Summary

Eencellige micro-injectie voor mobiele Communicatie Analyse

Published: February 26, 2017
doi:

Summary

We beschrijven hier hoe je een eencellige micro-injectie van Lucifer Yellow uit te voeren om cellulaire communicatie via gap-junctions te visualiseren in levende cellen, en een aantal nuttige tips. We verwachten dat dit artikel iedereen zal helpen om de mate van cellulaire koppeling te evalueren door functionele gap junctions. Alles hier beschreven kan zijn, in principe, aangepast aan andere fluorescente kleurstoffen met een molecuulgewicht onder 1000 Dalton.

Abstract

Gap junctions are intercellular channels that allow the communication of neighboring cells. This communication depends on the contribution of a hemichannel by each neighboring cell to form the gap junction. In mammalian cells, the hemichannel is formed by six connexins, monomers with four transmembrane domains and a C and N terminal within the cytoplasm. Gap junctions permit the exchange of ions, second messengers, and small metabolites. In addition, they have important roles in many forms of cellular communication within physiological processes such as synaptic transmission, heart contraction, cell growth and differentiation. We detail how to perform a single-cell microinjection of Lucifer Yellow to visualize cellular communication via gap-junctions in living cells. It is expected that in functional gap junctions, the dye will diffuse from the loaded cell to the connected cells. It is a very useful technique to study gap junctions since you can evaluate the diffusion of the fluorescence in real time. We discuss how to prepare the cells and the micropipette, how to use a micromanipulator and inject a low molecular weight fluorescent dye in an epithelial cell line.

Introduction

Gap junctions zijn intercellulaire kanalen die de onderlinge communicatie mogelijk maken tussen naburige cellen 1. Deze mededeling verbindt twee of meer naburige cellen, waarbij elk bijdraagt ​​met een connexon of hemikanaal aan de intercellulaire kanaal te vormen. In zoogdiercellen is de connexon gevormd door zes connexines, monomeren met vier transmembraandomeinen en een C- en N-terminale binnen het cytoplasma 2. Gap junctions niet alleen mogelijk de stroom van ionen, second messengers en kleine metabolieten, maar ook bij vele vormen van cellulaire communicatie in vele fysiologische processen, zoals synaptische transmissie, hart contractie, celgroei en differentiatie 3, 4, 5, 6, 7, 8. Daarnaast zijn gap junctions geassocieerd metveel ziekten waaronder kanker 9, 10, 11 spieratrofie, sommige genetische ziekten en demyelineringsziekten 12.

Dit type intercellulaire overspraak kan worden geëvalueerd door verscheidene werkwijzen 13, 14, 15, 16. In dit artikel laten we zien hoe een eencellige micro-injectie van Lucifer Yellow uit te voeren om cellulaire communicatie via gap-junctions te visualiseren in levende cellen. We bespreken hoe de cellen en de micropipet, het gebruik van de micromanipulator en de injectie van Lucifer Yellow kleurstof in een thymus epitheelcellijn bereiden. Meestal kan deze experimentele procedure wordt geanalyseerd door de gemiddelde geschakelde cellen met de cel geladen met kleurstof. Bovendien kan deze methode worden gebruikt met andere fluorescente kleurstoffen met een molecuulgewicht onder de spleetknooppunten cut-off die ongeveer 1.000 dalton.

Protocol

1. Bereiding van Cellen Handhaaf een kweek van een thymus epitheelcellijn (IT76M1) of te testen cel in een incubator (37 ° C / 5% CO 2). Was de cellen met PBS 1x (herhaal dit item 3x). Trypsine toevoegen aan de cellen gedurende 5 min. voeg medium (tweemaal de hoeveelheid trypsine toegevoegd punt 1,3) met 10% FBS (foetaal runderserum) aan de cellen met trypsine en gecentrifugeerd (800 xg gedurende 5 minuten). Tel de cellen in een hemocytometer. <li…

Representative Results

Thymus epitheel cellijn IT-76MI werden gebruikt om kleurstof koppeling te evalueren door gap junctions als deze cellen werden beschreven functionele gap junctions gevormd door connexine 43 21 uit te drukken. Figuur 1 toont de injectie van Lucifer Yellow wanneer toegepast in een cel onder de punt van de pipet. Na enkele minuten, verbonden cellen fluorescentie (sterretjes) die de diffusie van de fluorescerende kleurstof via gap junctions. Het aantal cellen en de tij…

Discussion

Om de aanwezigheid van functionele intercellulaire gap junction, het gebruik van tracers die ondoorlaatbaar membraan zijn te verifiëren, maar permeabel door intercellulaire kanalen 16 vereist. Fluoresceïne, de eerste fluorescerende kleurstof te observeren cel-cel koppeling 22, permeabel tussen niet junctional 3 membranen en is derhalve vervangen door Lucifer Yellow 15 kleurstof. Op dit moment, op zoek naar de beste keuze ui…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors dedicate this paper in honor of Prof. Gilberto Oliveira-Castro who introduced research in intercellular communication by gap junctions in Brazil. This work was funded by Capes, CNPQ and Faperj.

Materials

Lucifer yellow Sigma L0259
Lithium Chloride Sigma L4408
PBS tablets Sigma  P4417
RPMI Sigma R4130
Bovine fetal serum Cultilab
Trypsin Sigma T4799
Microscope Nikon TE-2000 For microinjection experiments, one needs an inverted fluorescence microscope and filters for fluorescent microscopy
vibration-insulated table  Newport VH3036W-OPT A vibration-insulated table is needed to protect the experiments from vibration and avoid cell damage
Micromanipulator Narishige MMO-203 This equipment allows precision adjustments of the micropipette, which is needed for cell micro injection.
Current Generator  Digitimer DS2 To produce the dye flow through the micropipette, a current below one nano ampere was given using a current generator with an electrode inside the micropipette or an amplifier which has a capacitance compensation circuit (old electrometer) or current injection functions of new patch clamp amplifiers, and the ground wire submersed in the plate dish. Alternatively, the dye can be injected by a pneumatic microinjector, following the factory recommendations.   

References

  1. Bennett, M. V., et al. Gap junctions: new tools, new answers, new questions. Neuron. 6 (3), 305-320 (1991).
  2. Orellana, J. A., Martinez, A. D., Retamal, M. A. Gap junction channels and hemichannels in the CNS: Regulation by signaling molecules. Neuropharmacology. , (2013).
  3. Peracchia, C. Structural correlates of gap junction permeation. Int Rev Cytol. 66, 81-146 (1980).
  4. Loewenstein, W. R. Junctional intercellular communication and the control of growth. Biochim Biophys Acta. 560 (1), 1-65 (1979).
  5. Alves, L. A., et al. Functional gap junctions in thymic epithelial cells are formed by connexin 43. Eur.J Immunol. 25 (2), 431-437 (1995).
  6. Alves, L. A., et al. Are there functional gap junctions or junctional hemichannels in macrophages?. Blood. 88 (1), 328-334 (1996).
  7. Fonseca, P. C., et al. Characterization of connexin 30.3 and 43 in thymocytes. Immunology letters. 94 (1-2), 65-75 (2004).
  8. Nihei, O. K., et al. Modulatory effects of cAMP and PKC activation on gap junctional intercellular communication among thymic epithelial cells. BMC Cell Biol. 11, 3 (2010).
  9. Czyz, J., Szpak, K., Madeja, Z. The role of connexins in prostate cancer promotion and progression. Nat Rev Urol. 9 (5), 274-282 (2012).
  10. El-Saghir, J. A., El-Habre, E. T., El-Sabban, M. E., Talhouk, R. S. Connexins: a junctional crossroad to breast cancer. Int J Dev Biol. 55 (7-9), 773-780 (2011).
  11. Cea, L. A., et al. Connexin- and pannexin-based channels in normal skeletal muscles and their possible role in muscle atrophy. J Membr Biol. 245 (8), 423-436 (2012).
  12. Cotrina, M. L., Nedergaard, M. Brain connexins in demyelinating diseases: therapeutic potential of glial targets. Brain Res. 1487, 61-68 (2012).
  13. Park, H. a. n. -. A., R, S., Khanna, S. a. v. i. t. a., Sen, C. h. a. n. d. a. n. . K. Current Technologies in Single-Cell Microinjection and Application to Study Signal Transduction. Methods in Redox Signaling. , (2010).
  14. Abbaci, M., Barberi-Heyob, M., Blondel, W., Guillemin, F., Didelon, J. Advantages and limitations of commonly used methods to assay the molecular permeability of gap junctional intercellular communication. Biotechniques. 45 (1), 33-52 (2008).
  15. Stewart, W. W. Functional connections between cells as revealed by dye-coupling with a highly fluorescent naphthalimide tracer. Cell. 14 (3), 741-759 (1978).
  16. Meda, P. Probing the function of connexin channels in primary tissues. Methods. 20 (2), 232-244 (2000).
  17. Klaunig, J. E., Shi, Y. Assessment of gap junctional intercellular communication. Curr Protoc Toxicol. , (2009).
  18. Hanani, M. Lucifer yellow – an angel rather than the devil. J Cell Mol Med. 16 (1), 22-31 (2012).
  19. Orci, L., Biochemistry, C. Blockage of Cell-to-Cell Communication within Pancreatic Acini Is Associated with Increased Basal Release of Amylase Materials and Methods Preparation of Acini. Cell. 103 (August), 475-483 (1986).
  20. Hitomi, M., et al. Differential connexin function enhances self-renewal in glioblastoma. Cell Rep. 11 (7), 1031-1042 (2015).
  21. Nihei, O. K., Campos de Carvalho, ., C, A., Spray, D. C., Savino, W., Alves, L. A. A novel form of cellular communication among thymic epithelial cells: intercellular calcium wave propagation. Am J Physiol Cell Physiol. 285 (5), C1304-C1313 (2003).
  22. Kanno, Y., Loewenstein, W. R. Intercellular Diffusion. Science. 143 (3609), 959-960 (1964).
  23. Alves, L. A., Nihei, O. K., Fonseca, P. C., Carvalho, A. C., Savino, W. Gap junction modulation by extracellular signaling molecules: the thymus model. Braz J Med Biol Res. 33 (4), 457-465 (2000).
check_url/50836?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Alberto, A. V. P., Bonavita, A. G., Fidalgo-Neto, A. A., Berçot, F., Alves, L. A. Single-cell Microinjection for Cell Communication Analysis. J. Vis. Exp. (120), e50836, doi:10.3791/50836 (2017).

View Video