Diyaframı yanlamasına kesin ve ardından yaylı makas kullanarak göğüs kafesini her iki yan kenardan önden kesin, orta hatta sternuma ulaşmadan önce durun (Şekil 1D). Kalbi ortaya çıkarmak için fare kafasının üzerinde oluşturulan kaburga kanadını katlayın (Şekil 1E).
NOT: Sternumun kesilmesinden kaçınılmalıdır çünkü bu, kemiğe bitişik olarak yatan ana torasik arterlere zarar verecek ve toplanabilecek kan hacmini azaltacaktır. - 1 mL'lik bir şırıngaya bağlı 25 G'lik bir iğneyi sol ventriküle sokun ve pistonu yavaşça geri çekerek kanı toplayın (Şekil 1F). İğne delinmesini kolaylaştırmak için, kalbi bir çift forseps'e karşı nazikçe destekleyin.
NOT: Kan şırınganın içine hemen girmezse, iğne yavaşça döndürülmeli ve farklı bir açı test edilmelidir. Bununla birlikte, kalpte kanın dışarı sızabileceği gereksiz delikler oluşturmaktan kaçınmak için ilk denemede iğneyi düzgün bir şekilde yerleştirmek için çaba gösterilmelidir. - Kanı 1,5 mL'lik steril bir tüpe aktarın ve oda sıcaklığında 30 dakika boyunca pıhtılaşmasına izin verin. Pıhtıyı 2000 × g'da 4 °C'de 20 dakika santrifüjleyerek çıkarın. Serum fraksiyonunu temsil eden süpernatanı toplayın ve gelecekteki testler için tek kullanımlık alikotları -80 ° C'de kriyojenik tüplerde saklayın.
2. ELISA testi
- 10 mg / mL'lik bir stok elde etmek için liyofilize MOG35-55 peptidini (Malzeme Tablosuna bakınız) suda yeniden süspanse edin. Deneye başlamadan önce, stoğu kaplama tamponunda 10 μg/mL'ye seyreltin ( Malzeme Tablosuna bakınız) ve nihai çözeltinin 100 μL/oyusunu 96 oyuklu bir plakaya pipetleyin. Buharlaşmayı önlemek için plakayı yapışkan bir filmle kapatın ve plakayı gece boyunca 4 °C'de inkübe edin.
NOT: Her numune için en az 2 kuyu hesaplanmalı ve boş bir kontrol için 2 ek kuyu da dahil edilmelidir. - Paralel olarak, aynı sayıda oyuğu 10 μg / mL konsantrasyonda kaplama tamponunda çözülmüş 100 μL / kuyu sığır serum albümini (BSA) ile kaplayın. Bu ek kuyular arka plan kontrolleri olarak hizmet edecektir.
NOT: Kaplama ve engelleme tamponları farklı bileşimlere sahip olduğundan, kontrol kuyularının BSA ile kaplanması tavsiye edilir. Diğer ensefalitojenik peptitlerin (PLP139-151 veya MBP84-104 gibi) BSA'ya alternatif olarak ilgisiz antijenler olarak kullanılabileceğini lütfen unutmayın. - Ertesi gün, plakayı 3 kez% 0.05 Tween 20 (PBS-T) ile desteklenmiş 200 μL / kuyu fosfat tampon salin ile yıkayın. Daha sonra, PBS'de (Tween 20 olmadan) %3 BSA'dan yapılmış bir blokaj çözeltisinden 100 μL/kuyu ekleyin ve kapalı plakayı bir hibridizasyon fırınında 37 ° C'de 1 saat inkübe edin.
- Plakayı 200 μL/kuyu PBS-T ile 3 kez yıkayın. Her serum örneğini 1:100 oranında bloke edici solüsyon içinde seyreltin ve hem MOG35-55 hem de BSA kaplı kuyucuklara 100 μL / kuyu ekleyin. Boşluklar olarak belirlenen kuyucuklara aynı hacimde engelleme çözeltisi ekleyin. Plakayı kapalı olarak oda sıcaklığında 2 saat boyunca sürekli çalkalayarak (250 rpm) inkübe edin.
- Plakayı 200 μL/kuyu PBS-T ile 3 kez yıkayın. HRP ile konjuge ikincil antikoru (1:2000, Malzeme Tablosuna bakınız) PBS-T'de% 0.2 BSA'dan yapılmış bir çözelti içinde seyreltin ve tüm kuyucuklara 100 μL / kuyu ekleyin. Plakayı kapalı olarak oda sıcaklığında 1 saat boyunca sürekli çalkalayarak (250 rpm) inkübe edin.
- Plakayı 200 μL/kuyu PBS-T ile 3 kez yıkayın. Tüm kuyucuklara 100 μL/kuyu 3,3',5,5' tetrametilbenzidin (TMB) substratı (Malzeme Tablosuna bakınız) ekleyin ve karanlıkta 1-5 dakika inkübe ederek mavi bir rengin gelişimini izleyin.
- 100 μL/kuyu durdurma çözeltisi ekleyerek reaksiyonu durdurun ( Malzeme Tablosuna bakınız) ve 450 nm dalga boyuna ayarlanmış bir plaka okuyucu kullanarak her kuyucuktaki optik yoğunluğu (OD) ölçün.
NOT: TMB substratı, kuyucuklara eklenmeden önce 30-60 dakika oda sıcaklığında dengelenmelidir.
- 100 μL/kuyu durdurma çözeltisi ekleyerek reaksiyonu durdurun ( Malzeme Tablosuna bakınız) ve 450 nm dalga boyuna ayarlanmış bir plaka okuyucu kullanarak her kuyucuktaki optik yoğunluğu (OD) ölçün.
3. Veri analizi
- Bir Excel elektronik tablosunu plakadan okunan OD değerleriyle doldurun. Her numune için çift kuyulardan (hem MOG35-55 hem de BSA kaplı) elde edilen OD değerlerinin ortalamasını alın.
- Her numune için, BSA kaplı kuyucukların ortalama değerini MOG35-55 kaplı kuyucukların değerinden çıkarın. Elde edilen arka plan düzeltilmiş değerler, farklı serum örneklerinde anti-MOG35-55 antikorlarının konsantrasyonu ile orantılı olacaktır.
NOT: Boş kuyular, 0 civarında düzeltilmiş değerlerle sonuçlanmalıdır. - İki deneysel koşul arasındaki ortalama OD değerlerini karşılaştırmak için Mann-Whitney U testi gibi parametrik olmayan bir istatistiksel test uygulayın. Her koşul için en az 3 bağımsız örnek ekleyin.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Mevcut ELISA testinin sağlamlığını göstermek için, yöntem, tam Freund adjuvanında (CFA) 100 μg MOG35-55 peptid ile bağışıklamadan 20 gün sonra (dpi) bir C57BL / 6J dişi fare kohortundan izole edilen serum numuneleri üzerinde test edildi (CFA) doğrulanmış bir EAE indüksiyon protokolünü takiben 12,13,14. Hayvanlar ayrıca 0. ve 2. günlerde 400 ng boğmaca toksini aldı. Sahte aşılanmış hayvanlardan alınan serum örnekleri, her şeyle birlikte, ancak peptit olmadan, negatif kontroller olarak görev yaptı. Tüm EAE fareleri, 11-14 dpi arasında ilk hastalık belirtilerini geliştirdi ve 20 dpi ile 0-6 ölçeğinde ortalama 2.6 ± 0.6 (standart hata, SE) puanına ulaştı (0, belirti yok; 1, azalmış kuyruk tonu; 2, hafif monoparezi veya paraparezi; 3, şiddetli paraparezi; 4, parapleji; 5, kuadriparezi; ve 6, can çekişiyor veya ölüm)12. Beklendiği gibi, EAE numuneleri, kontrol numunelerine kıyasla önemli ölçüde daha yüksek OD değerleri sergiledi (Şekil 2). Bu veriler, hastalığın zirvesinde MOG peptidine karşı sağlam bir IgG immünoglobulin yanıtının varlığını doğrulamaktadır.
Şekil 1: Kardiyak ponksiyon prosedürü. (AE) Yetişkin farelerde kalbe erişmek için torakotomi prosedürünün temsili görüntüleri. (F) Fare kalbinin sol ventrikülüne iğne yerleştirilmesi için doğru prosedürün temsili görüntüsü. Diseksiyonu kolaylaştırmak için her panelde ilgili anatomik yapılar belirtilmiştir. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.
Resim 2: MOG peptit otoantikoru ELISA. Anti-MOG35-55 IgG immünoglobulinlerinin serum seviyeleri, bildirilen ELISA protokolü kullanılarak aşılamadan 20 gün sonra (dpi) EAE ve sahte aşılanmış farelerde test edildi. EAE örneklerinde kontrollere kıyasla sürekli olarak daha yüksek OD değerleri tespit edildi. Veriler ortalama ± SE olarak sunulur (grup başına N = 3). Gruplar arasındaki farklılıklar tek kuyruklu Mann-Whitney U testi, *P ≤ 0.05 ile değerlendirildi. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Burada, MS patolojisinin ilgili bir hayvan modelinde humoral yanıtı doğru bir şekilde ölçmek için basit ve etkili bir ELISA tabanlı protokol bildirilmiştir. Bu yöntem, MOG35-55 / C57BL6J EAE paradigma12'deki otoantikorların serum seviyelerini kontrol etmede ataksin-1 proteininin yeni rolünü tanımlamak için yakın zamanda kullanılmıştır. Bu bağlamda, bu yöntemle tutarlı ve biyolojik olarak anlamlı sonuçlar elde etmek için bir dizi faktör göz önünde bulundurulmalıdır.
İlk olarak, yüksek kaliteli serum örnekleri toplamak ve hemolizden kaçınmak çok önemlidir. Ağır hemolize örneklerde kırmızı kan hücrelerinden salınan hemoglobin ve diğer hücre içi bileşenler, ELISA testinde antijen-antikor reaksiyonuna ve nispi renk ölçümüne müdahale edebilir. Hemolizi önlemek için, eritrositlerin yırtılmasına neden olabileceğinden, kan alma sırasında şırıngada yüksek negatif basınçtan kaçınmak tercih edilir.
İkinci olarak, absorbans eğrisinin doğrusal kısmı içinde OD değerleri elde etmek için serum numunelerini seyreltmek önemlidir. Önerilen seyreltme faktörümüz (1:100), fare suşlarımızda indüklenen EAE patolojisinin varlığına göre kalibre edildi. Bu in vivo modelin içsel heterojenlik seviyesi göz önüne alındığında, test edilen spesifik EAE patolojisi için ideal seyreltme faktörünü belirlemek için ön titrasyon deneylerinin yapılması şiddetle tavsiye edilir. Benzer şekilde, TMB substratı ile inkübasyon süreleri, kromojenik sinyalin doygunluğunu önlemek ve OD değerlerini 0-2 aralığında tutmak için ayarlanabilir.
Üçüncüsü, bu protokolde elde edilen düzeltilmiş OD değerleri, farklı deneysel koşullar arasında otoantikor serum titrelerinin yarı kantitatif analizi veya hastalık ilerlemesi boyunca kinetik çalışmalar için uyumludur. Otoantikor seviyelerinin mutlak bir miktar tayini gerekiyorsa, ELISA tasarımında bir kalibrasyon eğrisi uygulanmalıdır. MOG peptidine karşı çoklu antikorlar ticari olarak temin edilebilir ve EAE farelerinin serumundaki MOG'ye özgü antikorların konsantrasyonunu hesaplamak için güvenilir standartlar olarak kullanılabilir. Farklı büyüklükteki etkileri yakalamak için, kalibrasyon antikoru için çok çeşitli seyreltmelerin dahil edilmesi önerilir (pg/mL ila μg/mL konsantrasyonları arasında değişir).
Son olarak, bu protokol son derece esnektir ve farklı araştırma ihtiyaçlarını karşılamak için kolayca uyarlanabilir. Örneğin, kaplanmış ensefalitojenik peptit, diğer EAE paradigmalarındaki otoantikor yanıtını değerlendirmek için değiştirilebilir. Ayrıca, farklı immünoglobulin sınıflarının seviyelerini ölçmek için farklı ikincil antikorlar kullanılabilir. Bu amaçla, bu protokol, ataksin-1'in MOG peptit spesifik antikorların12 hem IgG hem de IgM sınıflarını kontrol ettiğini başarıyla göstermiştir. Son olarak, MS hastalarının kanındaki otoantikorları tespit etmek için olası bir kullanım öngörülebilir. Bununla birlikte, EAE ve MS hastalıkları arasında önemli farklılıklar vardır. İlki, güçlü adjuvanlara sahip iyi tanımlanmış bir otoantijene karşı bağışıklık tepkisini artırarak yapay olarak indüklenirken, ikincisi kendiliğinden ortaya çıkar ve henüz kesin bir otoantijen tanımlanmamıştır. Son kanıtlar, moleküler taklitçiliğin viral proteinlerle olası ilişkisini göstermektedir15. Bu nedenle, bu hayvan modelinde toplanan gözlemleri doğrudan insan hastalığına çevirirken uyarılar her zaman göz önünde bulundurulmalıdır.
Özetle, mevcut protokol ticari ELISA kitlerine kolay ve kullanışlı bir alternatif teşkil etmektedir ve otoimmün demiyelinizasyon bağlamında otoantikor salınımının kesin tahmini için hücre bazlı testler (CBA'lar) gibi diğer yöntemlerle verimli bir şekilde birleştirilebilir.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Yazarlar hiçbir rakip çıkar beyan etmezler.
Acknowledgments
Bu çalışma, Ulusal Sağlık Enstitüleri (R03NS131908) ve Savunma Bakanlığı tarafından W81XWH-22-1-0517 Ödül No'lu Multipl Skleroz Araştırma Programı aracılığıyla desteklenmiştir. Görüşler, yorumlar, sonuçlar ve tavsiyeler yazara aittir ve Savunma Bakanlığı tarafından onaylanması gerekmez. Bu çalışma aynı zamanda East Carolina Üniversitesi başlangıç fonları tarafından da desteklenmiştir.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 1 mL syringes | BD Biosciences | 309628 | |
| 1.5 mL microcentrifuge tubes | Fisher | 05-408-129 | |
| 25 G needles | BD Biosciences | 305122 | |
| 3,3',5,5'-tetramethylbenzidine (TMB) substrate | Thermo Fisher | N301 | Store at 4 °C |
| Adhesive seals | Thermo Fisher | AB0558 | |
| Bovine serum albumin (BSA) | Sigma | A7906 | Store at 4 °C |
| C57BL/6J female mice | The Jackson Laboratory | 000664 | Animals between 8-10 weeks of age should be used for EAE experiments |
| Cryogenic tubes | Fisher | 10-500-25 | |
| Dissection tray | Fisher | S111022 | |
| Dissector scissors | Fine Science Tools | 14082-09 | |
| ELISA coating buffer | BioLegend | 421701 | Store at 4°C |
| Excel software | Microsoft | Analysis spreadsheet | |
| Forceps | Fine Science Tools | 11152-10 | |
| Goat Anti-Mouse IgG, Human ads-HRP | SouthernBiotech | 1030-05 | Store at 4 °C |
| LED light source | Fisher | AMPSILED21 | |
| Microplate reader | Fisher | 14-377-575 | |
| Molecular biology grade water | Corning | 46-000-Cl | |
| Mouse MOG35-55 peptide | EZBiolab | cp7203 | Store at -80 °C |
| Multichannel pipette | Axygen | AP-12-200-P | |
| Noyes spring scissors | Fine Science Tools | 15011-12 | |
| Nunc MaxiSorp 96-well plates | BioLegend | 423501 | |
| Orbital shaker | Fisher | 88-861-023 | |
| Oven | VWR | 445-0024 | |
| Phosphate buffer saline (PBS) | Thermo Fisher | 14190144 | |
| Refrigerated tabletop centrifuge | Thermo Fisher | 75002441 | |
| Stop solution | Thermo Fisher | N600 | |
| Tween 20 | Bio-Rad | 1706531 |
References
- Reich, D. S., Lucchinetti, C. F., Calabresi, P. A.
- Baranzini, S. E., et al. B cell repertoire diversity and clonal expansion in multiple sclerosis brain lesions. J Immunol. 163 (9), 5133-5144 (1999).
- Genain, C. P., Cannella, B., Hauser, S. L., Raine, C. S. Identification of autoantibodies associated with myelin damage in multiple sclerosis. Nat Med. 5 (2), 170-175 (1999).
- Ma, Q., et al. Specific hypomethylation programs underpin b cell activation in early multiple sclerosis. Proc Natl Acad Sci U S A. 118 (51), e2111920118 (2021).
- Hauser, S. L., et al. Ocrelizumab versus interferon beta-1a in relapsing multiple sclerosis. N Engl J Med. 376 (3), 221-234 (2017).
- Montalban, X., et al. Ocrelizumab versus placebo in primary progressive multiple sclerosis. N Engl J Med. 376 (3), 209-220 (2017).
- Didonna, A. Preclinical models of multiple sclerosis: Advantages and limitations towards better therapies. Curr Med Chem. 23 (14), 1442-1459 (2016).
- Steinman, L., Zamvil, S. S. How to successfully apply animal studies in experimental allergic encephalomyelitis to research on multiple sclerosis. Ann Neurol. 60 (1), 12-21 (2006).
- Khare, P., et al. Myelin oligodendrocyte glycoprotein-specific antibodies from multiple sclerosis patients exacerbate disease in a humanized mouse model. J Autoimmun. 86, 104-115 (2018).
- Marta, C. B., Oliver, A. R., Sweet, R. A., Pfeiffer, S. E., Ruddle, N. H. Pathogenic myelin oligodendrocyte glycoprotein antibodies recognize glycosylated epitopes and perturb oligodendrocyte physiology. Proc Natl Acad Sci U S A. 102 (39), 13992-13997 (2005).
- Flach, A. C., et al. Autoantibody-boosted t-cell reactivation in the target organ triggers manifestation of autoimmune cns disease. Proc Natl Acad Sci U S A. 113 (12), 3323-3328 (2016).
- Didonna, A., et al. Ataxin-1 regulates b cell function and the severity of autoimmune experimental encephalomyelitis. Proc Natl Acad Sci U S A. 117 (38), 23742-23750 (2020).
- Didonna, A., et al. Sex-specific tau methylation patterns and synaptic transcriptional alterations are associated with neural vulnerability during chronic neuroinflammation. J Autoimmun. 101, 56-69 (2019).
- Ma, Q., Matsunaga, A., Ho, B., Oksenberg, J. R., Didonna, A. Oligodendrocyte-specific argonaute profiling identifies micrornas associated with experimental autoimmune encephalomyelitis. J Neuroinflammation. 17 (1), 297 (2020).
- Lanz, T. V., et al. Clonally expanded b cells in multiple sclerosis bind ebv ebna1 and glialcam. Nature. 603 (7900), 321-327 (2022).
