Procédé pour l'isolement de cellules rétiniennes uniques et d'amplification ultérieur de leurs ADNc est décrite. Monocellulaires transcriptomique révèle le degré de l'actuelle hétérogénéité cellulaire dans un tissu et découvre de nouveaux gènes marqueurs de populations de cellules rares. Le protocole d'accompagnement peut être ajustée en fonction de nombreux types cellulaires différents.
Populations hautement spécialisés, mais extrêmement faible de cellules jouent un rôle important dans de nombreux tissus. L'identification de la cellule de type marqueurs spécifiques et des programmes d'expression génique pour des sous-ensembles de cellules extrêmement rares a été un défi en utilisant des tissus entiers approches. Profilage de l'expression génique des cellules individuelles permet un accès sans précédent à des types cellulaires qui composent seulement un petit pourcentage de l'ensemble du tissu 1-7. En outre, cette technique peut être utilisée pour examiner les programmes de l'expression des gènes qui sont exprimés dans transitoirement un petit nombre de cellules au cours de dynamiques de développement des transitions 8.
Cette question de la diversité cellulaire se pose à plusieurs reprises dans le système nerveux central (SNC) où les connexions neuronales peuvent se produire entre les cellules très diverses 9. Le nombre exact de types cellulaires distincts n'est pas connue avec précision, mais il a été estimé qu'il pourrait y avoir jusqu'à 1000 différents types dans le cortex itself 10. La fonction (s) de circuits neuronaux complexes peut s'appuyer sur quelques-uns des types rares neurones et les gènes qu'ils expriment. En identifiant de nouveaux marqueurs et d'aider à classer les différents neurones moléculaire, l'approche unique de cellules est particulièrement utile dans l'analyse des types de cellules dans le système nerveux. Il peut aussi aider à élucider les mécanismes de développement du système nerveux par l'identification des gènes différentiellement exprimés et les voies de gènes au cours des étapes précoces du développement progéniteur neuronal.
En simple, le tissu facilement accessible avec la diversité neuronale considérable, la rétine des vertébrés est un excellent modèle pour étudier les processus de développement cellulaire, la différenciation neuronale et la diversification neuronale. Cependant, comme dans d'autres parties du système nerveux central, cette diversité cellulaire peut présenter un problème pour la détermination des voies génétiques qui conduisent progéniteurs rétiniens d'adopter un destin cellulaire spécifique, en particulier étant donné que les photorécepteurs tige forment le majorité de la population totale des cellules rétiniennes 11. Nous rapportons ici une méthode pour l'identification des transcrits exprimés dans les cellules rétiniennes simples (figure 1). La technique de profilage à cellule unique permet pour l'évaluation de la quantité de l'hétérogénéité au sein de différentes populations cellulaires de la rétine 2,4,5,12. En outre, cette méthode a révélé une foule de nouveaux gènes candidats qui pourraient jouer un rôle (s) dans le destin des cellules aux processus décisionnels qui se produisent dans des sous-ensembles de cellules progénitrices rétiniennes 8. Avec quelques ajustements simples du protocole, cette technique peut être utilisée pour de nombreux tissus différents et des types de cellules.
Un nombre sans cesse croissant d'études révèlent robustes cellule à cellule variabilité des populations que l'on croyait à être plus homogènes en ce qui concerne leur expression génique 6,8. Dans un cas au moins, cette expression du gène du «bruit» a été montré à jouer un rôle important biologique 13. Différences d'expression des gènes entre les cellules individuelles sont obscurcies à l'aide de tissus traditionnels ensemble des méthodes. Ces expériences de gé…
The authors have nothing to disclose.
Reaction mixtures:
Cell Lysis buffer
0.45 μ | 10X reaction buffer (100 mM Tris-HCl pH 8.3, 500 mM KCl, 2 mM MgCl2) |
0.23 μl | 10% NP-40 |
0.23 μl | 0.1M DTT |
0.05 μl | RNase Inhibitor (40 U/μl) |
0.05 μl | SUPERase-In (20U/μl) |
0.13 μl | Modified Oligo d(T) primer (TATAGAATTCGCGGCCGCTCGCGATTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTT) |
0.09 μl | dNTPs (2.5 mM each) |
3.27 μl | dH20 (use molecular biology grade for all reaction mixtures) |
Tailing Reaction Mixture
0.18 μl | 100 mM dATP |
0.6 μl | 10X reaction buffer(100 mM Tris-HCl pH 8.3, 500 mM KCl, 2 mM MgCl2) |
4.62 μl | dH2O |
0.3 μl | TdT (400 U/μl) |
0.3 μl | RNase H (2 U/μl) |
PCR Reaction Mixture
10 μl | 10x Ex-Taq HS Buffer with Mg2+ |
10 μl | 2.5 mM dNTPs |
0.2 μl | Modified Oligo d(T) primer (10 μg/μl) |
1 μl | Ex-Taq HS Polymerase (5U/μl) |
68.8 μl | dH2O |
10X One-Phor All Buffer
0.5M | Potassium acetate |
0.1M | Tris acetate (pH 7.6) |
0.1M | Magnesium acetate |
Solutions:
10X Phosphate buffered saline (1 liter)
80g NaCl
2g KCl
14.4 g Na2PO4
2.4 g KH2PO4
adjust to pH 7.4 with NaOH and bring the volume to 1 liter with water
Name of the reagent | Company | Catalog number | Comments |
Vertical needle puller | David Kopf Instruments | Model 750 | |
Microcapillary tubes | Sigma | P0674 | |
Aspirator tube assembly | Sigma | A5177 | |
Corning filter tips (100-1000 μl | Fisher Scientific | 07-200-265 | |
Hank’s balanced salt solution (1X) | Lonza BioWhittaker | 10-508F | |
HEPES buffer (1M) | MP Biomedicals | 091688449 | |
Bovine serum albumin | Sigma | A9418 | |
DNase I | Roche | 04716728001 | |
papain | Worthington | LS03126 | |
Superscript III | Invitrogen | 18080-044 | |
RNase Inhibitor | Applied Biosystems | AM2682 | These two RNase inhibitors seem to work the best. Contaminants present in other inhibitors can contribute to a background smear. |
SUPERase-In | Applied Biosystems | AM2694 | These two RNase inhibitors seem to work the best. Contaminants present in other inhibitors can contribute to a background smear. |
Modified Oligo d(T) primer (gel purified) | Oligos ETC | We have used primers purchased from many different companies and have seen the most reliable and reproducible results from Oligos ETC. | |
T4 gene 32 protein | New England Biolabs | M0300L | |
Exonuclease I | New England Biolabs | M0293S | |
TdT | Roche | 3 333 574 | As with other reagents, using a TdT enzyme from other companies gave more variable results. |
RNase H | Invitrogen | 18021-014 | |
Ex-Taq HS Polymerase | Takara | RR006A | |
Biotin N6-ddATP | Enzo Biosciences | 42809 |
Table 1. Specific reagents and equipment.