Summary

Analyse van celsuspensies Geïsoleerd van vaste weefsels door Spectral flowcytometrie

Published: May 05, 2017
doi:

Summary

Dit artikel beschrijft spectrale cytometry, een nieuwe benadering flowcytometrie dat de vormen van emissiespectra gebruikt om fluorochromen onderscheiden. Een algoritme vervangt vergoedingen en kan de behandeling van auto-fluorescentie als een onafhankelijke parameter. Deze nieuwe aanpak maakt het mogelijk voor een juiste analyse van de cellen geïsoleerd van vaste organen.

Abstract

Flowcytometrie is gebruikt voor de afgelopen 40 jaar te definiëren en analyseren van het fenotype van lymfe en andere hematopoietische cellen. Aanvankelijk beperkt tot de analyse van enkele fluorochromen, momenteel zijn er tientallen verschillende fluorescente kleurstoffen en tot 14-18 verschillende kleurstoffen kunnen worden gecombineerd tegelijk. Echter, een aantal beperkingen belemmeren nog steeds de analytische mogelijkheden. Door de veelheid van fluorescerende probes is gegevensanalyse steeds complexer geworden vanwege de noodzaak van grote multi-parametrische compensatie matrices. Bovendien hebben mutante muismodellen uitvoering fluorescerende eiwitten op te sporen en sporen specifieke celtypen in verschillende weefsels beschikbaar komen, zodat de analyse (met flowcytometrie) van auto-fluorescentie celsuspensies verkregen vaste organen nodig. Spectraal flowcytometrie, die het vormen van emissiespectra onderscheidt langs een groot aantal continue golflengten, wordt een aantal van deze problemen. De gegevens worden geanalyseerd wMet een algoritme dat compensatiematrices vervangt en automatisch fluorescentie behandelt als een onafhankelijke parameter. Derhalve zou spectrale stromingscytometrie in staat zijn om fluorkromen te onderscheiden met vergelijkbare emissietoppen en kan een multi-parametrische analyse bieden zonder compensatievereisten.

Dit protocol beschrijft de spectrale flowcytometrie analyse, waardoor een 21-parameter (19 fluorescerende probes) karakterisering en het beheer van een auto-fluorescerend signaal, die hoge resolutie bieden bij kleine populatie detectie. De hier gepresenteerde resultaten tonen aan dat spectraal stromingscytometrie voordelen biedt in de analyse van celpopulaties uit weefsels die moeilijk zijn om te karakteriseren in conventionele stromingscytometrie, zoals het hart en de darm. Spectrale stromingscytometrie demonstreert aldus de multi-parametrische analytische capaciteit van conventionele stromingscytometrie met hoge prestaties zonder de vereiste compensatie en maakt het mogelijk om fluorescentie te beheersen.

Introduction

In de afgelopen decennia, flowcytometrie (FCM) werd op grote schaal beschikbaar analytische methode van essentieel belang voor mobiele phenotyping studies. Er is een aanzienlijke verhoging van de beschikbare fluorescerende kleurstoffen, fluorochromen bijzonder aangeslagen door de violette laser (405 nm) (bijvoorbeeld Brilliant Violet en nieuwe Q-dot kleurstoffen) zijn. Echter, de groei van de beschikbare fluorescerende kleurstoffen verhoogt het risico van overlappende emissies en vergt arbeidsintensieve compensatie matrices. FCM werd op grote schaal gebruikt om celsuspensies van vast weefsel te analyseren, maar de aanwezigheid van auto-fluorescerende cellen beperkt de discriminatie van specifiek gelabeld populaties.

De basisprincipes van spectrale FCM worden in detail Futamura et al. 1, 2. In het kort wordt de spectrale FCM hier gebruikt (zie de tabel van materialen) voorzien van 405, 488 en 638 nm lasers. De spectrale FCM vangt de uitgezonden fluorescence spectra als een 32-kanaals lineaire reeks PMT (32ch PMT) van 500 nm tot 800 nm en 2 onafhankelijke PMT van 420 nm tot 440 nm en 450 nm tot 469 nm, respectievelijk, die de gebruikelijke bandfilters vervangen. De 488 en 405/638 nm laserspots ruimtelijk gescheiden, terwijl de 405 nm en 638 nm laserspots co-lineair. Voor elk individueel deeltje, de spectrale FCM meet tot 66 kanalen van fluorescentie data opgewekt door de 405 nm en 488 nm lasers. Wanneer cellen worden geëxciteerd door de 638 nm laser, spectrale FCM van 58 kanalen van fluorescentie gegevens omdat een masker wordt geplaatst om te voorkomen dat de 638 nm laser schijnen in de PMT. Spectrale FCM analyseert het volledige spectrum verkregen data met een algoritme op basis van de gewogen kleinste kwadraten methode (WLSM), waarbij de scheiding van overlappende fluorescentiespectra mogelijk maakt. Spectra verkregen uit één gekleurde en ongekleurde monsters worden als de basis referentiespectra. Multi-gekleurd monsters mathematisch aangebracht eennd onvermengd, en het spectrum van een monster met gemengde fluorescerende labels wordt ontleed in een verzameling van de samenstellende spectra. De ontmenging, spectrale techniek 3, 4, vervangt de vergoeding die het signaal van alle detectoren behalve het meten van een bepaalde kleurstof verwijderd.

In deze studie hebben we gecombineerd en getest 19 fluorochromen in één 21-parameteranalyse dat het grootste hematopoietische subsets in de muis milt kenmerk. Daarnaast hebben we aangetoond dat de spectrale cytometrie auto-fluorescerende signaal kan beheren, waardoor de karakterisering van intestinale intra-epitheliale lymfocyten en van het embryonale hart te verbeteren. Inderdaad, in deze weefsels, auto-fluorescentie beheer toegestaan ​​voor de toewijzing van specifieke fluorescentie om cellen die uit de analyse in conventionele FCM zouden worden uitgesloten.

Protocol

Alle experimenten werden uitgevoerd volgens het Ethische Handvest van het Pasteur Instituut en de EU-richtlijnen en werden goedgekeurd door het Franse ministerie van Landbouw. 1. Cell Suspension Preparatie van volwassen muisorganen Isolatie van splenocyten Euthanize volwassen muizen door cervicale dislocatie. Maak een incisie op de buik van de buik en open de huid met een schaar. Oes de milt met pincet. Kruip de milt tussen 2 glasmicroscoopschui…

Representative Results

21-spectrale parameter FCM paneel splenocyten analyseren Figuur 1 toont de resultaten verkregen met de 19-fluorescerend antilichaampanel aangebracht op miltcellen die verschillende antilichamen die subsets van T, B, NK, dendritisch en myeloïde cellen, terwijl CD45 labels alle hematopoietische cellen met kernen. Het paneel omvat ook een levensvatbaarheidkleurstof (PI), en de grootte (FSC) en de granulariteit (SSC…

Discussion

Gebruikelijke FCM is gebaseerd op de detectie van fotonen uitgezonden na excitatie van fluorescerende probes. De fluorescentie emissie van één fluorochroom gedetecteerd in een detector ontworpen om het signaal van een andere fluorochroom meten induceert fysische overlap. Dit spillover onder emissiespectra moet worden gecorrigeerd door compensaties.

Spectrale FCM en gegevensverwerking door de ontmenging deconvolutie-algoritme maakt de combinatie van fluorochromen die nauwe emissiepieken zon…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Wij erkennen de technische en theoretische bijdragen in spectrale cytometrie van K. Futamura, die ook kritisch het manuscript herzien. We zijn ook dank verschuldigd aan C. Ait-Mansour, P.-H. Commere, A. Bandeira, en P. Pereira voor het kritisch lezen van het manuscript en voor eindeloze technisch advies en ondersteuning. We danken ook P. Pereira voor de gave van de anti Vγ7-APC en Vδ4-biotine gelabelde antilichamen. We aknowledge het Centre d'Enseignements van Pasteur Instituut voor gastvrij en het ondersteunen van het filmen logistiek. Dit werk werd ondersteund door het Instituut Pasteur, het Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale (INSERM); de Swiss National Science Foundation en Pasteur Bourse Roux (SS); Fundação para a Ciência ea Tecnologia – SFRH / BD / 74218/2010 (MV); en Université Paris Diderot, het Agence Nationale de la Recherche (ANR) project Twothyme, de ANR, en Program REVIVE (investering voor de toekomst) (AC).

Materials

Mice Janvier Labs CD45.2 Source of cells
Ethanol 70% VWR 83801.36 Sterilization
DPBS (Ca2+, Mg2+) GIBCO ThermoFisher 14040-174 Embryos collection
Hanks' Balanced Salt Solution (+Ca2+ +Mg2+) (HBSS+/+) GIBCO Life ThermoFisher 14025092 Dissociation, digestion and staining solutions
Hanks' Balanced Salt Solution (-Ca2+, -Mg2+) (HBSS-/-) GIBCO Life ThermoFisher 14175095 Dissociation, digestion and staining solutions
Fetal calf serum (FCS) EUROBIO CVFSVF00-0U Dissociation, digestion and staining solutions
Collagenase Sigma C2139 Enzymatic solution
90 x 15 mm,
plastic tissue culture Petri dishes.
TPP T93100 Embryos and hearts collection
35 x 15 mm,
plastic tissue culture Petri dishes.
TPP T9340 Hearts collection
Fine iris scissor Fine Science Tools 14090-09 Dissection tools
Gross forceps (narrow pattern forceps, curved 12 cm Fine Science Tools 11003-12 Dissection tools
Fine forceps (Dumont no. 7 forceps, Fine Science Tools 11272-30 Dissection tools
Scalpel  VWR 21909-668 Dissection tools
LEICA MZ6 Dissection microscope LEICA MZ6 10445111 Sampling; Occular W-Pl10x/23
Cold lamp source SCHOTT VWR KL1500 compact Sampling;
Two goose neck fibers adapted
FACS tubes VWR 60819-310 Digesting cells
96 well plate (round bottom) VWR 10861-564 Staining cells
Nylon mesh bolting cloth sterilized,
50/50 mm pieces.
SEFAR NITEX SEFAR NITEX Cell filtration
UltrasComp eBeads
Fluorescence labeled antibodies Biolegend Catalogue number see table below Staining cells

References

  1. Futamura, K., et al. Novel full-spectral flow cytometry with multiple spectrally-adjacent fluorescent proteins and fluorochromes and visualization of in vivo cellular movement. Cytometry A. 87 (9), 830-842 (2015).
  2. Schmutz, S., Valente, M., Cumano, A., Novault, S. Spectral Cytometry Has Unique Properties Allowing Multicolor Analysis of Cell Suspensions Isolated from Solid Tissues. PLoS One. 11 (8), e0159961 (2016).
  3. Roederer, M. Multiparameter FACS analysis. Curr Protoc Immunol. , (2002).
  4. Perfetto, S. P., Chattopadhyay, P. K., Roederer, M. Seventeen-colour flow cytometry: unravelling the immune system. Nat Rev Immunol. 4 (8), 648-655 (2004).
  5. Grigoriadou, K., Boucontet, L., Pereira, P. T cell receptor-gamma allele-specific selection of V gamma 1/V delta 4 cells in the intestinal epithelium. J Immunol. 169 (7), 3736-3743 (2002).
  6. Guy-Grand, D., et al. Origin, trafficking, and intraepithelial fate of gut-tropic T cells. J Exp Med. 210 (9), 1839-1854 (2013).
  7. Lavoinne, A., Cauliez, B. [Cardiac troponin I and T: specific biomarkers of cardiomyocyte]. Rev Med Interne. 25 (2), 115-123 (2004).
  8. Staudt, D. W., Liu, J., Thorn, K. S., Stuurman, N., Liebling, M., Stainier, D. Y. High-resolution imaging of cardiomyocyte behavior reveals two distinct steps in ventricular trabeculation. Development. 141 (3), 585-593 (2014).
  9. Beltrami, A. P., et al. Adult cardiac stem cells are multipotent and support myocardial regeneration. Cell. 114 (6), 763-776 (2003).
  10. Keith, M. C., Bolli, R. “String theory” of c-kit(pos) cardiac cells: a new paradigm regarding the nature of these cells that may reconcile apparently discrepant results. Circ Res. 116 (7), 1216-1230 (2015).
  11. Valente, M., Nascimento, D. S., Cumano, A., Pinto-do-Ó, P. Sca-1+ cardiac progenitor cells and heart-making: a critical synopsis. Stem Cells Dev. 23 (19), 2263-2273 (2014).
check_url/55578?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Schmutz, S., Valente, M., Cumano, A., Novault, S. Analysis of Cell Suspensions Isolated from Solid Tissues by Spectral Flow Cytometry. J. Vis. Exp. (123), e55578, doi:10.3791/55578 (2017).

View Video