Summary

の14日齢の苗の組織からのプロトプラストの単離シロイヌナズナ</em

Published: August 17, 2009
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Summary

このビデオでは、シロイヌナズナの14日齢の実生の組織から無傷のプロトプラストを単離するための手順を示しています。分離されたプロトプラストは、少なくとも96時間のためにそのまま残るし、代わりに一ヶ月の成熟植物の苗から分離されていることを考えると、この手順は、無傷プロトプラストを必要とするアッセイを迅速に処理されます。

Abstract

プロトプラストは細胞壁が酵素的に除去あった植物細胞で​​ある。異なる植物組織からのプロトプラストの単離は、最初の40年以上前に報告された<sup> 1</sup>それ以来このような細胞内タンパク質の局在、無傷の細胞小器官の分離と二本鎖RNA干渉(RNAi)による遺伝子不活性化標的としての細胞プロセスの様々な、研究するために適応されています<sup> 2月5日</sup>。プロトプラストの分離プロトコルのほとんどは、成熟したシロイヌナズナの葉組織(例えば、35日齢の植物)を使用してください<sup> 2月4日</sup>。我々は、14日齢のシロイヌナズナの苗を用いることにより、既存のプロトコルを変更。この手順では、14日齢の実生の1グラムは、5 10が得られた<sup> 6</sup> -10<sup> 7</sup>少なくとも96時間そのまま残りますプロトプラスト。苗からのプロトプラストの収量は、成熟したシロイヌナズナの葉から調製品と同等ですが、代わりに35〜36日から、プロトプラストの単離は、15日間で完了します。これは成熟した植物を使用するときにプロトプラストを単離するために必要な時間と成長室のスペースを減少させることができ、そのままプロトプラストを必要と下流の研究を促進します。

Protocol

パート1。植物栽培用固形培地の調製。 集中Murasigeと1%ショ糖および0.7%寒天を添加したスクーグ(MS)培地上で我々は通常、カルチャの植物。それは植物が健康を保つために必要なすべての成分が含まれています。 MSの1L、メディアのpH 5.7調製するための 1.5 – 2.0Lオートクレーブ可能なボトルに水800mlにMSの粉末2.15gを追加します?…

Discussion

無傷のプロトプラストを高収率を確保するためには、健康な植物で、起動に非常に重要です。プロトプラストを単離するための溶液をろ過滅菌して使用してください。プロトプラストが壊れやすいことに注意してください。したがって、プロトプラストを処理する際に、ピペットまたはそれはそれらを制動される精力的に以来、渦、それらを混在させないでください。代わりに、徐々に遠心?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

この作品は、スタートアップ助成金は、OKVに授与コーネル大学農業試験場(CUAES)NYC – 125433ハッチグラントとコーネルによってサポートされていました

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
Murashige and Skoog Basal Salt Mixture (MS)   Sigma M5524  
Agar   Sigma A1296  
Petri Dishes (100x15mm)   Kreckeler Scientific 82-4001  
Cellulase (Onozuka R‐10)   RPI Corp C32200  
Macerozyme (R10)   RPI Corp M22010  
Cheesecloth wipes   Fisher Scientific 06-665-29  
Lab Rotator   Fisher Scientific 1167152Q  
Allegra X‐15R Centrifuge   VWR 392932  
Axioskop2 Plus Microscope   Zeiss    

References

  1. Cocking, E. C. A Method for the Isolation of Plant Protoplasts and Vacuoles. Nature. 187, 962-963 (1960).
  2. Chen, S., Halkier, B. A. Characterization of glucosinolate uptake by leaf protoplasts of Brassica napus. J Biol Chem. 275, 22955-22960 (2000).
  3. Robert, S., Zouhar, J., Carter, C., Raikhel, N. Isolation of intact vacuoles from Arabidopsis rosette leaf-derived protoplasts. Nat. Protocols. 2, 259-262 (2007).
  4. Yoo, S. D., Cho, Y. H., Sheen, J. Arabidopsis mesophyll protoplasts: a versatile cell system for transient gene expression analysis. Nat Protoc. 2, 1565-1572 (2007).
  5. Zhai, Z., Sooksa-nguan, T., Vatamaniuk, O. K. Establishing RNAi as a reverse genetic approach for gene functional analysis in protoplasts. Plant Phys. 149, 642-652 (2009).
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Cite This Article
Zhai, Z., Jung, H., Vatamaniuk, O. K. Isolation of Protoplasts from Tissues of 14-day-old Seedlings of Arabidopsis thaliana. J. Vis. Exp. (30), e1149, doi:10.3791/1149 (2009).

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