Summary

Одноклеточный Микроинъекция для анализа сотовой связи

Published: February 26, 2017
doi:

Summary

Здесь мы опишем, как выполнить одноклеточного микроинъекции Lucifer Yellow для визуализации сотовой связи через гэп-переходов в живых клетках, а также обеспечить некоторые полезные советы. Мы ожидаем, что эта статья поможет всем оценить степень сотовой связью за счет функциональных щелевых контактов. Все, что описано здесь, может быть, в принципе, адаптированы к другим флуоресцентных красителей с молекулярной массой менее 1000 дальтон.

Abstract

Gap junctions are intercellular channels that allow the communication of neighboring cells. This communication depends on the contribution of a hemichannel by each neighboring cell to form the gap junction. In mammalian cells, the hemichannel is formed by six connexins, monomers with four transmembrane domains and a C and N terminal within the cytoplasm. Gap junctions permit the exchange of ions, second messengers, and small metabolites. In addition, they have important roles in many forms of cellular communication within physiological processes such as synaptic transmission, heart contraction, cell growth and differentiation. We detail how to perform a single-cell microinjection of Lucifer Yellow to visualize cellular communication via gap-junctions in living cells. It is expected that in functional gap junctions, the dye will diffuse from the loaded cell to the connected cells. It is a very useful technique to study gap junctions since you can evaluate the diffusion of the fluorescence in real time. We discuss how to prepare the cells and the micropipette, how to use a micromanipulator and inject a low molecular weight fluorescent dye in an epithelial cell line.

Introduction

Щелевые соединения являются межклеточные каналы , которые позволяют междуэтажной среди соседних ячеек 1. Эта связь соединяет два или более соседних ячеек, где каждый из них вносит свой вклад с коннексон или hemichannel, чтобы сформировать межклеточный канал. В клетках млекопитающих коннексон образован шестью коннексинами, мономеров с четырьмя трансмембранными доменами и С и N терминала в цитоплазме 2. Щелевые контакты не только позволяют поток ионов, вторичных мессенджеров и малых метаболитов, а также способствуют многие формы сотовой связи во многих физиологических процессах, таких как синаптической передачи, сердечных сокращений, роста и дифференцировки 3, 4, 5, 6 клеток, 7, 8. Кроме того щелевые соединения были связаны смногие заболевания , включая рак 9, 10, 11 , мышечной атрофии, некоторых генетических заболеваний и демиелинизирующих заболеваний 12.

Этот тип межклеточного перекрестных помех может быть оценена несколькими способами 13, 14, 15, 16. В этой статье мы покажем, как выполнить одноклеточного микроинъекции Lucifer Yellow для визуализации сотовой связи через гэп-переходов в живых клетках. Мы обсудим, как подготовить клетки и микропипетки, использование микроманипулятора и инъекцию Люцифера желтого красителя в вилочковой эпителиальной клеточной линии. Как правило, эта экспериментальная процедура может быть проанализирована с помощью среднего связанных клеток к клетке, нагруженной красителем. Кроме того, этот способ может быть использован с другими флуоресцентными красителями, с молекулярной массой ниже зазораперекрестки отсечение, который составляет примерно 1000 Дальтон.

Protocol

1. Получение клеток Поддерживать культуру вилочковой эпителиальной клеточной линии (IT76M1) или клетки должны быть испытаны в инкубаторе (37 ° C / 5% CO 2). Вымойте клеток с PBS 1x (повторить этот пункт 3x). Добавить трипсина в клетки в течение 5 мин. Добавить среду (в два…

Representative Results

Тимуса эпителиальные клетки линии IT-76MI были использованы для оценки сцепления красителя щелевых контактов , как эти клетки были описаны , чтобы выразить функциональные щелевые соединения , образованные коннексина 43 21. На рисунке 1 показана инъекцию Lucifer Yel…

Discussion

Для того чтобы проверить наличие функциональной межклеточного щелевых контактов, использование изотопных индикаторов, которые мембрана непроницаема, хотя проницаемой межклеточные каналы необходимы 16. Флуоресцеин, первый флуоресцентный краситель для наблюдения от клет…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors dedicate this paper in honor of Prof. Gilberto Oliveira-Castro who introduced research in intercellular communication by gap junctions in Brazil. This work was funded by Capes, CNPQ and Faperj.

Materials

Lucifer yellow Sigma L0259
Lithium Chloride Sigma L4408
PBS tablets Sigma  P4417
RPMI Sigma R4130
Bovine fetal serum Cultilab
Trypsin Sigma T4799
Microscope Nikon TE-2000 For microinjection experiments, one needs an inverted fluorescence microscope and filters for fluorescent microscopy
vibration-insulated table  Newport VH3036W-OPT A vibration-insulated table is needed to protect the experiments from vibration and avoid cell damage
Micromanipulator Narishige MMO-203 This equipment allows precision adjustments of the micropipette, which is needed for cell micro injection.
Current Generator  Digitimer DS2 To produce the dye flow through the micropipette, a current below one nano ampere was given using a current generator with an electrode inside the micropipette or an amplifier which has a capacitance compensation circuit (old electrometer) or current injection functions of new patch clamp amplifiers, and the ground wire submersed in the plate dish. Alternatively, the dye can be injected by a pneumatic microinjector, following the factory recommendations.   

References

  1. Bennett, M. V., et al. Gap junctions: new tools, new answers, new questions. Neuron. 6 (3), 305-320 (1991).
  2. Orellana, J. A., Martinez, A. D., Retamal, M. A. Gap junction channels and hemichannels in the CNS: Regulation by signaling molecules. Neuropharmacology. , (2013).
  3. Peracchia, C. Structural correlates of gap junction permeation. Int Rev Cytol. 66, 81-146 (1980).
  4. Loewenstein, W. R. Junctional intercellular communication and the control of growth. Biochim Biophys Acta. 560 (1), 1-65 (1979).
  5. Alves, L. A., et al. Functional gap junctions in thymic epithelial cells are formed by connexin 43. Eur.J Immunol. 25 (2), 431-437 (1995).
  6. Alves, L. A., et al. Are there functional gap junctions or junctional hemichannels in macrophages?. Blood. 88 (1), 328-334 (1996).
  7. Fonseca, P. C., et al. Characterization of connexin 30.3 and 43 in thymocytes. Immunology letters. 94 (1-2), 65-75 (2004).
  8. Nihei, O. K., et al. Modulatory effects of cAMP and PKC activation on gap junctional intercellular communication among thymic epithelial cells. BMC Cell Biol. 11, 3 (2010).
  9. Czyz, J., Szpak, K., Madeja, Z. The role of connexins in prostate cancer promotion and progression. Nat Rev Urol. 9 (5), 274-282 (2012).
  10. El-Saghir, J. A., El-Habre, E. T., El-Sabban, M. E., Talhouk, R. S. Connexins: a junctional crossroad to breast cancer. Int J Dev Biol. 55 (7-9), 773-780 (2011).
  11. Cea, L. A., et al. Connexin- and pannexin-based channels in normal skeletal muscles and their possible role in muscle atrophy. J Membr Biol. 245 (8), 423-436 (2012).
  12. Cotrina, M. L., Nedergaard, M. Brain connexins in demyelinating diseases: therapeutic potential of glial targets. Brain Res. 1487, 61-68 (2012).
  13. Park, H. a. n. -. A., R, S., Khanna, S. a. v. i. t. a., Sen, C. h. a. n. d. a. n. . K. Current Technologies in Single-Cell Microinjection and Application to Study Signal Transduction. Methods in Redox Signaling. , (2010).
  14. Abbaci, M., Barberi-Heyob, M., Blondel, W., Guillemin, F., Didelon, J. Advantages and limitations of commonly used methods to assay the molecular permeability of gap junctional intercellular communication. Biotechniques. 45 (1), 33-52 (2008).
  15. Stewart, W. W. Functional connections between cells as revealed by dye-coupling with a highly fluorescent naphthalimide tracer. Cell. 14 (3), 741-759 (1978).
  16. Meda, P. Probing the function of connexin channels in primary tissues. Methods. 20 (2), 232-244 (2000).
  17. Klaunig, J. E., Shi, Y. Assessment of gap junctional intercellular communication. Curr Protoc Toxicol. , (2009).
  18. Hanani, M. Lucifer yellow – an angel rather than the devil. J Cell Mol Med. 16 (1), 22-31 (2012).
  19. Orci, L., Biochemistry, C. Blockage of Cell-to-Cell Communication within Pancreatic Acini Is Associated with Increased Basal Release of Amylase Materials and Methods Preparation of Acini. Cell. 103 (August), 475-483 (1986).
  20. Hitomi, M., et al. Differential connexin function enhances self-renewal in glioblastoma. Cell Rep. 11 (7), 1031-1042 (2015).
  21. Nihei, O. K., Campos de Carvalho, ., C, A., Spray, D. C., Savino, W., Alves, L. A. A novel form of cellular communication among thymic epithelial cells: intercellular calcium wave propagation. Am J Physiol Cell Physiol. 285 (5), C1304-C1313 (2003).
  22. Kanno, Y., Loewenstein, W. R. Intercellular Diffusion. Science. 143 (3609), 959-960 (1964).
  23. Alves, L. A., Nihei, O. K., Fonseca, P. C., Carvalho, A. C., Savino, W. Gap junction modulation by extracellular signaling molecules: the thymus model. Braz J Med Biol Res. 33 (4), 457-465 (2000).
check_url/50836?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Alberto, A. V. P., Bonavita, A. G., Fidalgo-Neto, A. A., Berçot, F., Alves, L. A. Single-cell Microinjection for Cell Communication Analysis. J. Vis. Exp. (120), e50836, doi:10.3791/50836 (2017).

View Video