Summary

יישומים של מיפוי-עתיים, טכניקות ניתוח חלקיקים לכמת Ca תאיים2 + איתות בחיי עיר

Published: January 07, 2019
doi:

Summary

Ca מקודדים גנטית2 + מחוונים (GECIs) השתנו באופן קיצוני איך באתרו Ca2 + הדמיה מבוצעת. כדי למקסם את שחזור נתונים מהקלטות אלו, נדרש ניתוח הולם של Ca2 + אותות. הפרוטוקולים נייר זה להקל על כימות של Ca2 + מאותת הקליט באתרו באמצעות מיפוי ייתכן וניתוח מבוסס חלקיק.

Abstract

Ca2 + הדמיה של תאים בודדים או סוגים ספציפיים של תאים בתוך הרקמות שלמים לעיתים קרובות חושף דפוסים מורכבים של Ca2 + איתות. פעילות זו מחייבת ניתוח זהיר ומעמיק כימות ללכוד כמה שיותר מידע על האירועים כבסיס ככל האפשר. Spatial, זמני ופרמטרים בעוצמה מהותי Ca2 + אותות כגון תדירות, משך, הפצת, מהירות, משרעת עשוי לספק מידע ביולוגי הדרושים עבור איתות תאיים. ברזולוציה גבוהה Ca2 + הדמיה בדרך כלל תוצאות ברכש של קובצי נתונים גדולים שנמצאים זמן רב כדי תהליך מבחינת לתרגם את המידע ההדמיה לתוך מידע כמיתים, תהליך זה יכול להיות רגישים הטיה של טעות אנוש. ניתוח של Ca2 + אותות התאים באתרו בדרך כלל מסתמך על מדידות בעוצמה פשוטה אזורים שנבחרו באופן שרירותי של הריבית (ROI) בתוך שדה ראייה (FOV). גישה זו מתעלמת הרבה של המידע איתות חשוב FOV. לכן, על מנת למקסם את השחזור של מידע מתוך הקלטות כאלו ברזולוציה גבוהה שהושג עם Ca2 +צבע או optogenetic Ca2 + ניתוח יכולות הדמיה, המתאים של Ca2 + האותות נדרש. הפרוטוקולים המתוארים במאמר זה יתאר כיצד ניתן להשיג כמות גדולה של נתונים Ca הקלטות2 + הדמיה כדי להקל על ניתוח מפורט יותר, כימות של Ca2 + אותות הקליט מתאי באמצעות שילוב של ייתכן מפה (STM)-המבוסס על ניתוח וניתוח מבוסס חלקיק. הפרוטוקולים מתארים גם כמה שונה על ידי דפוסי Ca2 + איתות שנצפה בתא אחר אוכלוסיות באתרו ניתן לנתח אותם כראוי. להמחשה, השיטה יבחנו Ca2 + איתות אוכלוסיה מיוחדות של תאים במעי הדק, תאים ביניים של קחאל (ICC), באמצעות GECIs.

Introduction

Ca2 + הוא שליח תאיים בכל מקום אשר שולטת מגוון רחב של תהליכים תאיים, כגון שריר התכווצות1,2, חילוף החומרים3, תא התפשטות3,4, 5, גירוי של שחרור נוירוטרנסמיטר עצב מסופי6,7, והפעלה של שעתוק גורמים בגרעין. 7 Ca תאיים2 + מאותת לעיתים קרובות ללבוש הצורה של הגבהים חולף ב Ca cytosolic2 +, אלה יכולים להיות ספונטני או נובעים אגוניסט גירוי בהתאם סוג התא8. Spatial, זמני ופרמטרים בעוצמה מהותי Ca2 + אותות כגון תדירות, משך, הפצת, מהירות, משרעת לספק את המידע הביולוגי הדרושות האיתות תאיים5, 7 , 9. cytoplasmic Ca2 + אותות יכול לנבוע זרם של Ca2 + מן המרחב חוץ-תאית או באמצעות Ca2 + שחרור תוך-פלזמית (ER) באמצעות Ca2 + ערוצי הפצה כגון קולטנים ryanodine (RyRs) ו קולטנים אינוזיטול-tri-פוספט (IP3ר’)10. RyRs ו- IP3ר’ עשוי גם לתרום הדור של Ca2 + אותות, הפתח מתואמת של הערוצים הללו, אשר בשילוב עם Ca2 + זרם מנגנונים שונים יכולים לגרום מספר עצום של Ca2 + איתות דפוסים אשר עוצבו על ידי המספרים ולפתוח את ההסתברות של Ca2 + ערוצי זרימה, לפרופיל ביטוי של Ca2 + ערוצי הפצה, הקרבה בין Ca2 + זרם, ערוצי פרסום, ואת הביטוי והפצה של Ca2 + חלבונים ספיגה חוזרת של הבלטה. Ca2 + אותות עשוי ללבוש הצורה של מדים, ארוך טווח, תנודות הכללית בעוצמה גבוהה זה עשוי להימשך מספר שניות או דקות אפילו, הפצת תאיים המערכת Ca2 + גלים זה יכול לחצות מרחקים תאיים מעל 100 מיקרומטר10,11,12,13,14,15,16או יותר קצרה, במרחב מקומי אירועים כגון Ca2 + ניצוצות ו- Ca2 + פחזניות זה להתרחש על עשרות צירי זמן של אלפיות השנייה והתפשטה פחות מ- 5 מיקרומטר17,18,19,20.

מיקרוסקופ פלואורסצנטי כבר בשימוש נרחב כדי לפקח Ca2 + איתות בתאים בתרבית מבודדים, ברקמות ללא פגע. באופן מסורתי, ניסויים אלו כרוך בשימוש פלורסנט Ca2 + אינדיקטורים, רציומטרי, רציומטרי שאינו צבענים כמו Fura2, Fluo3/4 או Rhod2, בין היתר 21,22,23. אינדיקטורים אלה נועדו להיות חדיר אל קרום התא, ואז הופכים לכוד בתוך תאים על-ידי המחשוף של קבוצת אסתר ויה esterases אנדוגני. איגוד של Ca2 + כדי האינדיקטורים זיקה גבוהה כתוצאה שינויים בזריחה תאים ורקמות היה מואר על ידי המתאים אורכי הגל של האור. השימוש תא חדיר Ca2 + מחוונים שיפור משמעותי ההבנה שלנו של Ca2 + איתות בתאים חיים, מותר רזולוציה מרחבית, כימות של אותות אלה היתה בלתי אפשרית על-ידי assaying Ca2 + אותות באמצעים אחרים, כגון אלקטרופיזיולוגיה. אולם, Ca מסורתי2 + מחוונים יש מספר מגבלות, כגון photobleaching המתרחשת על פני תקופות הקלטה מורחבת24. בעוד רשות אישורים חדשים2 + מחוון צבענים כמו Cal520/590 יש אות משופר מאוד רעש יחסי ואת היכולת לזהות המקומית Ca2 + אותות25, בעיות עם photobleaching ונעלמות דאגה כמה חוקרים 26,27,28. Photobleaching התלול גם מגבילה את ההגדלה, קצב רכישת התמונה, והגדילה רזולוציה שיכול לשמש עבור הקלטות, כפי כוח אובייקטיבי מוגברת שיעור גבוה יותר של ייבוא תמונות דורשים עוצמת האור עירור זה מגדילה את photobleaching.

מגבלות אלו של Ca מסורתי2 + מחוון צבע הם החמירו בעת הקלטת Ca2 + אותות באתרו, לדוגמה בעת ההקלטה תאיים Ca2 + אותות רקמות ללא פגע. בשל הבעיות שלעיל, יש ויזואליזציה של Ca2 + אותות בחיי עיר באמצעות תא חדיר Ca2 + אינדיקטורים הוגבל ההגדלה צריכת חשמל נמוכה, מופחת של לכידת תמונה, המגביל את היכולת של חוקרים כדי להקליט ו לכמת חנותם או במרחב מוגבל subcellular Ca2 + אותות. לפיכך, עבר קשה ללכוד, לנתח, להעריך את המורכבות יכולות של Ca2 + אותות, אשר יכול להיות חשובים בדורו של תגובות ביולוגיות הרצוי, כפי שתואר לעיל. ניתוח של Ca2 + אותות התאים באתרו בדרך כלל מסתמך על מדידות בעוצמה פשוטה אזורים שנבחרו עניין (ROI) בתוך שדה ראייה (FOV). הבחירה שרירותית המספר, הגודל והמיקום של ROIs, תלויים הגחמה של החוקרת, יכול קשות הטיה התוצאות המתקבלות. כמו גם הטיה הגלום עם ניתוח ROI, גישה זו מתעלמת הרבה החשובים איתות המידע הכלול של FOV, כמו דינמי Ca2 + אירועים בתוך שבחרת שרירותית רועי נבחרו לניתוח. יתר על כן, ניתוח של ROIs נכשלת לספק מידע אודות המאפיינים המרחביים של Ca2 + האותות שנצפו. לדוגמה, זה לא ייתכן שניתן להבחין בין עלייה Ca2 + הנובע הפצת Ca2 + גל ואני מאוד מקומי Ca2 + לשחרר את האירוע tabulations של Ca2 + אותות בתוך רועי.

כניסתו של Ca מקודדים גנטית2 + (GECIs) אינדיקטורים השתנה באופן קיצוני איך Ca2 + הדמיה יכול להיות שבוצעו ב באתרו29,30,31,32,33 . ישנם מספר יתרונות לשימוש GECIs על צבע. הוא אולי החשוב ביותר כי הביטוי של GECI יכול להתבצע באופן תא ספציפיים, אשר מפחית את זיהום הרקע הבלתי רצויים מתאי לא עניין. יתרון נוסף של GECIs מעל Ca מסורתי2 + מחוונים הוא photobleaching הזה מצטמצם (כמו זריחה, consequentially photobleaching מתרחשת רק כאשר תאים פעילים), לעומת דגימות צבע טעון, במיוחד בתיכון ההגדלה ואת שיעור גבוה של התמונה ללכוד34. לפיכך, הדמיה עם GECIs, כמו הסדרה GCaMP של חיישנים optogenetic, מעניקה חוקרים את היכולת להקליט לתדרך, שעברה לוקליזציה תת הסלולר Ca2 + מאותת בחיי עיר ולחקור Ca2 + איתות בתאים בתוך שלהם סביבות מקורי זה לא היה אפשרי בעבר. כדי ששחזור מידע מתוך הקלטות כאלו ברזולוציה גבוהה, נדרש ניתוח יכולות המתאים של Ca2 + האותות. יצוין כי בעוד GECIs יכולים להציע שלנקות כמה יתרונות, מחקרים שנעשו לאחרונה חשפו כי ניתן לבצע בהצלחה Ca2 + הדמיה של אוכלוסיות גדולות של מחלקות שונות עצבית של נוירונים בו זמנית באמצעות קונבנציונלי Ca2 + אינדיקטורים לא מקודדים גנטית לתוך החיות35. גישה זו בשימוש אימונוהיסטוכימיה לאחר הוק לחשוף מספר מחלקות שונות של נוירונים שנשרפים בתדר גבוה ואינו מסונכרן, ונמנע את הפוטנציאל שינויים גנטיים החיה אולי הפרעת פיזיולוגיים התנהגות החוקר מבקש להבין35,36.

הפרוטוקולים המתוארים במאמר זה להקל על ניתוח מפורט יותר ואותות כימות של Ca2 + נרשם מתאי באתרו באמצעות שילוב של מפת ייתכן (STM)-המבוסס על ניתוח וניתוח מבוסס חלקיק. הפרוטוקולים מתארים גם כמה שונה על ידי דפוסי Ca2 + איתות שנצפה בתא אחר אוכלוסיות באתרו ניתן לנתח אותם כראוי. להמחשה, השיטה יבחנו Ca2 + איתות אוכלוסיה מיוחדות של תאים במעי הדק, תאים ביניים של קחאל (ICC). ICC נמצאים תאים מיוחדים במערכת העיכול (GI) כי התערוכה דינמי תאיים Ca2 + איתות, כפי visualized באמצעות עכברים המבטאים GCaMPs37,38,39,40, 41,42. Ca2 + תופעות מעבר ב- ICC מקושרים הפעלה של Ca2 +-מופעל Cl ערוצים (מקודד על-ידי Ano1) חשובים בוויסות של דעתנית של שריר חלק המעי תאים (SMCs)43, 44,45. לפיכך, המחקר של Ca2 + איתות ב- ICC הוא יסוד להבנת תנועתיות מעיים. המעי הדק מאתר ומציע דוגמה מצוינת לצורך ההדגמה, שכן ישנם שני סוגים של ICC מופרדים מבחינה אנטומית, ניתן לאבחן באופן עצמאי: אני) ICC ממוקמים באזור שבין שריר חלק מעגלי האורך והרוחב שכבות, המקיפים את מקלעת myenteric (ICC-שלי). תאים אלה משמשים כתאים קוצב לב ולהפיק את הפעילות החשמלית המכונה גלים איטיים46,47,48,49; ii) ICC נמצאים גם בקרב מקלעת עשיר המסופים של מוטורי לגלוקוז (מקלעת עמוק שרירים, ובכך DMP-ICC). תאים אלה לשמש כמתווכים של התגובות עצבית מנוע המעית37,39,40,50. ICC-מיי ICC-DMP נפרדים מורפולוגית, Ca2 + איתות והתנהגותם שונה באופן קיצוני להשלים את משימותיהם ספציפיים. ICC-מיי stellate בכושר, יוצרים רשת של תאים מחוברים באמצעות פער צמתי51,52. Ca2 + מאותת במניפסט ICC-מיי כמו קצר ומקומי, במרחב Ca2 + שחרור אירועים המתרחשים באתרים מרובים באופן אסינכרוני דרך הרשת ICC-מיי כמו מטמיעים בתוך FOV (עם תמונה עם יעד X 60)38. אותות אסינכרוני אלה מאורגנות חנותם לשנייה אחת אשכולות זה, כאשר ייערכו יחד, בסכום נטו 1 s הסלולר עלייה Ca2 +. אותות אלה מפיצות מתא לתא בתוך הרשת ICC, ולכן לארגן Ca2 + איתות, שנוצר מתוך אתרי משנה הסלולר, לתוך רקמות רחב Ca2 + גל. קיבוץ באשכולות הטמפורלי, סיכום של Ca2 + אותות ב- ICC-שלי יש כבר שנקרא Ca2 + אשכולות ארעי (CTCs)38. CTCs להתרחש בקצב אחיד (למשל די דומה ולקשרים תקופות דומות בין CTCs) 30 פעמים בדקה העכבר. לעומת זאת, ICC-DMP פלך בצורת התאים, חלקם עם תהליכים משניים, להפיץ בין SMCs לבין תהליכים עצב דליות. ואינם באופן עצמאי טופס51,רשת52. ICC-DMP טופס צמתי הפער עם SMCs, עם זאת, פונקציה בתוך זה syncytium גדול יותר, המכונה של syncytium SIP53. Ca2 + אותות להתרחש באתרים מרובים לאורך האורכים של תאים, אך אלה תופעות מעבר לא entrained או חנותם מקובצים באשכולות, כפי שנצפה ב- ICC-מיי37. Ca2 + אותות ב- ICC-DMP להתרחש בצורה סטוכסטי, עם עוצמות משתנה, משכים, המאפיינים המרחביים. הפרוטוקולים להלן, לפי הדוגמה של Ca2 + איתות ב- ICC-מיי, ICC-DMP, לתאר את שיטות לניתוח מורכב איתות בסוגים ספציפיים של תאים באתרו. אנחנו מנוצל מערכת p Cre-לקס inducible לבטא GCaMP6f באופן בלעדי ב- ICC, לאחר גרימת ההפעלה של Cre-Recombinase (Cre) מונע על ידי יזם ספציפי ICC (קיט).

Protocol

כל בעלי החיים שבהם משתמשים הפרוטוקולים ביצעו במחקר זה היו לפי מוסדות לאומיים של בריאות המדריך על טיפוח ועל שימוש של חיות מעבדה. כל ההליכים אושרו על-ידי שימוש חיה מוסדיים ו טיפול ועד האוניברסיטה של נבאדה, רינו. 1. דור של KitGCaMP6f עכברים קרוס Ai95 (RCL-GCaMP6f)-D (עכברים GCaMP6f) ו- c-Kit/ C…

Representative Results

באמצעות ערכת-Cre-GCaMP6F עכברים (איור 1), דינמי Ca2 + איתות התנהגויות של ICC במערכת העיכול יכולים לדימות באתרו. עם מיקרוסקופיה קונפוקלית, ניתן לרכוש תמונות ברזולוציה גבוהה של אוכלוסיות ספציפיות של ICC בלי לזהם אותות אחרים אוכלוסיות של ICC בתוך רקמת אותו אבל במיש…

Discussion

Ca2 + הדמיה של סוגי תאים בתוך הרקמות שלמים או רשתות של תאים ספציפיים לעיתים קרובות חושף דפוסים מורכבים של Ca2 + תופעות מעבר. פעילות זו מחייבת ניתוח זהיר ומעמיק כימות ללכוד כמה שיותר מידע אודות אירועים הבסיסית וקינטיקה של אירועים אלה ככל האפשר. ה-STM וניתוח PTCL לספק הזדמנות כדי למקסם א?…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

מימון סופק על ידי NIDDK, דרך P01 DK41315.

Materials

Image J software NIH 1.5a Image J software
Volumetry GWH Volumetry 8Gd Custom made analysis software
Isoflurane Baxter, Deerfield, IL, USA NDC 10019-360-60
Tamoxifen Sigma T5648
GCaMP6F mice Jackson Laboratory Ai95 (RCL-GCaMP6f)-D
Kit-Cre mice Gifted From Dr. Dieter Saur c-Kit+/Cre-ERT2
Ethanol Pharmco-Aaper SDA 2B-6

Referências

  1. Wellman, G. C., Nelson, M. T. Signaling between SR and plasmalemma in smooth muscle: Sparks and the activation of Ca2+-sensitive ion channels. Cell Calcium. 34 (3), 211-229 (2003).
  2. Mironneau, J., Arnaudeau, S., Macrez-Lepretre, N., Boittin, F. X. Ca2+sparks and Ca2+waves activate different Ca2+-dependent ion channels in single myocytes from rat portal vein. Cell Calcium. 20 (2), 153-160 (1996).
  3. Berridge, M. J. Inositol trisphosphate and calcium signalling mechanisms. Biochimica et Biophysica Acta – Molecular Cell Research. 1793 (6), 933-940 (2009).
  4. Berridge, M. J., Lipp, P., Bootman, M. Calcium signalling. Current biology. 9 (5), R157-R159 (1999).
  5. Bootman, M. D., et al. Calcium signalling—an overview. Seminars in Cell & Developmental Biology. 12 (1), 3-10 (2001).
  6. Brain, K. L., Bennett, M. R. Calcium in sympathetic varicosities of mouse vas deferens during facilitation, augmentation and autoinhibition. The Journal of Physiology. 502 (3), 521-536 (1997).
  7. Berridge, M. J., Lipp, P., Bootman, M. D. The versatility and universality of calcium signalling. Nature Reviews. Molecular Cell Biology. 1 (1), 11-21 (2000).
  8. Dupont, G., Goldbeter, A. Problems and paradigms: Oscillations and waves of cytosolic calcium: Insights from theoretical models. BioEssays. 14 (7), 485-493 (1992).
  9. Bootman, M. D., Berridge, M. J. The elemental principles of calcium signaling. Cell. 83 (5), 675-678 (1995).
  10. Berridge, M. J., Dupont, G. Spatial and temporal signalling by calcium. Current Opinion in Cell Biology. 6 (2), 267-274 (1994).
  11. Drumm, B. T., et al. The role of Ca 2+ influx in spontaneous Ca 2+ wave propagation in interstitial cells of Cajal from the rabbit urethra. The Journal of Physiology. 593 (15), 3333-3350 (2015).
  12. Bayguinov, P. O., Hennig, G. W., Smith, T. K. Ca 2+ imaging of activity in ICC-MY during local mucosal reflexes and the colonic migrating motor complex in the murine large intestine. The Journal of Physiology. 588 (22), 4453-4474 (2010).
  13. Drumm, B. T., Sergeant, G. P., Hollywood, M. A., Thornbury, K. D., McHale, N. G., Harvey, B. J. The role of cAMP dependent protein kinase in modulating spontaneous intracellular Ca2+ waves in interstitial cells of Cajal from the rabbit urethra. Cell Calcium. 56 (3), 181-187 (2014).
  14. Nathanson, M. H., Padfield, P. J., O’Sullivan, A. J., Burgstahler, A. D., Jamieson, J. D. Mechanism of Ca2+ wave propagation in pancreatic acinar cells. Journal of Biological Chemistry. 267 (25), 18118-18121 (1992).
  15. Straub, S. V., Giovannucci, D. R., Yule, D. I. Calcium wave propagation in pancreatic acinar cells: functional interaction of inositol 1,4,5-trisphosphate receptors, ryanodine receptors, and mitochondria. The Journal of General Physiology. 116 (4), 547-560 (2000).
  16. Sneyd, J., Tsaneva-Atanasova, K., Bruce, J. I. E., Straub, S. V., Giovannucci, D. R., Yule, D. I. A model of calcium waves in pancreatic and parotid acinar cells. Biophysical Journal. 85 (3), 1392-1405 (2003).
  17. Jaggar, J. H., Porter, V. A., Lederer, W. J., Nelson, M. T. Calcium sparks in smooth muscle. American Journal of Physiology. Cell. 278 (2), C235-C256 (2000).
  18. Nelson, M. T., et al. Relaxation of arterial smooth muscle by calcium sparks. Science. 270 (5236), 633-637 (1995).
  19. Cheng, H., Lederer, W. J., Cannell, M. B. Calcium sparks: Elementary events underlying excitation-contraction coupling in heart muscle. Science. 262 (5134), 740-744 (1993).
  20. Parker, I., Choi, J., Yao, Y. Elementary events of InsP3-induced Ca2+ liberation in Xenopus oocytes: Hot spots, puffs and blips. Cell Calcium. 20 (2), 105-121 (1996).
  21. Diliberto, P. a., Wang, X. F., Herman, B. Confocal imaging of Ca2+ in cells. Methods in Cell Biology. 40, 243-262 (1994).
  22. Martínez-Zaguilán, R., Parnami, G., Lynch, R. M. Selection of fluorescent ion indicators for simultaneous measurements of pH and Ca2+. Cell Calcium. 19 (4), 337-349 (1996).
  23. Hayashi, H., Miyata, H. Fluorescence imaging of intracellular Ca2. The Journal of Pharmacology & Toxicology Methods. 31 (1), 1-10 (1994).
  24. Thomas, D., Tovey, S. C., Collins, T. J., Bootman, M. D., Berridge, M. J., Lipp, P. A comparison of fluorescent Ca2+indicator properties and their use in measuring elementary and global Ca2+signals. Cell Calcium. 28 (4), 213-223 (2000).
  25. Lock, J. T., Parker, I., Smith, I. F. A comparison of fluorescent Ca2+indicators for imaging local Ca2+signals in cultured cells. Cell Calcium. 58 (6), 638-648 (2015).
  26. Flagmeier, P., et al. Ultrasensitive Measurement of Ca 2+ Influx into Lipid Vesicles Induced by Protein Aggregates. Angewandte Chemie International Edition. 56 (27), 7750-7754 (2017).
  27. Tsutsumi, S., et al. Structure-Function Relationships between Aldolase C/Zebrin II Expression and Complex Spike Synchrony in the Cerebellum. Journal of Neuroscience. 35 (2), 843-852 (2015).
  28. Rietdorf, K., Chehab, T., Allman, S., Bootman, M. D. Novel improved Ca indicator dyes on the market – a comparative study of novel Ca indicators with Fluo-4. Calcium Signalling: The Next Generation. , 590 (2014).
  29. Akerboom, J., et al. Optimization of a GCaMP Calcium Indicator for Neural Activity Imaging. Journal of Neuroscience. 32 (40), 13819-13840 (2012).
  30. Seidemann, E., et al. Calcium imaging with genetically encoded indicators in behaving primates. eLife. 5 (2016JULY), (2016).
  31. Su, S., et al. Genetically encoded calcium indicator illuminates calcium dynamics in primary cilia. Nature Methods. 10 (11), 1105-1109 (2013).
  32. Kaestner, L., et al. Genetically encoded Ca2+ indicators in cardiac myocytes. Circulation Research. 114 (10), 1623-1639 (2014).
  33. Tang, S., Reddish, F., Zhuo, Y., Yang, J. J. Fast kinetics of calcium signaling and sensor design. Current Opinion in Chemical Biology. 27, 90-97 (2015).
  34. Barnett, L. M., Hughes, T. E., Drobizhev, M. Deciphering the molecular mechanism responsible for GCaMP6m’s Ca2+-dependent change in fluorescence. PLoS ONE. 12 (2), 1-24 (2017).
  35. Spencer, N. J., et al. Identification of a rhythmic firing pattern in the enteric nervous system that generates rhythmic electrical activity in smooth muscle. The Journal of Neuroscience. , 3489 (2018).
  36. Hibberd, T. J., et al. Synaptic Activation of Putative Sensory Neurons By Hexamethonium-Sensitive Nerve Pathways in Mouse Colon. American Journal of Physiology – Gastrointestinal and Liver Physiology. (861), (2017).
  37. Baker, S. A., Drumm, B. T., Saur, D., Hennig, G. W., Ward, S. M., Sanders, K. M. Spontaneous Ca(2+) transients in interstitial cells of Cajal located within the deep muscular plexus of the murine small intestine. The Journal of Physiology. 594 (12), 3317-3338 (2016).
  38. Drumm, B. T., et al. Clustering of Ca2+ transients in interstitial cells of Cajal defines slow wave duration. The Journal of General Physiology. 149 (7), 703-725 (2017).
  39. Baker, S. A., Drumm, B. T., Cobine, C. A., Keef, K. D., Sanders, K. M. Inhibitory Neural Regulation of the Ca2+ Transients in Intramuscular Interstitial Cells of Cajal in the Small Intestine. Frontiers in Physiology. 9 (April), 1-24 (2018).
  40. Baker, S. A., et al. Excitatory Neuronal Responses of Ca 2+ Transients in Interstitial Cells of Cajal in the Small Intestine. eNeuro. 5 (2), (2018).
  41. Drumm, B. T., Sung, T. S., Zheng, H., Baker, S. A., Koh, S. D., Sanders, K. M. The effects of mitochondrial inhibitors on Ca2+signalling and electrical conductances required for pacemaking in interstitial cells of Cajal in the mouse small intestine. Cell Calcium. 72, 1-17 (2018).
  42. Zheng, H., Drumm, B. T., Earley, S., Sung, T. S., Koh, S. D., Sanders, K. M. SOCE mediated by STIM and Orai is essential for pacemaker activity in the interstitial cells of Cajal in the gastrointestinal tract. Science Signaling. 11 (June), (2018).
  43. Zhu, M. H., et al. A Ca(2+)-activated Cl(-) conductance in interstitial cells of Cajal linked to slow wave currents and pacemaker activity. The Journal of Physiology. 587 (20), 4905-4918 (2009).
  44. Zhu, M. H., Sung, T. S., O’Driscoll, K., Koh, S. D., Sanders, K. M. Intracellular Ca(2+) release from endoplasmic reticulum regulates slow wave currents and pacemaker activity of interstitial cells of Cajal. American Journal of Physiology. Cell Physiology. 308 (8), C608-C620 (2015).
  45. Zhu, M. H., et al. Muscarinic activation of Ca2+-activated Cl- current in interstitial cells of Cajal. The Journal of Physiology. 589 (Pt 18), 4565-4582 (2011).
  46. Ward, S. M., Burns, A. J., Torihashi, S., Sanders, K. M. Mutation of the proto-oncogene c-kit blocks development of interstitial cells and electrical rhythmicity in murine intestine. The Journal of Physiology. 480 (Pt 1), 91-97 (1994).
  47. Huizinga, J. D., Thuneberg, L., Klüppel, M., Malysz, J., Mikkelsen, H. B., Bernstein, A. W/kit gene required for interstitial cells of cajal and for intestinal pacemaker activity. Nature. 373 (6512), 347-349 (1995).
  48. Ordog, T., Ward, S. M., Sanders, K. M. Interstitial cells of Cajal generate electricial slow waves in the murine stomach. The Journal of Physiology. 518 (1), 257-269 (1999).
  49. Sanders, K. M., Ward, S. M., Koh, S. D. Interstitial cells: regulators of smooth muscle function. Physiological Reviews. 94 (3), 859-907 (2014).
  50. Ward, S. M., McLaren, G. J., Sanders, K. M. Interstitial cells of Cajal in the deep muscular plexus mediate enteric motor neurotransmission in the mouse small intestine. The Journal of Physiology. 573 (1), 147-159 (2006).
  51. Komuro, T. Structure and organization of interstitial cells of Cajal in the gastrointestinal tract. The Journal of Physiology. 576 (3), 653-658 (2006).
  52. Komuro, T. Comparative morphology of interstitial cells of Cajal: ultrastructural characterization. Microscopy Research and Technique. 47 (4), 267-285 (1999).
  53. Sanders, K. M., Ward, S. M., Koh, S. D. Interstitial Cells: Regulators of Smooth Muscle Function. Physiological Reviews. 94 (3), 859-907 (2014).
  54. Ye, L., Haroon, M. A., Salinas, A., Paukert, M. Comparison of GCaMP3 and GCaMP6f for studying astrocyte Ca2+dynamics in the awake mouse brain. PLoS ONE. 12 (7), e0181113 (2017).
  55. Truett, G. E., Heeger, P., Mynatt, R., Truett, A. A., Walker, J. A., Warman, M. L. Preparation of PCR quality mouse genomic DNA with hot sodium hydroxide and Tris (HotSHOT). BioTechniques. 29 (52), 54 (2000).
  56. . The Jackson Laboratory Available from: https://www2.jax.org/protocolsdb/f?p=116:5:0::NO:5:P5_MASTER_PROTOCOL_ID (2017)
  57. Drumm, B. T., et al. Ca 2+ signalling in mouse urethral smooth muscle in situ role of Ca 2+ stores and Ca 2+ influx mechanisms. The Journal of Physiology. 596 (8), 1433-1466 (2018).
  58. Heppner, T. J., Hennig, G. W., Nelson, M. T., Vizzard, M. A. Rhythmic Calcium Events in the Lamina Propria Network of the Urinary Bladder of Rat Pups. Frontiers in Systems Neuroscience. 11 (December), 1-16 (2017).
  59. Heppner, T. J., Hennig, G. W., Nelson, M. T., May, V., Vizzard, M. A. PACAP38-Mediated Bladder Afferent Nerve Activity Hyperexcitability and Ca 2 + Activity in Urothelial Cells from Mice. Journal of Molecular Neuroscience. 1, (2018).
  60. Griffin, C. S., et al. Muscarinic Receptor Induced Contractions of the Detrusor are Mediated by Activation of TRPC4 Channels. Journal of Urology. 196 (6), 1796-1808 (2016).
  61. Sergeant, G. P., Craven, M., Hollywood, M. A., Mchale, N. G., Thornbury, K. D. Spontaneous Ca2+waves in rabbit corpus cavernosum: Modulation by nitric oxide and cGMP. Journal of Sexual Medicine. 6 (4), 958-966 (2009).
  62. Bradley, E., et al. Novel Excitatory Effects of Adenosine Triphosphate on Contractile and Pacemaker Activity in Rabbit Urethral Smooth Muscle. Journal of Urology. 183 (2), 801-811 (2010).
  63. Drumm, B. T., et al. The effect of high [K + ] o on spontaneous Ca 2+ waves in freshly isolated interstitial cells of Cajal from the rabbit urethra. Physiological Reports. 2 (1), e00203 (2014).
check_url/pt/58989?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Drumm, B. T., Hennig, G. W., Baker, S. A., Sanders, K. M. Applications of Spatio-temporal Mapping and Particle Analysis Techniques to Quantify Intracellular Ca2+ Signaling In Situ. J. Vis. Exp. (143), e58989, doi:10.3791/58989 (2019).

View Video