Summary

La aplicación de ácido retinoico para obtener cultivos de osteocitos principal del ratón osteoblastos

Published: May 13, 2014
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Summary

Tratamiento de los osteoblastos primarios de ratón con ácido retinoico produce una población homogénea de células ramificadas que llevan características morfológicas y moleculares de los osteocitos. El método supera la dificultad de obtención y mantenimiento de osteocitos primarios en cultivo, y puede ser ventajoso para estudiar las células derivadas de los modelos transgénicos.

Abstract

La necesidad de las culturas osteocitos es bien conocido por la comunidad de investigadores de hueso; aislamiento de osteocitos primaria es difícil y produce números bajos de células. Por lo tanto, el sistema celular más utilizado es la línea celular MLO-Y4-osteocitos similares.

El método aquí descrito se refiere al uso de ácido retinoico para generar una población homogénea de células ramificadas con características de osteocitos morfológicos y moleculares.

Después del aislamiento de los osteoblastos de bóveda craneal de ratón, se añade ácido trans-retinoico (ATRA) a medio celular, y seguimiento de células se lleva a cabo todos los días en un microscopio invertido. Primeros cambios morfológicos son detectables después de 2 días de tratamiento y la diferenciación se completa generalmente en 5 días, con el desarrollo progresivo de las dendritas, la pérdida de la capacidad de producir la matriz extracelular, la regulación por disminución de los marcadores de los osteoblastos y la regulación de las moléculas-osteocitos específico.

contenido "> monitoreo de celda diaria es necesaria debido a la variabilidad inherente de las células primarias, y el protocolo se puede adaptar con una mínima variación de las células obtenidas a partir de diferentes cepas de ratón y aplicados a los modelos transgénicos.

El método es fácil de realizar y no requiere instrumentación especial, es altamente reproducible, y genera rápidamente una población de osteocitos maduros en ausencia completa de la matriz extracelular, permitiendo el uso de estas células para aplicaciones biológicas ilimitadas.

Introduction

Los osteocitos, el tipo de célula ósea más abundantes, son terminales diferenciadas, células altamente ramificadas profundamente ubicadas dentro del esqueleto. El cuerpo de la célula de osteocitos maduros están contenidas en las lagunas de hueso y tener diversas formas; osteocitos con cuerpos celulares alargados se encuentran en el hueso cortical, mientras que los osteocitos redondeadas son más frecuentes en el hueso trabecular 1. Dendritas ramificadas se extienden desde el cuerpo celular y residen en pequeños canales llamados canalículos, formando una intrincada red que hace múltiples contactos no sólo con otros osteocitos, sino también con otros tipos de células de hueso, médula ósea, vasos sanguíneos y los pericitos asociados. A través del fluido intersticial contenida en lagunas y canalículos, osteocitos son también conectado en última instancia al sistema de circulación, por lo tanto, pueden influir no sólo local, sino también eventos sistémicos, y viceversa su comportamiento puede ser regulada por ambos cambios locales y sistémicos 2.

Laestudio de osteocitos ha cobrado impulso recientemente, gracias a varios avances técnicos, tales como la generación de tejidos y animales transgénicos específicos de células, el uso de técnicas de microscopía de gran alcance y de alto rendimiento de cribado molecular de 3,4. Sin embargo, el conocimiento de estas células es todavía incompleta, debido principalmente a la escasez relativa de adecuada pt modelos in vitro. En realidad, los osteocitos han sido siempre difíciles de obtener y mantener en cultivo debido a la ubicación de profundidad, y el bajo nivel de proliferación que caracteriza a un tipo de célula diferenciada tal.

A lo largo de los años, un número de métodos se han desarrollado para aislar osteocitos primaria 5-7, a pesar de que generalmente producen bajos rendimientos celulares y llevan el riesgo de que incluso unos pocos fibroblastos contaminantes se crecer demasiado rápidamente la osteocitos 8. Por esta razón, la mayor parte experimental pt el trabajo in vitro ha llevado a cabo hasta ahora en la bien establecida de células osteocitos Line MLO-Y4 9.

Metodologías adicionales in vitro podría aumentar la posibilidad de estudiar estas células y podría mejorar el análisis de la biología osteocitos y fisiopatología. Para ser adoptado en gran parte, tales métodos deben ser fáciles de reproducir, y no requieren instrumentos especiales o tiempos muy largos para llegar a la maduración de células. Es importante destacar que, si es aplicable a células primarias, que harían posible tomar ventaja de los animales transgénicos. Recientemente hemos descrito que el tratamiento de la línea celular de osteoblastos MC3T3-E1 y de los osteoblastos primarios con ácido retinoico induce un cambio de fenotipo rápida que conduce al desarrollo de una población homogénea de células ramificadas que llevan características morfológicas y moleculares de los osteocitos 10.

El ácido trans-retinoico (ATRA) es un producto metabólico activa de la vitamina A, que regula la transcripción de genes mediante la unión a los receptores del ácido retinoico nucleares (RAR). RARunirse al ADN como heterodímeros con los receptores de retinoides X (RXRs), en última instancia conduce a la modulación de ácido retinoico (RA)-sensible genes diana 11. ATRA se ha demostrado que modulan la diferenciación y la maduración de varios tipos de células, entre ellos otras células ramificadas tales como las células neuronales 12 y podocitos 13.

El método aquí descrito se basa en la adición de ATRA a osteoblastos primarios. Para ser eficaz, el ATRA tiene que ser añadido en una etapa de maduración precisa sobre células cultivadas en placas a una densidad definida; en nuestra experiencia, estas condiciones son fundamentales para obtener el interruptor fenotipo de osteoblastos a osteocitos.

Protocol

Todos los experimentos con animales se realizaron de acuerdo con la normativa vigente de Europa en cuanto a la protección de los animales utilizados para fines científicos y que fueron revisados ​​y aprobados por el comité de ética de la Universidad de Milán y el Nacional. 1. Aislamiento de osteoblastos primarios El método, con pequeñas modificaciones, sigue el procedimiento descrito por Dodig et al 14. P…

Representative Results

Resultados Se obtuvieron De 5 a 10 experimentos independientes. Morfología Celular AA / GP tratados células primarias tienen características en su mayoría empedradas similar, característico de los osteoblastos maduros. Células ramificadas intercalados (como indican las flechas rojas en la Figura 1A) se pueden encontrar, lo que probablemente representan algunos osteocitos. Con el tratamiento de ATRA, las células comie…

Discussion

En los últimos años la osteocitos se ha convertido en la celda más central en la médula. Avances de investigación están revelando progresivamente una serie de propiedades de osteocitos antes insospechados o no probados, que son de gran valor para el diseño de nuevos y mejores tratamientos para una variedad de enfermedades óseas. Sin embargo, la investigación de la biología osteocitos ha estado sufriendo de la disponibilidad limitada de modelos in vitro hasta el punto de que los osteoblastos se han uti…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

El financiamiento fue proporcionado por el "Progetto una concorso Fondazione IRCCS Ospedale Maggiore Policlinico 2009-2010" de MD, y Associazione Bambino Nefropatico ABN Onlus, Milano

Materials

Name Company Cat # comments
Collagenase P Roche Applied Science 11213857001
Trypsin Gibco, Life Technologies 15400054
HBSS Gibco, Life Technologies 14175129 Pre-warm at 37°C before use
Alpha-MEM Invitrogen, Life Technologies 22571038 Pre-warm at 37°C before use
FBS Sigma-Aldrich F4135
Streptomycin/Penicillin Sigma-Aldrich P4333
Ascorbic acid Sigma-Aldrich A4403
glycerol 2-phosphate disodium salt hydrate Sigma-Aldrich G9422
ATRA Sigma-Aldrich R2625 Protect ATRA from light
paraformaldehyde Sigma-Aldrich P6148 Dissolve in PBS and filter before use. Work always under a chemical hood.
DAPI Sigma-Aldrich 32670 Can be added to the secondary antibody
Alizarin red Sigma-Aldrich A5533
Janus Green Sigma-Aldrich 201677
Perchloric acid Sigma-Aldrich 176745 Use with caution (skin and eye protection are recommended)
HCl Sigma-Aldrich 320331 Use with caution (skin and eye protection are recommended)
glycerol Sigma-Aldrich G5516
fluorsave Calbiochem – Merck 345789
Economy Tweezers #7, 0.40 x 0.5mm tips World Precision Instruments 501981
Economy Tweezers #4, 0.40 x 0.45mm tips World Precision Instruments 501978
Dissecting Scissors, straight,10cm curved World Precision Instruments 14394
Surgical Scissors, 14 cm, straight, S/S World Precision Instruments 501218
Culture flasks Corning 430168
Well-plates Corning 3335
Thermanox coverslips Thermo Scientific Nunc 12-565-27
microscope Zeiss Apotome
spectrometer Safas Xenius

Referências

  1. Schneider, P., Meier, M., Wepf, R., Müller, R. Towards quantitative 3D imaging of the osteocyte lacuno-canalicular network. Bone. 47 (5), 848-858 (2010).
  2. Cheng, F., Hulley, P. The osteocyte–a novel endocrine regulator of body phosphate homeostasis. Maturitas. 67 (4), 327-338 (2010).
  3. Paic, F., et al. Identification of differentially expressed genes between osteoblasts and osteocytes. 45 (4), 682-692 (2009).
  4. Dallas, S. L., Bonewald, L. F. Dynamics of the transition from osteoblast to osteocyte. Ann N Y Acad Sci. 1192, 437-443 (2010).
  5. van der Plas, A., Nijweide, P. J. Isolation and purification of osteocytes. J Bone Miner Res. 7 (4), 389-396 (1992).
  6. Nijweide, P. J., van der Plas, A., Alblas, M. J., Klein-Nulend, J. Osteocyte isolation and culture. Methods Mol Med. 80, 41-50 (2003).
  7. Stern, A. R., Stern, M. M., Van Dyke, M. E., Jähn, K., Prideaux, M., Bonewald, L. F. Isolation and culture of primary osteocytes from the long bones of skeletally mature and aged mice. Biotechniques. 52 (6), 361-373 .
  8. Kalajzic, I., Matthews, B. G., Torreggiani, E., Harris, M. A., Divieti Pajevic, P., Harris, S. E. In vitro and in vivo approaches to study osteocyte. Bone. 54 (2), 296-206 .
  9. Bonewald, L. F. Establishment and characterization of an osteocyte-like cell line, MLO-Y4. J Bone Miner Metab. 17 (1), 61-65 (1999).
  10. Mattinzoli, D., et al. A novel model of in vitro osteocytogenesis induced by retinoic acid treatment. Eur Cell Mater. 24, 403-425 (2012).
  11. Ross, S. A., McCaffery, P. J., Drager, U. C., De Luca, L. M. Retinoids in embryonal development. Physiol Rev. 80 (3), 1021-1054 (2000).
  12. Clagett-Dame, M., McNeill, E. M., Muley, P. D. Role of all-trans retinoic acid in neurite outgrowth and axonal elongation. J Neurobiol. 66 (7), 739-756 (2006).
  13. Vaughan, M. R., et al. ATRA induces podocyte differentiation and alters nephrin and podocin expression in vitro and in vivo. Kidney Int. 68 (1), 133-144 (2005).
  14. Dodig, M., et al. Identification of a TAAT-containing motif required for high level expression of the COL1A1 promoter in differentiated osteoblasts of transgenic mice. J Biol Chem. 271 (27), 16422-16429 (1996).
  15. Burry, R. W. Immunocytochemistry. A practical guide for biomedical research. , (2010).
  16. Woo, S. M., Rosse, r. J., Dusevich, V., Kalajzic, I., Bonewald, L. F. Cell line IDG-SW3 replicates osteoblast-to-late-osteocyte differentiation in vitro and accelerates bone formation in vivo. J Bone Miner Res. 26 (11), 2634-2646 (2011).
  17. Gu, G., Nars, M., Hentune, n. T. A., Metsikkö, K., Väänänen, H. K. Isolated primary osteocytes express functional gap junctions in vitro. Cell Tissue Res. 323 (2), 263-271 (2006).
  18. Boukhechba, F., et al. Human primary osteocyte differentiation in a 3D culture system. J Bone Miner Res. 24 (11), 1927-1935 (2009).
  19. Krishnan, V., Dhurjati, R., Vogler, E. A., Mastro, A. M. Osteogenesis in vitro: from pre-osteoblasts to osteocytes: a contribution from the Osteobiology Research Group, The Pennsylvania State University. In Vitro Cell Dev Biol Anim. 46 (1), 28-35 .
  20. Irie, K., Ejiri, S., Sakakura, Y., Shibui, T., Yajima, T. Matrix mineralization as a trigger for osteocyte maturation. J Histochem Cytochem. 56 (6), 561-567 .
  21. Hirao, M., et al. Oxygen tension is an important mediator of the transformation of osteoblasts to osteocytes. J Bone Miner Metab. 25 (5), 266-276 (2007).
  22. Brounais, B., et al. Long term oncostatin M treatment induces an osteocyte-like differentiation on osteosarcoma and calvaria. Bone. 44 (5), 830-839 (2009).
  23. Gupta, R. R., Yoo, D. J., Hebert, C., Niger, C., Stains, J. P. Induction of an osteocyte-like phenotype by fibroblast growth factor-2. Biochem Biophys Res Commun. 402 (2), 258-264 (2010).
  24. Poole, K. E., et al. Sclerostin is a delayed secreted product of osteocytes that inhibits bone formation. FASEB J. 19 (13), 1842-1844 (2005).
  25. Dallas, S. L., Prideaux, M., Bonewald, L. F. The Osteocyte: An Endocrine Cell and More. Endocr Rev. 34 (5), 658-690 (2013).

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Citar este artigo
Mattinzoli, D., Messa, P., Corbelli, A., Ikehata, M., Mondini, A., Zennaro, C., Armelloni, S., Li, M., Giardino, L., Rastaldi, M. P. Application of Retinoic Acid to Obtain Osteocytes Cultures from Primary Mouse Osteoblasts. J. Vis. Exp. (87), e51465, doi:10.3791/51465 (2014).

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