Summary

Encellede Mikroinjeksjon for Cell Communication analyse

Published: February 26, 2017
doi:

Summary

Vi beskriver her hvordan du utfører en encellet mikroinjeksjon av Lucifer Yellow å visualisere mobil kommunikasjon via gap-kryss i levende celler, og gi noen nyttige tips. Vi forventer at denne artikkelen vil hjelpe alle til å vurdere graden av cellulær kobling grunn av funksjonelle gap veikryss. Alt som er beskrevet her kan være i prinsippet tilpasses andre fluorescerende fargestoffer med molekylvekt under 1000 Dalton.

Abstract

Gap junctions are intercellular channels that allow the communication of neighboring cells. This communication depends on the contribution of a hemichannel by each neighboring cell to form the gap junction. In mammalian cells, the hemichannel is formed by six connexins, monomers with four transmembrane domains and a C and N terminal within the cytoplasm. Gap junctions permit the exchange of ions, second messengers, and small metabolites. In addition, they have important roles in many forms of cellular communication within physiological processes such as synaptic transmission, heart contraction, cell growth and differentiation. We detail how to perform a single-cell microinjection of Lucifer Yellow to visualize cellular communication via gap-junctions in living cells. It is expected that in functional gap junctions, the dye will diffuse from the loaded cell to the connected cells. It is a very useful technique to study gap junctions since you can evaluate the diffusion of the fluorescence in real time. We discuss how to prepare the cells and the micropipette, how to use a micromanipulator and inject a low molecular weight fluorescent dye in an epithelial cell line.

Introduction

Gap veikryss er inter kanaler som gjør at inter blant nabocellene 1. Denne kommunikasjonen forbinder to eller flere tilstøtende celler, hvor hver av dem bidrar med en connexon eller hemichannel for å danne det intercellulære kanalen. I pattedyrceller, er connexon dannet av seks connexins, monomerer med fire transmembrane domener og et C-terminal og N i cytoplasmaet 2. Gap junctions ikke bare tillate strøm av ioner, andre budbringere og små metabolitter, men også bidra til mange former for mobil kommunikasjon i mange fysiologiske prosesser, slik som synaptisk transmisjon, hjerte sammentrekning, cellevekst og differensiering 3, 4, 5, 6, 7, 8. I tillegg gap junctions har vært forbundet medmange sykdommer, inkludert kreft 9, 10, muskelatrofi 11, noen genetiske sykdommer og demyeliniserende sykdommer 12.

Denne type av intercellulære krysstale kan evalueres ved flere metoder for 13, 14, 15, 16. I denne artikkelen viser vi hvordan du utfører en encellet mikroinjeksjon av Lucifer Yellow å visualisere mobil kommunikasjon via gap-kryss i levende celler. Vi diskuterer hvordan å fremstille celler og mikropipette, bruken av mikromanipluatoren og injeksjon av Lucifer gult fargestoff i en tymisk epitel cellelinje. Vanligvis kan dette eksperimentelle fremgangsmåte analyseres ved gjennomsnittet av celler som er koblet til cellen lastet med fargestoff. I tillegg kan denne fremgangsmåte brukes sammen med andre fluorescerende fargestoffer med molekylvekt under gapetveikryss cut-off som er omtrent 1000 dalton.

Protocol

1. Utarbeidelse av celler Opprettholde en kultur av en tymisk epitel cellelinje (IT76M1) eller celle som skal testes i en inkubator (37 ° C / 5% CO2). Vask cellene med PBS 1x (gjenta dette elementet 3x). Legg Trypsin til cellene i 5 min. Legg medium (to ganger av volumet av trypsin tilsettes i punkt 1.3) med 10% FBS (føtalt bovint serum) til cellene med trypsin og sentrifuge (800 xg i 5 min). Telle celler i et hemocytometer. Justere tetthete…

Representative Results

Tymisk epitel cellelinje IT-76MI ble brukt for å evaluere fargestoff kopling av gap junctions som disse cellene ble beskrevet til å uttrykke funksjonelle gap junctions dannet ved connexin 43 21. Figur 1 viser injeksjon av Lucifer gult når de påføres i en celle under spissen av pipetten. Etter noen få minutter, som er koblet celler blir fluorescerende (stjerne) som indikerer diffusjon av det fluorescerende fargestoff gjennom gap veikryss. Antall celler og tid…

Discussion

For å verifisere tilstedeværelse av funksjonelle intercellulær gap junction, bruk av tracere, som er ugjennomtrengelig membran, selv om det permeable av intercellulære kanalene er nødvendig 16. Fluorescein, den første fluorescerende fargestoff for å observere celle-til-celle-kopling 22, er permeabel mellom ikke synaptiske membraner 3 og har derfor blitt erstattet av Lucifer gult fargestoff 15. Tiden, for å finne det b…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors dedicate this paper in honor of Prof. Gilberto Oliveira-Castro who introduced research in intercellular communication by gap junctions in Brazil. This work was funded by Capes, CNPQ and Faperj.

Materials

Lucifer yellow Sigma L0259
Lithium Chloride Sigma L4408
PBS tablets Sigma  P4417
RPMI Sigma R4130
Bovine fetal serum Cultilab
Trypsin Sigma T4799
Microscope Nikon TE-2000 For microinjection experiments, one needs an inverted fluorescence microscope and filters for fluorescent microscopy
vibration-insulated table  Newport VH3036W-OPT A vibration-insulated table is needed to protect the experiments from vibration and avoid cell damage
Micromanipulator Narishige MMO-203 This equipment allows precision adjustments of the micropipette, which is needed for cell micro injection.
Current Generator  Digitimer DS2 To produce the dye flow through the micropipette, a current below one nano ampere was given using a current generator with an electrode inside the micropipette or an amplifier which has a capacitance compensation circuit (old electrometer) or current injection functions of new patch clamp amplifiers, and the ground wire submersed in the plate dish. Alternatively, the dye can be injected by a pneumatic microinjector, following the factory recommendations.   

References

  1. Bennett, M. V., et al. Gap junctions: new tools, new answers, new questions. Neuron. 6 (3), 305-320 (1991).
  2. Orellana, J. A., Martinez, A. D., Retamal, M. A. Gap junction channels and hemichannels in the CNS: Regulation by signaling molecules. Neuropharmacology. , (2013).
  3. Peracchia, C. Structural correlates of gap junction permeation. Int Rev Cytol. 66, 81-146 (1980).
  4. Loewenstein, W. R. Junctional intercellular communication and the control of growth. Biochim Biophys Acta. 560 (1), 1-65 (1979).
  5. Alves, L. A., et al. Functional gap junctions in thymic epithelial cells are formed by connexin 43. Eur.J Immunol. 25 (2), 431-437 (1995).
  6. Alves, L. A., et al. Are there functional gap junctions or junctional hemichannels in macrophages?. Blood. 88 (1), 328-334 (1996).
  7. Fonseca, P. C., et al. Characterization of connexin 30.3 and 43 in thymocytes. Immunology letters. 94 (1-2), 65-75 (2004).
  8. Nihei, O. K., et al. Modulatory effects of cAMP and PKC activation on gap junctional intercellular communication among thymic epithelial cells. BMC Cell Biol. 11, 3 (2010).
  9. Czyz, J., Szpak, K., Madeja, Z. The role of connexins in prostate cancer promotion and progression. Nat Rev Urol. 9 (5), 274-282 (2012).
  10. El-Saghir, J. A., El-Habre, E. T., El-Sabban, M. E., Talhouk, R. S. Connexins: a junctional crossroad to breast cancer. Int J Dev Biol. 55 (7-9), 773-780 (2011).
  11. Cea, L. A., et al. Connexin- and pannexin-based channels in normal skeletal muscles and their possible role in muscle atrophy. J Membr Biol. 245 (8), 423-436 (2012).
  12. Cotrina, M. L., Nedergaard, M. Brain connexins in demyelinating diseases: therapeutic potential of glial targets. Brain Res. 1487, 61-68 (2012).
  13. Park, H. a. n. -. A., R, S., Khanna, S. a. v. i. t. a., Sen, C. h. a. n. d. a. n. . K. Current Technologies in Single-Cell Microinjection and Application to Study Signal Transduction. Methods in Redox Signaling. , (2010).
  14. Abbaci, M., Barberi-Heyob, M., Blondel, W., Guillemin, F., Didelon, J. Advantages and limitations of commonly used methods to assay the molecular permeability of gap junctional intercellular communication. Biotechniques. 45 (1), 33-52 (2008).
  15. Stewart, W. W. Functional connections between cells as revealed by dye-coupling with a highly fluorescent naphthalimide tracer. Cell. 14 (3), 741-759 (1978).
  16. Meda, P. Probing the function of connexin channels in primary tissues. Methods. 20 (2), 232-244 (2000).
  17. Klaunig, J. E., Shi, Y. Assessment of gap junctional intercellular communication. Curr Protoc Toxicol. , (2009).
  18. Hanani, M. Lucifer yellow – an angel rather than the devil. J Cell Mol Med. 16 (1), 22-31 (2012).
  19. Orci, L., Biochemistry, C. Blockage of Cell-to-Cell Communication within Pancreatic Acini Is Associated with Increased Basal Release of Amylase Materials and Methods Preparation of Acini. Cell. 103 (August), 475-483 (1986).
  20. Hitomi, M., et al. Differential connexin function enhances self-renewal in glioblastoma. Cell Rep. 11 (7), 1031-1042 (2015).
  21. Nihei, O. K., Campos de Carvalho, ., C, A., Spray, D. C., Savino, W., Alves, L. A. A novel form of cellular communication among thymic epithelial cells: intercellular calcium wave propagation. Am J Physiol Cell Physiol. 285 (5), C1304-C1313 (2003).
  22. Kanno, Y., Loewenstein, W. R. Intercellular Diffusion. Science. 143 (3609), 959-960 (1964).
  23. Alves, L. A., Nihei, O. K., Fonseca, P. C., Carvalho, A. C., Savino, W. Gap junction modulation by extracellular signaling molecules: the thymus model. Braz J Med Biol Res. 33 (4), 457-465 (2000).
check_url/50836?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Alberto, A. V. P., Bonavita, A. G., Fidalgo-Neto, A. A., Berçot, F., Alves, L. A. Single-cell Microinjection for Cell Communication Analysis. J. Vis. Exp. (120), e50836, doi:10.3791/50836 (2017).

View Video