Summary

Functionele Evaluatie van darmmotiliteit en de darmwand ontsteking in Knaagdieren: Analyses in een gestandaardiseerd model van Intestinal Manipulatie

Published: September 11, 2012
doi:

Summary

Postoperatieve ileus (POI) is een complicatie van abdominale chirurgie leidt tot verhoogde morbiditeit en een langdurig verblijf in het ziekenhuis. Omdat profylactische of therapeutische strategieën ontbreken geïntensiveerd onderzoek is noodzakelijk. Daarom hebben we een gestandaardiseerde en haalbaar muismodel naar de pathofysiologie van POI te onderzoeken en mogelijke therapeutische opties te bestuderen.

Abstract

Ontsteking van het maagdarmkanaal is een veelvuldige oorzaak van een verscheidenheid van menselijke ziekten. Animal onderzoeksmodellen zijn cruciaal bij het onderzoek naar de complexe cellulaire en moleculaire van intestinale pathologie. Hoewel de tunica mucosa is vaak het orgaan van belang in veel inflammatoire ziekten, toonden recente werken die de muscularis externa (ME) is ook een zeer immunocompetente orgaan dat herbergt een dicht netwerk van ingezeten immunocyten. 1,2 Deze werken werden uitgevoerd binnen de gestandaardiseerde model van intestinale manipulatie (IM) dat leidt tot ontsteking van de darmwand, hoofdzakelijk beperkt tot de ME. Klinisch deze ontsteking leidt tot langdurige intestinale dysmotiliteit, bekend als postoperatieve ileus (POI), een frequent en onvermijdelijke complicatie na abdominale chirurgie. 3 De ontsteking wordt gekenmerkt door het ontlasten van proinflammatoire mediatoren zoals IL-6 4 of IL-1β of neurotransmitters zoals Nitric oxide (NO). 5 Vervolgens, enorme aantallen immunocyten extravasaat in de ME, gedomineerd door polymorfonucleaire neutrofielen (PMN) en monocyten en tenslotte onderhouden POI. 2 voor de duur van dagen, deze intestinale verlamming leidt tot een verhoogd risico op aspiratie, bacteriële translocatie en infectieuze complicaties tot sepsis en multi orgaanfalen en zorgt voor een hoge economische last. 6

In dit manuscript demonstreren we het gestandaardiseerde model van IM en in vivo evaluatie van de gastro-intestinale transit (GIT) en colon doorvoer. Verder tonen we een werkwijze voor het scheiden van de ME van de tunica mucosa gevolgd door immunologische analyse, die belang onderscheid te maken tussen de inflammatoire responsen in deze beide zeer immuunactieve darmwand compartimenten. Alle analyses zijn gemakkelijk overdraagbaar aan een andere onderzoeksmodellen, die de maag-functie.

Protocol

1. Dieren Mannelijke C57Bl6 / J muizen met een gemiddeld gewicht van 25 g werden verkregen van Harlan Winkelmann (Borchen, Duitsland). Alle experimenten werden uitgevoerd in overeenstemming met de federale wetgeving betreffende de bescherming van dieren. De principes van proefdier zorg werden gevolgd. Dieren werden op een 12-uur licht / donker-cyclus en voorzien van in de handel verkrijgbare knaagdiervoer en kraanwater ad libitum. De dieren moeten worden gehuisvest ten minste 7 dagen …

Discussion

Een vergelijkende studie van de verschillende IM (dunne darm eventration gedurende 10 min zachtjes versus controle van de dunne darm met twee katoenen applicators versus IM met evacuatie van de dunne darm inhoud in de blindedarm) werd een correlatie tussen de mate van chirurgische manipulatie en POI. In vergelijking met de andere groepen IM het hoogste bedrag van leukocyten toonde in de ME (PNMs, macrofagen en mestcellen) resulteert in een verlengde en ernstige POI. 8.

Bij het vas…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dit werk werd ondersteund door subsidies van de Deutsche Forschungsgemeinschaft (KA1270/3-1/2) en BONFOR (O-112.0040).

Materials

Name of the reagent/Equipment Company Catalogue number
Ethilon 5/0 Ethicon 1666H
Cotton applicators MaiMed 71010
arterial catheter Vygon 115-798
96 well plate (black) Greiner Bio One 655096
glass ball (2 mm diameter) Worf available on request
Insect pins Fine Science Tools 26000-25
Hanker Yates Reagent Polyscience 560694
Aquatek Merck HC109850
DMEM Lonza BE12-604 F
FITC-dextran (MW 70000) Sigma Aldrich 46945-500MG-F

References

  1. Wehner, S., Behrendt, F. F., Lyutenski, B. N., Lysson, M., Bauer, A. J., Hirner, A., Kalff, J. C. Inhibition of macrophage function prevents intestinal inflammation and postoperative ileus in rodents. Gut. 56, 176-185 (2007).
  2. Kalff, J. C., Schwarz, N. T., Walgenbach, K. J., Schraut, W. H., Bauer, A. J. Leukocytes of the intestinal muscularis: their phenotype and isolation. J. Leukoc. Biol. 63, 683-691 (1998).
  3. Kehlet, H. Postoperative ileus. Gut. 47, iv85-iv86 (2000).
  4. Wehner, S., Schwarz, N. T., Hundsdoerfer, R., Hierholzer, C., Tweardy, D. J., Billiar, T. R., Bauer, A. J., Kalff, J. C. Induction of IL-6 within the rodent intestinal muscularis after intestinal surgical stress. Surgery. 137, 436-446 (2005).
  5. Kalff, J. C., Schraut, W. H., Billiar, T. R., Simmons, R. L., Bauer, A. J. Role of inducible nitric oxide synthase in postoperative intestinal smooth muscle dysfunction in rodents. Gastroenterology. 118, 316-327 (2000).
  6. Iyer, S., Saunders, W. B., Stemkowski, S. Economic burden of postoperative ileus associated with colectomy in the United States. J. Manag. Care Pharm. 15, 485-494 (2009).
  7. Miller, M. S., Galligan, J. J., Burks, T. F. Accurate measurement of intestinal transit in the rat. J. Pharmacol. Methods. 6, 211-217 (1981).
  8. Kalff, J. C., Schraut, W. H., Simmons, R. L., Bauer, A. J. Surgical manipulation of the gut elicits an intestinal muscularis inflammatory response resulting in postsurgical ileus. Ann. Surg. 228, 652-663 (1998).
  9. Wehner, S., Straesser, S., Vilz, T. O., Pantelis, D., Sielecki, T., de lC, V., Hirner, A., Kalff, J. C. Inhibition of p38 mitogen-activated protein kinase pathway as prophylaxis of postoperative ileus in mice. Gastroenterology. 136, 619-629 (2009).
  10. Konigsrainer, I., Turck, M. H., Eisner, F., Meile, T., Hoffmann, J., Kuper, M., Zieker, D., Glatzle, J. The Gut is not only the Target but a Source of Inflammatory Mediators Inhibiting Gastrointestinal Motility During Sepsis. Cell Physiol. Biochem. 28, 753-760 (2011).
  11. Schwarz, N. T., Kalff, J. C., Turler, A., Speidel, N., Grandis, J. R., Billiar, T. R., Bauer, A. J. Selective jejunal manipulation causes postoperative pan-enteric inflammation and dysmotility. Gastroenterology. 26, 159-169 (2004).
  12. Engel, D. R., Koscielny, A., Wehner, S., Maurer, J., Schiwon, M., Franken, L., Schumak, B., Limmer, A., Sparwasser, T., Hirner, A. T helper type 1 memory cells disseminate postoperative ileus over the entire intestinal tract. Nat. Med. , (2010).
  13. Stoffels, B., Schmidt, J., Nakao, A., Nazir, A., Chanthaphavong, R. S., Bauer, A. J. Role of interleukin 10 in murine postoperative ileus. Gut. 58, 648-660 (2009).
check_url/4086?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Vilz, T. O., Overhaus, M., Stoffels, B., Websky, M. v., Kalff, J. C., Wehner, S. Functional Assessment of Intestinal Motility and Gut Wall Inflammation in Rodents: Analyses in a Standardized Model of Intestinal Manipulation. J. Vis. Exp. (67), e4086, doi:10.3791/4086 (2012).

View Video