Live avbildning av Drosophila melanogaster Embryonala Hemocyte Flyttningar
Summary
Drosophila hemocyter sprida över hela det växande embryot. Detta protokoll visar hur du monterar och bild dessa vandringar med hjälp av embryon med fluorescerande hemocyter.
Abstract
Många studier adress cell migration med<em> In vitro</em> Metoder, medan den fysiologiskt relevanta miljön är att av organismen själv. Här presenterar vi ett protokoll för montering av<em> Drosophila melanogaster</em> Embryon och efterföljande leva avbildning av fluorescerande hemocyter, den embryonala makrofager av denna organism. Använda Gal4-UAS-system<sup> 1</sup> Kör vi ett uttryck för en variation av genetiskt kodade, fluorescerande taggade markörer i hemocyter att följa deras utveckling spridning i hela embryot. Efter insamlingen av embryon på önskad utvecklingsstadium, är det yttre chorion bort och embryona sedan monteras i Halocarbon olja mellan en hydrofoba, gas-membran och ett glas täckglas för live avbildning. Förutom grov vandrande parametrar som hastighet och riktning, högre upplösning bildbehandling i kombination med användning av fluorescerande reportrar för F-aktin och mikrotubuli kan ge mer detaljerad information om dynamiken i dessa cytoskelettala komponenter.
Protocol
Discussion
De viktigaste delarna i detta förfarande är urvalet av friska embryon med tydligt märkta hemocyter och att montera dem försiktigt utan att skada dem. När embryon i Halocarbon olja de är resistenta mot uttorkning och en gång monterade kan avbildas i flera timmar. I våra händer kan vi bilden hemocyter i tre timmar, med försumbar uttorkning av embryo eller tydliga foto-skador, med ett z-stack av bilder var tredje minut på vår Zeiss LSM510 konfokalmikroskop med 40X objektiv. Eftersom hemocyter mycket dynamiska d…
Acknowledgements
Detta protokoll har utvecklats genom vårt arbete inom och i samarbete med laboratorier av Paul Martin och Antonio Jacinto. Vi tackar Bloomington Stock centrum för sin utmärkta service och den Drosophila community för att fortsätta dela flyga linjer. BS är för närvarande finansieras genom en BBSRC projektbidrag. WW är finansierad av ett Wellcome Trust Career Development Fellowship.
Materials
| Material Name | Type | Company | Catalogue Number | Comment |
|---|---|---|---|---|
| Cell strainer | BD Falcon | 352350 | 70μm pores | |
| Halcarbon oil 700 | Sigma | H8898 | ||
| Lumox/Petriperm dish | Sarstedt | 96077305 |
References
- Brand, A. H., Perrimon, N. Targeted gene expression as a means of altering cell fates and generating dominant phenotypes. Development. 118, 401-415 (1993).
- Bruckner, K. The PDGF/VEGF receptor controls blood cell survival in Drosophila. Dev Cell. 7, 73-84 (2004).
- Dutta, D., Bloor, J. W., Ruiz-Gomez, M., VijayRaghavan, K., Kiehart, D. P. Real-time imaging of morphogenetic movements in Drosophila using Gal4-UAS-driven expression of GFP fused to the actin-binding domain of moesin. Genesis. 34, 146-151 (2002).
- Stramer, B. Live imaging of wound inflammation in Drosophila embryos reveals key roles for small GTPases during in vivo cell migration. J Cell Biol. 168, 567-573 (2005).
- Wood, W., Jacinto, A. Drosophila melanogaster embryonic haemocytes: masters of multitasking. Nat Rev Mol Cell Biol. 8, 542-551 (2007).
- Halfon, M. S. New fluorescent protein reporters for use with the Drosophila Gal4 expression system and for vital detection of balancer chromosomes. Genesis. 34, 135-138 (2002).
- Sullivan, W., Ashburner, M., Hawley, R. S. . Drosophila protocols. , (2000).
- Tepass, U., Fessler, L. I., Aziz, A., Hartenstein, V. Embryonic origin of hemocytes and their relationship to cell death in Drosophila. Development. 120, 1829-1837 (1994).
- Millard, T. H., Martin, P. Dynamic analysis of filopodial interactions during the zippering phase of Drosophila dorsal closure. Development. 135, 621-626 (2008).
- Doerflinger, H., Benton, R., Shulman, J. M., St Johnston, D. The role of PAR-1 in regulating the polarised microtubule cytoskeleton in the Drosophila follicular epithelium. Development. 130, 3965-3975 (2003).
- Olofsson, B., Page, D. T. Condensation of the central nervous system in embryonic Drosophila is inhibited by blocking hemocyte migration or neural activity. Dev Biol. 279, 233-243 (2005).
- Paladi, M., Tepass, U. Function of Rho GTPases in embryonic blood cell migration in Drosophila. J Cell Sci. 117, 6313-6326 (2004).
- Vlisidou, I. Drosophila embryos as model systems for monitoring bacterial infection in real time. PLoS Pathog. 5, e1000518-e1000518 (2009).
- Jacinto, A. Dynamic actin-based epithelial adhesion and cell matching during Drosophila dorsal closure. Curr Biol. 10, 1420-1426 (2000).
- Wood, W., Jacinto, A. Imaging cell movement during dorsal closure in Drosophila embryos. Methods Mol Biol. 294, 203-210 (2005).
- Kunwar, P. S. Tre1 GPCR initiates germ cell transepithelial migration by regulating Drosophila melanogaster E-cadherin. J Cell Biol. 183, 157-168 (2008).
