Summary

एक तीन आयामी पूर्ण मोटाई त्वचा की पीढ़ी के बराबर है और स्वचालित लोग घायल हो गए

Published: February 26, 2015
doi:

Summary

The goal of this protocol is to build up a three-dimensional full thickness skin equivalent, which resembles natural skin. With a specifically constructed automated wounding device, precise and reproducible wounds can be generated under maintenance of sterility.

Abstract

In vitro models are a cost effective and ethical alternative to study cutaneous wound healing processes. Moreover, by using human cells, these models reflect the human wound situation better than animal models. Although two-dimensional models are widely used to investigate processes such as cellular migration and proliferation, models that are more complex are required to gain a deeper knowledge about wound healing. Besides a suitable model system, the generation of precise and reproducible wounds is crucial to ensure comparable results between different test runs. In this study, the generation of a three-dimensional full thickness skin equivalent to study wound healing is shown. The dermal part of the models is comprised of human dermal fibroblast embedded in a rat-tail collagen type I hydrogel. Following the inoculation with human epidermal keratinocytes and consequent culture at the air-liquid interface, a multilayered epidermis is formed on top of the models. To study the wound healing process, we additionally developed an automated wounding device, which generates standardized wounds in a sterile atmosphere.

Introduction

त्वचा शरीर का सबसे बड़ा अंग है। यह बाहरी वातावरण और आंतरिक अंगों के बीच एक बाधा पैदा करता है। इसके अलावा, त्वचा द्रव नुकसान, पर्यावरणीय प्रभावों, चोटों और संक्रमण से शरीर की रक्षा करता है और शरीर का तापमान एक विनियमित करने में मदद करता है। कारण इसकी उजागर स्थान के लिए, त्वचा अक्सर, यांत्रिक थर्मल या रासायनिक आघात से प्रभावित है। त्वचा स्वयं की मरम्मत का आम तौर पर सक्षम है हालांकि, इस तरह के संक्रमण, ऑक्सीजन, और शिरापरक प्रचुरता के रूप में कई स्थानीय कारकों बिगड़ा घाव भरने के लिए नेतृत्व कर सकते हैं। घाव भरने में भी मोटापा, शराब, धूम्रपान, दवा, पोषण और मधुमेह जैसे रोगों के रूप में प्रणालीगत कारकों से दखल किया जा सकता है। 2

(मैं) भड़काऊ चरण (ii) प्रफलन और (iii) remodeling के चरण: घाव भरने की प्रक्रिया तीन चरणों में विभाजित किया जा सकता है। त्वचा को चोट करने पर, एक जटिल संकेत-झरना घाव को बंद करने के लिए अग्रणी शुरू होता है। 3चोट के बाद, घाव से खून बह रहा है और एक खून का थक्का का गठन किया है। Fibroblasts खून का थक्का में कदम और बाद में पिछले कुछ वर्षों में remodeled है जो नए ऊतक के साथ बदलें।

जैविक प्रक्रियाओं अंतर्निहित त्वचीय मरम्मत की वर्तमान समझ सीमित है। छोटे जानवर और सुअर मॉडल घाव भरने का अध्ययन करने के लिए इस्तेमाल किया गया है। हालांकि, इन परिणामों सीधे प्रजाति विशिष्ट मतभेद के कारण मनुष्य के लिए स्थानांतरित नहीं किया जा सकता है। इन vivo में मॉडल के अलावा, घाव भरने के कुछ पहलुओं 4 ये scratching मॉडल अत्यधिक मानकीकृत कर रहे हैं। अमर सेल लाइनों या प्राथमिक कोशिकाओं के आधार पर इन विट्रो monolayer संस्कृतियों के scratching के माध्यम से एक घाव स्थिति का अनुकरण द्वारा अध्ययन किया जा सकता है, लेकिन पर्याप्त रूप से प्रतिबिंबित नहीं करते परिसर में विवो फिजियोलॉजी। 5 दो आयामी मॉडल के अलावा, तीन आयामी मानव त्वचा समकक्ष dermatological अनुसंधान के लिए विकसित किया गया है। इन मॉडलों के चमड़े का हिस्सा जीई हैंnerated decellularized डर्मिस, 6 कोलेजन हाइड्रोजेल, 7,8 glycosaminoglycans 9 या सिंथेटिक सामग्री सहित विभिन्न scaffolds के प्रयोग से। 10 इन त्वचा समकक्ष रोजगार, उपकला-mesenchymal बातचीत 11 की भूमिका, पुनः epithelialization, fibroblasts और केरेटिनकोशिकाओं और बीच सेलुलर crosstalk विभिन्न विकास कारकों के प्रभाव का अध्ययन किया जा सकता है। इसके अलावा, इन मॉडलों fibroblasts के घायल क्षेत्र में विस्थापित और कैसे chemotactic कारकों ऊतक पुनर्जनन को कैसे प्रभावित करती बारे में नए ज्ञान हासिल करने के लिए उपयोगी होते हैं। 12

घाव भरने मॉडल ही की न केवल पीढ़ी चुनौती दे रहा है, लेकिन यह भी एक मॉडल में एक अत्यधिक मानकीकृत घाव समस्याग्रस्त है स्थापित करने के लिए। आम तकनीकों घाव खरोंच परीक्षण, 13 जलता है, 14 टेप घर्षण, 15 थर्मल चोट, 16 सक्शन छाले, 17 तरल नाइट्रोजन, 18 लेजर, 19 कर रहे हैं बनाने के लिए </समर्थन> नलियां, 18 meshers 6 और बायोप्सी घूंसे। इन तरीकों में से 20 अधिकांश एक ही नुकसान है। मैन्युअल रूप से लागू की चोट लगने के मानकीकरण के लिए और कई परीक्षणों के बीच पुन: पेश करने के लिए मुश्किल हैं। आकार, आकृति और घाव की गहराई से अध्ययन के बीच भिन्न है और इस तरह के अनुसंधान डेटा की गुणवत्ता ख़राब। परिभाषित त्वचा लोग घायल हो गए के लिए लेजर का उपयोग अपेक्षाकृत आसानी से मानकीकृत लेकिन जला घाव नकल उतार एक ऐसी स्थिति की ओर जाता है किया जा सकता है। लेजर द्वारा लागू गर्मी परिगलित ऊतक को जन्म दे सकता है, जो प्रोटीन विकृतीकरण, प्लेटलेट्स एकत्रीकरण या वाहिकाओं कसना, पैदा कर सकता है।

एक वैकल्पिक दृष्टिकोण में, हम हमारे बाँझ शर्तों के तहत परिभाषित और सटीक त्वचीय घाव उत्पन्न करने के लिए अनुमति देता है जो एक स्वचालित लोग घायल हो गए डिवाइस (AWD), विकसित की है। गहराई और गति पैठ के रूप में अच्छी तरह से ड्रिल सिर की क्रांतियों की तरह लोग घायल हो गए मापदंडों, विनियमित किया जा सकता है। इस अध्ययन में, हम घर में विकसित पूर्ण मोटाई त्वचा समकक्ष के साथ AWD संयुक्त (एफटीGangatirkar एट अल द्वारा प्रकाशित एक प्रोटोकॉल के लिए तुलना कर रहे हैं कि एसई)। 8 त्वचा बराबर की त्वचीय परत मैं हाइड्रोजेल एक कोलेजन में एम्बेडेड रहे हैं जो मानव त्वचीय fibroblasts (HDF), से बना है। त्वचीय परत पर, मानव एपिडर्मल केरेटिनकोशिकाओं (HEK) वरीयता प्राप्त कर रहे हैं। हवा तरल इंटरफेस में दो सप्ताह के भीतर HEK कई महत्वपूर्ण सेल परतों और एक परत corneum से बना एक एपिडर्मिस का निर्माण। इस मॉडल की पीढ़ी इसके अलावा, इस अध्ययन FTSE में परिभाषित और सटीक घाव बनाने के लिए AWD के उपयोग से पता चलता है।

Protocol

नोट: प्रोटोकॉल 24 पूर्ण मोटाई त्वचा समकक्ष के उत्पादन के लिए बनाया गया है। त्वचीय fibroblasts और एपिडर्मल केरेटिनकोशिकाओं मानव 21,22 अवगत सहमति पहले से प्राप्त हुई थी। एक पहले प्रकाशित प्रोटोकॉल के अनुसार त?…

Representative Results

पृथक HDF और HEK आकृति विज्ञान में और ठेठ मार्करों की अभिव्यक्ति में दोनों भिन्न होते हैं। HEK की आकृति विज्ञान एक cobblestone आकारिकी द्वारा वर्णित किया जा सकता है, जबकि HDF, ठेठ धुरी आकार आकृति विज्ञान दिखाया। कोशिका…

Discussion

इन विट्रो कोशिकाओं में आमतौर पर कोशिकाओं प्लास्टिक की सतहों का पालन करना है जिसमें दो आयामी सेल संस्कृतियों में विस्तार कर रहे हैं। हालांकि, इन संस्कृति शर्तों कोशिकाओं vivo में बढ़ने में जो श…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors thank the Fraunhofer ISC for the collaboration concerning the construction of the automated wounding device. The project was founded by Fraunhofer internal project “Märkte von Übermorgen” (SkinHeal).

Materials

Name of Material/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
Trypsin EDTA (1:250) 0.5 % in DPBS  PAA L11-003 0.05%
Dulbecco’s Phosphate Buffered Saline Sigma D8537
Collagen (6 mg/ml in 0,1 % acetic acid) Produced in house
Fibronectin Human Protein, Plasma (50 µg/ml) Life Technologies 33016-015
Inserts Nunc 140627
6 well plate  Nunc 140685
24 well plate Nunc 142485
Microscope slides R. Langenbrinck 03-0070
Fibroblasts culturing (500 ml):
DMEM, high glucose Life Technologies 11965-092 89% (445 ml)
Fetal bovine serum Bio & Sell FCS.ADD.0500 10% (50 ml)
Penicillin-Streptomycin (10,000 U/mL) Life Technologies 15140-122 1% (5 ml)
Keratinozyten culture medium (500 ml): 
Keratinocyte Growth Medium 2 Promocell  C-20111 89% (445 ml)
Keratinocyte Growth Medium 2 SupplementPack Promocell  C-39011
Penicillin-Streptomycin (10,000 U/mL) Life Technologies 15140-122 1% (5 ml)
Gel neutralization solution (250 ml):
Dulbecco’s Modified Eagle Medium, high Glucose Powder with L-Glutamine PAA G0001,3010 93% (232,5 ml)
Chondroitin sulfate sodium salt from shark cartilage Sigma C4384-1g 1% (2,5 ml)
Fetal bovine serum Bio & Sell FCS.ADD.0500 3% (7,5 ml)
HEPES Sigma  H3375-1kg 3% (7,5 ml)
Skin model submers medium (500ml): 
Keratinocyte Growth Medium 2 Promocell  C-20111
Keratinocyte Growth Medium 2 SupplementPack Promocell  C-39011
Fetal calf serum Bio & Sell FCS.ADD.0500 5%-2% (25 ml-10 ml) 
Penicillin-Streptomycin (10,000 U/mL) Life Technologies 15140-122 1% (5 ml)
Skin model air-liquid interface medium (500 ml): 
Keratinocyte Growth Medium 2
Keratinocyte Growth Medium 2 Supplement Pack Promocell  C-39011 adding only supplements: Insulin, Hydrocortisone, Epinephrine, Transferrin, CaCl2
Penicillin-Streptomycin (10,000 U/mL) Life Technologies 15140-122 1% (5 ml)
CaCl2 (300 mM) Sigma  C7902-500g  0,62% (3,1 ml)
Histology:
IHC-Kit DCS SuperVision 2 HRP DCS PD000KIT
Vimentin antibody Abcam ab92547
CK14 antibody Sigma  HPA023040-100µl
CK10 antibody Dako M7002
Filaggrin antibody Abcam ab81468
H&E staining
Mayer´s Haemalaun AppliChem A0884,2500
Xylol Sigma Aldrich 296325-4X2L
Ethanol Sigma Aldrich 32205-4X2.5L
HCl Sigma Aldrich H1758-500ML
Eosin Sigma Aldrich E4009-5G
2-Propanolol Sigma Aldrich I9516-500ML
Mounting Medium Sigma Aldrich M1289-10ML

References

  1. Proksch, E., Brandner, J. M., Jensen, J. M. The skin: an indispensable barrier. Exp Dermatol. 17, 1063-1072 (2008).
  2. Guo, S., Dipietro, L. A. Factors affecting wound healing. J Dent Res. 89, 219-229 (2010).
  3. Kirsner, R. S., Eaglstein, W. H. The wound healing process. Dermatol Clin. 11, 629-640 (1993).
  4. Cory, G. Scratch-wound assay. Methods Mol Biol. 769, 25-30 (2011).
  5. Sun, T., Jackson, S., Haycock, J. W., MacNeil, S. Culture of skin cells in 3D rather than 2D improves their ability to survive exposure to cytotoxic agents. J Biotechnol. 122 (3), 372-381 (2006).
  6. Harrison, C. A., Heaton, M. J., Layton, C. M., Mac Neil, S. Use of an in vitro model of tissue-engineered human skin to study keratinocyte attachment and migration in the process of reepithelialization. Wound Repair Regen. 14 (2), 203-209 (2006).
  7. Wilkins, L. M., Watson, S. R., Prosky, S. J., Meunier, S. F., Parenteau, N. L. Development of a bilayered living skin construct for clinical applications. Biotechnol Bioeng. 43 (8), 747-756 (1994).
  8. Gangatirkar, P., Paquet-Fifield, S., Li, A., Rossi, R., Kaur, P. Establishment of 3D organotypic cultures using human neonatal epidermal cells. Nat Protoc. 2 (1), 178-186 (2007).
  9. Boyce, S. T. Skin substitutes from cultured cells and collagen-GAG polymers. Med Biol Eng Comput. 36 (6), 791-800 (1998).
  10. El-Ghalbzouri, A., Lamme, E. N., van Blitterswijk, C., Koopman, J., Ponec, M. The use of PEGT/PBT as a dermal scaffold for skin tissue engineering. Biomaterials. 25 (5), 2987-2996 (2004).
  11. Maas-Szabowski, N., Shimotoyodome, A., Fusenig, N. E. Keratinocyte growth regulation in fibroblast cocultures via a double paracrine mechanism. J Cell Sci. 112 (Pt 12), 1843-1853 (1999).
  12. Coolen, N. A., Vlig, M., vanden Bogaerdt, A. J., Middelkoop, E., Ulrich, M. M. Development of an in vitro burn wound model. Wound Repair Regen. 16 (4), 559-567 (2008).
  13. Oberringer, M., Meins, C., Bubel, M., Pohlemann, T. A new in vitro wound model based on the co-culture of human dermal microvascular endothelial cells and human dermal fibroblasts. Biol Cell. 99 (4), 197-207 (2007).
  14. Cribbs, R. K., Luquette, M. H., Besner, G. E. A standardized model of partial thickness scald burns in mice. J Surg Res. 80 (1), 69-74 (1998).
  15. Reed, J. T., Ghadially, R., Elias, P. M. Skin type, but neither race nor gender, influence epidermal permeability barrier function. Arch Dermatol. 131 (10), 1134-1138 (1995).
  16. Pilcher, B. K., et al. Keratinocyte collagenase-1 expression requires an epidermal growth factor receptor autocrine mechanism. J Biol Chem. 274 (15), 10372-10381 (1999).
  17. Blank, I. H., Miller, O. G. A method for the separation of the epidermis from the dermis. J Invest Dermatol. 15 (1), 9-10 (1950).
  18. El Ghalbzouri, A., et al. Fibroblasts facilitate re-epithelialization in wounded human skin equivalents. Lab Invest. 84 (1), 102-112 (2004).
  19. Vaughan, M. B., et al. A reproducible laser-wounded skin equivalent model to study the effects of aging in vitro. Rejuvenation Res. 7 (2), 99-110 (2004).
  20. Geer, D. J., Swartz, D. D., Andreadis, S. T. In vivo model of wound healing based on transplanted tissue-engineered skin. Tissue Eng. 10 (7-8), 1006-1017 (2004).
  21. Bell, E., et al. The reconstitution of living skin. J Invest Dermatol. 81 (1 Suppl), 2s-10s (1983).
  22. Asselineau, D., Prunieras, M. Reconstruction of ‘simplified’ skin: control of fabrication. Br J Dermatol. 111, 219-222 (1984).
  23. Pampaloni, F., Reynaud, E. G., Stelzer, E. H. K. The third dimension bridges the gap between cell culture and live tissue. Nat Rev Mol Cell Biol. 8 (10), 839-845 (2007).
check_url/kr/52576?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Rossi, A., Appelt-Menzel, A., Kurdyn, S., Walles, H., Groeber, F. Generation of a Three-dimensional Full Thickness Skin Equivalent and Automated Wounding. J. Vis. Exp. (96), e52576, doi:10.3791/52576 (2015).

View Video