Summary

تتبع الفيروسية من الدوائر العصبية تعريف وراثيا

Published: October 17, 2012
doi:

Summary

ووصف طريقة تتبع الخلايا العصبية مرتبطة synaptically. نستخدم TVA خصوصية خلية المنبع لبحث ما إذا كان السكان الخلية ذات الاهتمام يتلقى مساهمات من أنواع الخلايا متشابك تعريف وراثيا.

Abstract

الطرق التقليدية لدراسة الدوائر العصبية هي الإنتاجية منخفضة نسبيا. الفيروسات عبر التشابك، وخاصة داء الكلب الكاذب (PRV) وفيروس داء الكلب (RABV)، وفيروس التهاب الفم الحويصلي مؤخرا (VSV)، لدراسة الدوائر، تزداد شعبية. هذه الأساليب أعلى إنتاجية استخدام الفيروسات التي تنقل بين الخلايا العصبية في الاتجاه إما تقدمي أو رجعي.

مؤخرا، تم وضع RABV تعديل لتتبع أحادي المشبك الوراء. (الشكل 1A). في هذه الطريقة، يتم حذف بروتين سكري (G) الجينات من الجينوم الفيروسي، والامدادات فقط في الخلايا العصبية المستهدفة. ويتحقق خصوصية العدوى عن طريق استبدال لG خيالية، ويتألف من مجال خارج الخلية من بروتين سكري ASLV A-والمجال حشوية من RABV-G (A RG /)، لG-RABV العادية 1. هذا G خيالية يصيب الخلايا على وجه التحديد التعبير عن مستقبلات TVA 1. يمكن للترميز الجين TVA كان دelivered بطرق مختلفة 2-8. بعد RABV-G إصابة الخلايا العصبيه TVA، معربا عن، يمكن أن يحيل إلى RABV الخلايا العصبية، وغيرها من توصيل synaptically في اتجاه الوراء حسب طبيعة G الخاصة الذي شارك في تسليمها مع مستقبلات TVA. تصف هذه التقنية عدد كبير نسبيا من المدخلات (5-10٪) 2 الصعود إلى نوع من الخلايا المحددة، وتوفير عينات من كل من المدخلات على نوع الخلية كاتب محدد.

ونحن مؤخرا تعديل هذه التقنية لاستخدام VSV باعتباره التتبع عبر التشابك 9. VSV ديها العديد من المزايا، بما في ذلك سرعة التعبير الجيني. نحن هنا التفاصيل جديد الفيروسية نظام تتبع باستخدام VSV مفيدة لسبر الدارات الدقيقة للقرار زيادة. في حين أن الاستراتيجيات التي نشرتها الأصلي يكرشام وآخرون (4) وبيير وآخرون .. 9 وضع العلامات تصريح من أي الخلايا العصبية التي يصاب المشروع على TVA-في البداية، معربا عن خلايا، وهنا تم تصميم VSV أن يحيل فقط إلى TVA-معربا عن الخلايا (1B الشكل). وpseudotyped الفيروس لاول مرة مع RABV-G للسماح إصابة الخلايا العصبية المصب من TVA، معربا عن الخلايا العصبية. بعد اصابة هذه الفئة من السكان الأولى من الخلايا، الذي صدر الفيروس يمكن أن تصيب فقط TVA، معربا عن الخلايا. لأنه يقتصر انتشار عبر التشابك الفيروسية لTVA، معربا عن الخلايا، ووجود عدم وجود اتصال من أنواع الخلايا المحددة يتم استكشافها مع ارتفاع القرار. يظهر مخطط تدفق تجريبية لهذه التجارب في الشكل 2. هنا نعرض نموذج الدائرة، وذلك من الانتقائية الاتجاه في شبكية العين الماوس. ندرس التواصل بين الخلايا عديم الاستطالات النجمي (الحويصلات) إلى خلايا الشبكية العقدة (RGCs).

Protocol

1. صنع الفيروسات من [كدنا]: استرداد VSV من [كدنا] باستخدام الوقس-T7 نظام 10 تقسيم يوم واحد قبل التجربة، BsrT7 الخلايا في صحن 60 ملم تحتوي على DMEM + 10٪ FBS. خلايا البذور في صحن 2E6. وتستمد BsrT7 الخلايا من BHK21، أو الطفل الهامستر الكل?…

Discussion

باستخدام الفيروسات لدراسة الدوائر العصبية هي طريقة إنتاجية عالية نسبيا من الخلايا العصبية تحليل المتصلة. ومع ذلك، على حد سواء توليد VSV وvirions RABV ليست تافهة. على الرغم من أن يتم توفير بروتوكول المذكورة أعلاه لإنقاذ الفيروس من [كدنا]، فإنه لا يزال حدثا المنخفضة الاحتمال….

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

نود أن نعترف شون ويلان للحصول على مساعدة إنقاذ المتغيرات VSV المؤتلف، وديدم بيدا وChrenek ريان للمساعدة التقنية. وأيد هذا العمل من قبل HHMI (CLC)، و# NS068012-01 (KTB).

Materials

Reagent Company Catalogue number  
      Tissue Culture
Baby Hamster Kidney (BSRT7) cells available upon request    
vaccinia (vTF7-3) available upon request    
pN, pP, pl plasmids available upon request    
Calcium Chloride Sigma C1016  
Magnesium Chloride Sigma M8266  
HEK 293T cells Open Biosystems HCL4517  
60 mm TC-Treated Culture Dish Corning 430166  
75 cm2 Rectangular Canted Neck Cell Culture Flask with Vent Cap Corning 430641  
Media : DMEM (Dulbecco’s Modified Eagle Medium) Invitrogen 12491-015  
1 M HEPES pH 7.4 Gibo 15630-080  
FBS: Fetal Bovine Serum Gibco 10437-028  
PKS Invitrogen 15140-163  
Lipofectamine 2,000 Transfection Reagent Invitrogen 11668-019  
Syringe: 5 ml Luer-Lock syringe Sigma Z248010-1PAK  
Syringe Filters Nalgene 190-2520  
PEI: High Potency Linear PEI Polysciences 23966  
      Viral Centrifugation
Corning 150 ml Tube Top Vacuum Filter System, 0.45 μm Pore Corning 430314  
Thinwall, Ultra-Clear, 38.5 ml, 25 x 89 mm ultracentrifuge tubes Beckman-Coulter 344058  
Ultracentrifuge Beckman-Coulter optima XL-80K  
SW28 Ultracentrifuge rotor Beckman-Coulter 342207  
      Mouse Injection
Capillary micropipets Drummond 5-000-2005  
Stereotax Narishige SR-5M  
Micromanipulator Narishige SM-15  
Ump injector World Precision Instruments Sys-Micro4  
Four channel microcontroller World Precision Instruments UMP3  
M.TXB Bench Motor with C.EMX-1 Dial Control, 115 Volt Foredom M.TXB-EM  
H.10 Handpiece, Quick Change Foredom H.10  
Step Drill, 0.5 mm Foredom A-58005P  
Microelectrode holder World Precision Instruments MEH2S  
Ketamine Henry Schein 995-2949  
Xylazine Henry Schein 4015809TV  
Buprenorphine Henry Schein 1118217  
1 ml syringe Becton-Dickinson 309628  
30 gauge injection needle Becton-Dickinson 305106  
Protective Ophthalmic Ointment Doctors Foster and Smith 9N-014748  
Ethanol Sigma 493511  
Iodine Sigma PVP1  
      Surgery and Dissection tools
Scissors Fine Science Tools 91402-12  
Standard Forceps Fine Science Tools 11000-12  
Fine Forceps Fine Science Tools 11255-20  
Vannas spring scissors Fine Science Tools 15000-00  
Scalpel handle Fine Science Tools 10003-12  
Scalpel blades Fine Science Tools 10015-00  
Sutures Robbins Instruments 20.SK640  
      Dissection and antibody staining
paraformaldehyde Sigma P6148  
Phosphate Buffered Saline Sigma P4417  
Triton X-100 Sigma T9284  
Donkey Serum Jackson Immunoresearch 017-000-121  
      Antibodies
Antibodies millipore AB144P  
Anti-gfp Abcam ab13970  
Donkey anti-chicken Dylight 488 Jackson immunoresearch 703-545-155  
Donkey anti-chicken Alexa Fluor 647 Jackson immunoresearch 705-605-147  
DAPI Invitrogen D1306  
      Tissue mounting
Superfrost plus microscope slides Fisher 12-550-100  
Cover glass 22 x 22, 0 thickness Electron Microscopy Sciences 72198-10  
Silicone elastomer Rogers Corp HT-6220  
Clear nail polish Electron Microscopy Sciences 72180  
Prolong Gold antifade reagent Invitrogen P36930  

References

  1. Wickersham, I. R. Monosynaptic restriction of transsynaptic tracing from single, genetically targeted neurons. Neuron. 53, 639-647 (2007).
  2. Marshel, J. H., Mori, T., Nielsen, K. J., Callaway, E. M. Targeting single neuronal networks for gene expression and cell labeling in vivo. Neuron. 67, 562-574 (2010).
  3. Wall, N. R., Wickersham, I. R., Cetin, A., De La Parra, M., Callaway, E. M. Monosynaptic circuit tracing in vivo through Cre-dependent targeting and complementation of modified rabies virus. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 107, 21848-21853 (2010).
  4. Wickersham, I. R. Monosynaptic restriction of transsynaptic tracing from single, genetically targeted neurons. Neuron. 53, 639-647 (2007).
  5. Yonehara, K. Spatially asymmetric reorganization of inhibition establishes a motion-sensitive circuit. Nature. 469, 407-410 (2011).
  6. Stepien, A. E., Tripodi, M., Arber, S. Monosynaptic rabies virus reveals premotor network organization and synaptic specificity of cholinergic partition cells. Neuron. 68, 456-472 (2010).
  7. Beier, K. T., Samson, M. E. S., Matsuda, T., Cepko, C. L. Conditional expression of the TVA receptor allows clonal analysis of descendents from Cre-expressing progenitor cells. Dev. Biol. 353, 309-320 (2011).
  8. Seidler, B. A Cre-loxP-based mouse model for conditional somatic gene expression and knockdown in vivo by using avian retroviral vectors. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 105, 10137-10142 (2008).
  9. Beier, K. T. Anterograde or retrograde transsynaptic labeling of CNS neurons with vesicular stomatitis virus vectors. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 108, 15414-15419 (2011).
  10. Whelan, S. P., Ball, L. A., Barr, J. N., Wertz, G. T. Efficient recovery of infectious vesicular stomatitis virus entirely from cDNA clones. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 92, 8388-8392 (1995).
  11. Fuerst, T. R., Niles, E. G., Studier, F. W., Moss, B. Eukaryotic Transient-Expression System Based on Recombinant Vaccinia Virus That Synthesizes Bacteriophage T7 RNA Polymerase. PNAS. 83, 8122-8126 (1986).
  12. Young, J. A., Bates, P., Varmus, H. E. Isolation of a chicken gene that confers susceptibility to infection by subgroup A avian leukosis and sarcoma viruses. J. Virol. 67, 1811-1816 (1993).
  13. Madisen, L. A robust and high-throughput Cre reporting and characterization system for the whole mouse brain. Nat Neurosci. 13, 133-140 (2010).
  14. Franklin, K., Paxinos, G. . The Mouse Brain in Stereotaxic Coordinates. , (1997).
  15. van den Pol, A. N. Viral strategies for studying the brain, including a replication-restricted self-amplifying delta-G vesicular stomatis virus that rapidly expresses transgenes in brain and can generate a multicolor golgi-like expression. J. Comp. Neurol. 516, 456-481 (2009).
check_url/4253?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Beier, K., Cepko, C. Viral Tracing of Genetically Defined Neural Circuitry. J. Vis. Exp. (68), e4253, doi:10.3791/4253 (2012).

View Video