Summary

Design og utvikling av en modell for å studere effekten av supplerende oksygen på cystisk fibrose luftveismikrobiom

Published: August 03, 2021
doi:

Summary

Målet med denne protokollen er å utvikle et modellsystem for effekten av hyperoksia på cystiske fibrose luftveismikrobielle samfunn. Kunstig sputummedium emulerer sammensetningen av sputum, og hyperoksiske kulturforhold modellerer effekten av supplerende oksygen på lungemikrobielle samfunn.

Abstract

Luftveis mikrobielle samfunn antas å spille en viktig rolle i utviklingen av cystisk fibrose (CF) og andre kroniske lungesykdommer. Mikrober har tradisjonelt blitt klassifisert basert på deres evne til å bruke eller tolerere oksygen. Supplerende oksygen er en vanlig medisinsk terapi administrert til personer med cystisk fibrose (pwCF); Imidlertid har eksisterende studier på oksygen og luftveismikrobiomet fokusert på hvordan hypoksi (lavt oksygen) i stedet for hyperoksi (høyt oksygen) påvirker de overveiende aerobe og fakultets anaerobe lungemikrobielle samfunnene. For å løse dette kritiske kunnskapsgapet ble denne protokollen utviklet ved hjelp av et kunstig sputummedium som etterligner sammensetningen av sputum fra pwCF. Bruken av filtersterilisering, som gir et gjennomsiktig medium, gjør det mulig for optiske metoder å følge veksten av encellede mikrober i suspensjonskulturer. For å skape hyperoksiske forhold utnytter dette modellsystemet etablerte anaerobe kultiveringsteknikker for å studere hyperoksiske forhold; I stedet for å fjerne oksygen, tilsetter oksygen til kulturer ved daglig sparring av serumflasker med en blanding av trykkoksygen og luft. Sputum fra 50 pwCF gjennomgikk daglig sparring i en 72-timers periode for å verifisere denne modellens evne til å opprettholde differensialoksygenforhold. Hagle metagenomisk sekvensering ble utført på kultiverte og ukulturerte sputumprøver fra 11 pwCF for å verifisere dette mediets evne til å støtte veksten av kommensale og patogene mikrober som vanligvis finnes i cystisk fibrose sputum. Vekstkurver ble oppnådd fra 112 isolasjoner hentet fra pwCF for å verifisere evnen til dette kunstige sputummediet for å støtte veksten av vanlige cystiske fibrosepatogener. Vi finner at denne modellen kan dyrke et bredt utvalg av patogener og commensals i CF sputum, gjenoppretter et samfunn som ligner sterkt på ukulturert sputum under normoksiske forhold, og skaper forskjellige kulturfenotyper under varierende oksygenforhold. Denne nye tilnærmingen kan føre til en bedre forståelse av uforutsiktede effekter forårsaket av bruk av oksygen i pwCF på luftveis mikrobielle samfunn og vanlige respiratoriske patogener.

Introduction

Cystisk fibrose (CF) er en genetisk sykdom preget av manglende evne til å fjerne tykt slim fra lungene, noe som fører til gjentatte infeksjoner og progressiv lungefunksjonsnedgang som ofte resulterer i behovet for lungetransplantasjon eller død. Luftveismikrobiomet til personer med cystisk fibrose (pwCF) ser ut til å spore sykdomsaktivitet1, med en reduksjon i mikrobielt mangfold forbundet med ugunstige langsiktige resultater2,3. I kliniske studier av pwCF har supplerende oksygenbehandling vært forbundet med mer avansert sykdom4,5, men tradisjonelt har bruk av oksygenbehandling blitt sett på som bare en markør for sykdoms alvorlighetsgrad6. Nyere studier fra en klinisk studie av pasienter med luftveissvikt har vist at høyere oksygennivå hos pasienter paradoksalt nok er forbundet med en økning i alvorlige bakterielle infeksjoner og høyere dødelighet7, noe som tyder på at supplerende oksygen kan bidra til sykdomspatogenese. Effekten av supplerende oksygen på cystisk fibrose lungemikrobiom og tilhørende lunge- og luftveismikrobielle samfunn er ikke godt studert.

Mekanistiske studier kan ofte ikke utføres direkte på mennesker på grunn av logistiske vanskeligheter og potensielle etiske problemer knyttet til intervensjoner av ukjent medisinsk nytte eller skade. Translasjonelle tilnærminger som integrerer menneskelige biospecimens i modellsystemer, kan gi viktig biologisk innsikt i disse tilfellene. Mens evnen til å bruke eller tolerere oksygen tradisjonelt har vært en viktig komponent i mikrobiell klassifisering, er det lite kjent om hvordan den terapeutiske innføringen av supplerende oksygen til miljøet kan perturb luftveis mikrobielle samfunn. For å belyse de ukjente effektene av supplerende oksygen på luftveismikrobiomene til pwCF, måtte vi ta opp to store utfordringer; for det første, opprettelsen av et kulturmedium som fysiologisk tilnærmer sammensetningen av CF sputum; For det andre, opprettelsen av et modellsystem som tillater vedlikehold av forhøyede oksygenkonsentrasjoner i kulturen over lengre perioder.

Kunstige sputummedier (ASM) er mye brukt til å etterligne lunge sputum ex vivo8,9,10, men det er ingen klar konsensus om en bestemt oppskrift. Denne protokollen beskriver en kunstig sputum medium oppskrift og forberedelse strategi nøye designet for fysiologisk omtrentlig sputum fra pwCF. Tabell 1 skisserer de valgte oppskriftsverdiene basert på publisert litteratur. Grunnleggende kjemiske komponenter og pH ble matchet med verdier identifisert av studier av human CF sputum11,12,13. Lav konsentrasjon fysiologiske næringsstoffer ble tilsatt ved hjelp av eggeplomme, som ble inkludert som 0,25% av det endelige volumet10, samt vitamin- og spormetallblandinger14,15. Mucin, nøkkelkomponenten i sputum16, ble inkludert ved 1% m/ v14. Selv om det var mer arbeidskrevende, ble filtersterilisering valgt over den mer konvensjonelle praksisen med varmesterilisering for å redusere potensielle problemer fra varmeindusert denaturering av essensielle mediekomponenter10. En ekstra fordel med filtersterilisering er at den genererer medier som er gjennomsiktige (varmesterilisering kan skape uklare medier på grunn av nedbør og koagulasjon av salter og proteiner), slik at dette kunstige sputummediet kan brukes til å følge mikrobiell vekst basert på økning i turbiditet.

Dette modellsystemet for den hyperoksiske kulturen er basert på anaerobe kultiveringsteknikker der oksygen tilsetts i stedet for å fjernes, og skaper en modell for effekten av supplerende oksygenbruk for pwCF. Figur 1 og den tilhørende oksygensparingsprotokollen skisserer komponentene i et oksygensparingssystem, som kan oppnås til lave kostnader fra generelle laboratorie- og sykehusleverandører. Dette systemet gjør det mulig å blande trykkoksygen og luft til faste konsentrasjoner fra 21% -100% oksygen. Integreringen av en oksygensensor gjør det mulig å verifisere konsentrasjonen av utgangsgassblandingen, samt sjekke utstrømningsgasssammensetningen til tidligere sparte serumflasker for å bekrefte at oksygenforholdene er opprettholdt innenfor ønsket område.

Denne protokollen skisserer prosedyrer for å skape et kunstig sputummedium, bygging og bruk av et oksygensparingssystem, og anvendelsen av både til kultur CF sputum under differensial oksygenforhold.

Protocol

Denne studien fikk godkjenning fra Partners Institutional Review Board (Protokoll # 2018P002934). Inklusjonskriteriet omfattet voksne pasienter med cystisk fibrose som ga skriftlig informert samtykke til studien. Det var ikke noe eksklusjonskriterium. I henhold til protokollretningslinjer ble alle sputumprøver samlet inn fra pasienter med cystisk fibrose under et planlagt poliklinisk besøk hos deres kliniske leverandør. 1. Kunstig Sputum Medium Forberedelse MERK: M…

Representative Results

Disse protokollene ble brukt på 50 ekspektorerte sputumprøver fra pwCF som presenterte for rutinemessig behandling til en poliklinisk cystisk fibroseklinikk ved Massachusetts General Hospital i Boston, Massachusetts. Hver pasients sputum ble dyrket under 21%, 50% og 100% oksygenforhold ved hjelp av det kunstige sputummediet, med 0,5 ml aliquots tatt fra hver kultur ved 24 timer, 48 timer og 72 timers kulturtid for testing. Kulturer ble fotografert da det ble gjort ekstraksjoner for å spore visuelle endringer. I tilleg…

Discussion

I denne studien ble en in vitro-modell utviklet for å studere effekten av hyperoksia på lungemikrobielle samfunn. Denne modellen, basert på kunstig sputummedium og daglig sparging av serumflasker, opprettholder forhøyede oksygenkonsentrasjoner og støtter veksten av mikrober identifisert i sputum fra pwCF.

Det er flere kritiske trinn i denne tilnærmingen. Først er valget å bruke filtersterilisering i stedet for varmesterilisering av det kunstige sputummediet. Filtersteriliserin…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

En del av dette arbeidet ble utført ved Marine Biological Lab med støtte fra Marine Biological Lab, DOE (DE-SC0016127), NSF (MCB1822263), HHMI (tilskuddsnummer 5600373), og en gave fra Simons Foundation.

Materials

BME Vitamins (100x) Solution MilliporeSigma B6891 Concentrated solution of supplemental vitamins.
Crimper, 30 mm DWK Life Sciences 224307 Crimper for attaching aluminum seals to serum bottles.
D-(+)-Glucose MilliporeSigma G7021 Solid glucose powder (dextrorotatory isomer).
Diaphragm Pump ME 2 NT VACUUBRAND 20730003 Vacuum pump for vacuum filtration.
Egg Yolk Emulsion HiMedia FD045 Sterile emulsion of 30% egg yolk in saline.
Ferritin, Cationized from Horse Spleen MilliporeSigma F7879 Ferritin (iron-storage protein) solution.
FIREBOY plus Safety Bunsen Burner Integra Biosciences 144000 Bunsen burner with user interface and safety features.
Hydrion pH Paper (1.0–14.0) Micro Essential Laboratory 94 pH testing paper for the range of 1.0–14.0.
Hydrion pH Paper (4.0–9.0) Micro Essential Laboratory 55 pH testing paper for the range of 4.0–9.0.
Hydrion pH Paper (6.0–8.0) Micro Essential Laboratory 345 pH testing paper for the range of 6.0–8.0.
Hypodermic Needle-Pro EDGE Safety Device, 18 G Smiths Medical 401815 18 G needles with safety caps.
In-Line Pressure Gauge MilliporeSigma 20469 Gas pressure gauge for monitoring bottle pressure.
Innova 42 Incubated Shaker Eppendorf 2231000756 Combination incubator/orbital shaker.
Luer-Lok Syringe with Attached Needle Becton Dickinson 309580 Combination 3 mL syringe and 18 G needle.
Luer Valve Assortment World Precision Instruments 14011 Valves for gas flow tubing.
LSE Orbital Shaker ThermoFisher Scientific 6780-NP Orbital shaker to agitate media during filtration.
Magnesium Sulfate Heptahydrate MilliporeSigma M2773 Solid epsom salt (magnesium sulfate heptahydrate).
Medical Air Single Stage Regulator with Flowmeter Western Enterprises M1-346-15FM Air flow rate regulator with 15 L/min meter.
MEM Amino Acids (50x) Solution MilliporeSigma M5550 Concentrated solution of essential amino acids.
MEM Non-Essential Amino Acids (100x) Solution MilliporeSigma M7145 Concentrated solution of non-essential amino acids.
Millex-GP Filter, 0.22 µm MilliporeSigma SLMP25SS 0.22 µm polyethersulfone membrane sterile syringe filter.
Milli-Q Academic MilliporeSigma ZMQS60E01 Milli-Q sterile water filtration system.
MiniOX 3000 Oxygen Monitor MSA 814365 Gas flow oxygen percentage monitor.
MOPS Buffer (1 M, pH 9.0) Boston BioProducts BBM-90 MOPS buffer for adjusting media pH.
Mucin from Porcine Stomach MilliporeSigma M2378 Mucin (glycosylated gel-forming protein) powder.
Natural Polypropylene Barbed Fitting Kit Harvard Apparatus 72-1413 Connectors for gas flow tubing.
Nextera XT DNA Library Preparation Kit Illumina FC-131-1096 Library preparation for identification during sequencing.
NovaSeq 6000 Sequencing System Illumina 770-2016-025-N Shotgun sequencing platform for generating sample reads.
Oxygen Single Stage Regulator with Flowmeter Western Enterprises M1-540-15FM Oxygen flow rate regulator with 15 L/min meter.
Oxygen Tubing with 2 Standard Connectors SunMed 2001-01 Tubing for connecting gas system components.
Phosphate buffered saline, 10x, pH 7.4 Molecular Biologicals International MRGF-6235 Concentrated phosphate-buffered saline solution.
PC 420 Hot Plate/Stirrer Marshall Scientific CO-PC420 Combination hot plate/stirrer.
Potassium Chloride MilliporeSigma P9541 Solid potassium chloride salt.
PTFE Disposable Stir Bars ThermoFisher Scientific 14-513-95 Disposable magnetic stir bars.
PTFE Thread Seal Teflon Tape VWR 470042-938 Teflon tape for reinforcing gas system connections.
Q-Gard 2 Purification Cartridge MilliporeSigma QGARD00D2 Purification cartridge for Milli-Q system.
Reusable Media Storage Bottles ThermoFisher Scientific 06-423A Bottles for mixing and storing culture media.
Rubber Stopper, 30 mm, Gray Bromobutyl DWK Life Sciences 224100-331 Rubber stoppers for serum bottles.
Serum Bottle with Molded Graduations, 500 mL DWK Life Sciences 223952 Glass serum bottles for sealed culturing.
Small Bore Extension Set Braun Medical 471960 Tubing extension with luer lock connectors.
Sodium Chloride MilliporeSigma S3014 Solid sodium chloride salt.
Spike-in Control I (High Microbial Load) ZymoBIOMICS D6320 Spike-in microbes (I. halotolerans and A. halotolerans) for absolute microbial load calculations
Stericup Quick Release Sterile Vacuum Filtration System MilliporeSigma S2GPU02RE 250 mL 0.22 µm vacuum filtration chamber.
Super Sani-Cloth Germicidal Disposable Wipes Professional Disposables International H04082 Disposable germicidal wipes for sterilization.
Trace Metals Mixture, 1000x ThermoFisher Scientific NC0112668 Concentrated solution of physiological trace metals.
Unlined Aluminum Seal, 30 mm DWK Life Sciences 224187-01 Aluminum seals crimped over top of rubber stoppers.
USP Medical Grade Air Tank Airgas AI USP200 Compressed air tank for input to sparging system.
USP Medical Grade Oxygen Tank Airgas OX USP200 Compressed oxygen tank for input to sparging system.

Referências

  1. Carmody, L. A., et al. Fluctuations in airway bacterial communities associated with clinical states and disease stages in cystic fibrosis. PLoS One. 13 (3), 0194060 (2018).
  2. Acosta, N., et al. Sputum microbiota is predictive of long-term clinical outcomes in young adults with cystic fibrosis. Thorax. 73 (11), 1016-1025 (2018).
  3. Muhlebach, M. S., et al. Initial acquisition and succession of the cystic fibrosis lung microbiome is associated with disease progression in infants and preschool children. PLoS Pathogens. 14 (1), 1006798 (2018).
  4. Zolin, A., Bossi, A., Cirilli, N., Kashirskaya, N., Padoan, R. Cystic fibrosis mortality in childhood. Data from European cystic fibrosis society patient registry. International Journal of Environmental Research and Public Health. 15 (9), (2018).
  5. Ramos, K. J., et al. Heterogeneity in survival in adult patients with cystic fibrosis with FEV1 30% of predicted in the United States. Chest. 30 (6), 1320-1328 (2017).
  6. Ramos, K. J., et al. Predictors of non-referral of patients with cystic fibrosis for lung transplant evaluation in the United States. Journal of Cystic Fibrosis. 15 (2), 196-203 (2016).
  7. Girardis, M., et al. Effect of conservative vs conventional oxygen therapy on mortality among patients in an intensive care unit: The Oxygen-ICU randomized clinical trial. JAMA. 316 (15), 1583-1589 (2016).
  8. Comstock, W. J., et al. The WinCF model – An inexpensive and tractable microcosm of a mucus plugged bronchiole to study the microbiology of lung infections. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (123), e55532 (2017).
  9. Diraviam Dinesh, S. Artificial sputum medium. Protocol Exchange. , (2010).
  10. Kirchner, S., et al. Use of artificial sputum medium to test antibiotic efficacy against Pseudomonas aeruginosa in conditions more relevant to the cystic fibrosis lung. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (64), e3857 (2012).
  11. Grandjean Lapierre, S., et al. Cystic fibrosis respiratory tract salt concentration: An Exploratory Cohort Study. Medicina. 96 (47), 8423 (2017).
  12. Palmer, K. L., Aye, L. M., Whiteley, M. Nutritional cues control Pseudomonas aeruginosa multicellular behavior in cystic fibrosis sputum. Journal of Bacteriology. 189 (22), 8079-8087 (2007).
  13. Van Sambeek, L., Cowley, E. S., Newman, D. K., Kato, R. Sputum glucose and glycemic control in cystic fibrosis-related diabetes: a cross-sectional study. PLoS One. 10 (3), 0119938 (2015).
  14. Flynn, J. M., Niccum, D., Dunitz, J. M., Hunter, R. C. Evidence and role for bacterial mucin degradation in cystic fibrosis airway disease. PLoS Pathogens. 12 (8), 1005846 (2016).
  15. Gallagher, T., et al. Liquid chromatography mass spectrometry detection of antibiotic agents in sputum from persons with cystic fibrosis. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 65 (2), (2021).
  16. Voynow, J. A., Rubin, B. K. Mucins, mucus, and sputum. Chest. 135 (2), 505-512 (2009).
  17. Sui, H. Y., et al. Impact of DNA extraction method on variation in human and built environment microbial community and functional profiles assessed by shotgun metagenomics sequencing. Frontiers in Microbiology. 11, 953 (2020).
  18. McIver, L. J., et al. bioBakery: a meta’omic analysis environment. Bioinformatics. 34 (7), 1235-1237 (2018).
  19. Truong, D. T., et al. MetaPhlAn2 for enhanced metagenomic taxonomic profiling. Nature Methods. 12 (10), 902-903 (2015).
  20. Stammler, F., et al. Adjusting microbiome profiles for differences in microbial load by spike-in bacteria. Microbiome. 4 (1), 28 (2016).
  21. Henke, M. O., Renner, A., Huber, R. M., Seeds, M. C., Rubin, B. K. MUC5AC and MUC5B mucins are decreased in cystic fibrosis airway secretions. American Journal of Respiratory Cell and Molecular Biology. 31 (1), 86-91 (2004).
  22. Henderson, A. G., et al. Cystic fibrosis airway secretions exhibit mucin hyper concentration and increased osmotic pressure. Journal of Clinical Investigation. 124 (7), 3047-3060 (2014).
  23. Matthews, L. W., Spector, S., Lemm, J., Potter, J. L. Studies on pulmonary secretions. I. The over-all chemical composition of pulmonary secretions from patients with cystic fibrosis, bronchiectasis, and laryngectomy. American Review of Respiratory Disease. 88, 199-204 (1963).
  24. Ibanez de Aldecoa, A. L., Zafra, O., Gonzalez-Pastor, J. E. Mechanisms and regulation of extracellular DNA release and its biological roles in microbial communities. Frontiers in Microbiology. 8, 1390 (2017).
  25. Tunney, M. M., et al. Detection of anaerobic bacteria in high numbers in sputum from patients with cystic fibrosis. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 177 (9), 995-1001 (2008).
  26. Worlitzsch, D., et al. Effects of reduced mucus oxygen concentration in airway Pseudomonas infections of cystic fibrosis patients. Journal of Clinical Investigation. 109 (3), 317-325 (2002).
check_url/pt/62888?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Vieira, J., Gallagher, T., Sui, H., Jesudasen, S., Whiteson, K., O’Toole, G. A., Hanselmann, K., Lai, P. S. Design and Development of a Model to Study the Effect of Supplemental Oxygen on the Cystic Fibrosis Airway Microbiome. J. Vis. Exp. (174), e62888, doi:10.3791/62888 (2021).

View Video