माउस फेफड़े इंटुबैषेण का एक सरल तरीका
Summary
इस कागज फुफ्फुसीय समारोह माप या फेफड़े टपकाना, कि चूहों उबरने के लिए और बाद में समय में अध्ययन की अनुमति देता है के लिए चूहों intubating की striaghforward और कुशल विधि का वर्णन करता है. प्रक्रिया एक सस्ती fiberoptic प्रकाश स्रोत है कि सीधे ट्रेकिआ illuminates शामिल है.
Abstract
फुफ्फुसीय समारोह मापन के लिए चूहों नली लगाना एक साधारण प्रक्रिया सीमित संख्या या महंगा जानवर के साथ अनुदैर्ध्य अध्ययन में कई लाभ होगा. कारण है कि यह अधिक नियमित नहीं किया जाता है में से एक यह है कि यह अपेक्षाकृत मुश्किल के बावजूद वहाँ कई प्रकाशित अध्ययन किया जा रहा है कि इसे प्राप्त करने के तरीके का वर्णन है. इस पत्र में हम एक प्रक्रिया है कि प्रमुख इस इंटुबैषेण के साथ जुड़े बाधाओं में से एक, एक इंटुबैषेण की पूरे समय के दौरान ट्रेकिआ visualizing की समाप्त प्रदर्शित करता है. दृष्टिकोण एक 0.5 मिमी fiberoptic प्रकाश स्रोत कि एक माउस ट्रेकिआ में इंटुबैषेण प्रवेशनी प्रत्यक्ष introducer के रूप में कार्य करता है का उपयोग करता है. हम बताते हैं कि यह संभव है कि इस प्रक्रिया का उपयोग करने के लिए कम से कम कई हफ्तों के एक समय के पाठ्यक्रम पर व्यक्तिगत चूहों में फेफड़ों के यांत्रिकी उपाय. तकनीक अपेक्षाकृत कम खर्च और विशेषज्ञता के साथ स्थापित कर सकते हैं, और यह नियमित रूप से अपेक्षाकृत छोटे से प्रशिक्षण के साथ पूरा किया जा सकता है. यह पहुंच चाहिएयह संभव है किसी भी प्रयोगशाला नियमित बाहर इस इंटुबैषेण ले जाने के लिए, जिससे व्यक्तिगत चूहों में अनुदैर्ध्य अध्ययन की अनुमति है, जिससे जरूरत चूहों की संख्या कम करने और अपने स्वयं के नियंत्रण के रूप में प्रत्येक माउस का उपयोग करके सांख्यिकीय शक्ति बढ़ाने के लिए ए.
Introduction
1999 में, ब्राउन एट अल. प्रकाशित एक कागज माउस 1 फेफड़ों की इंटुबैषेण के लिए एक विधि का वर्णन है. एक ऐसी तकनीक अनुदैर्ध्य 2 अध्ययन में व्यक्तिगत चूहों में दोहराने फुफ्फुसीय समारोह या ब्रोन्कोएल्वियोलर lavage करने में काफी उपयोगिता है. कि मूल पत्र के बाद से, वहाँ कई अन्य कागजात है कि अलग अलग दृष्टिकोण माउस 3-9 इंटुबैषेण वर्णित किया गया है. जबकि इन सभी तरीकों का सफलतापूर्वक इस्तेमाल किया जा सकता है, वे आम तौर पर काफी प्रशिक्षण या लागत की आवश्यकता होती है. ऐसे इंटुबैषेण साथ मुख्य मुद्दों में से एक यह है कि ट्रेकिआ लंबित प्रविष्टि इंटुबैषेण प्रवेशनी दृष्टिकोण के रूप में nears ही प्रवेशनी, प्रकाश और इसलिए जहां यह जाने की जरूरत के दृश्य को रोकता है. इस प्रकार, प्रविष्टि सबसे महत्वपूर्ण समय में अंधा हो जाता है. हम इस पत्र में बताएंगे कि कैसे आसानी से और सस्ते में इस दृश्य की समस्या को खत्म करने के लिए, जिससे अपेक्षाकृत छोटे से प्रशिक्षण या के साथ सफल इंटुबैषेण सुनिश्चित करनेअनुभव.
Protocol
Representative Results
Discussion
यहाँ वर्णित प्रक्रिया के कई फायदे हैं. सबसे पहले उपकरण सरल और अपेक्षाकृत सस्ती है .. तंत्र के निर्माण में किसी भी विशेष उपकरण या महंगे उपकरण की आवश्यकता नहीं है. एक कैथेटर का उपयोग का परिचय भी है कि प्रका?…
Disclosures
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
HL 10,342 NIH द्वारा समर्थित है.
Materials
| Material | Company | Catalog # | Comment |
| Intubation cannula | BD Insylte, Sparks, MD or Jelco Optiva, Carlsbad, CA | 1-in.-long, 20-gauge intravenous (IV) catheter | |
| Fiber-optic cable | Edmund Optics, Barrington, NJ | #NT02-542 | Approximately 2-ft length of 0.5-mm optical fiber (Communication grade plastic fiber). The edge of the fiber end that is inserted into the trachea should be gently rounded by holding the fiber ≈2 cm from the end and then making small circles while dragging the tip for a few seconds on 1,000-grit emory paper. |
| Light Source | Volpi | NCL-150 | Although we use a 150-W halogen light source, any equivalent light source, even with much lower wattage can be used. |
| Silicone rubber stopper | A #1 silicone rubber stopper fits the light source used in this demonstration. Different light sources may require a different size. | ||
| Small silicone rubber tube | Cole-Palmer | EW-96410-13 | A ≈1.5 cm piece of silicone rubber tubing (0.8 inner diameter, 4 mm outer diameter) |
| Angled support stand | Ours is constucted from plexiglass, but any material to which a thread or wire can be affixed to hold the mouse at an almost vertical angle can be used. |
References
- Brown, R. H., Walters, D. M., Greenberg, R. S., Mitzner, W. A method of endotracheal intubation and pulmonary functional assessment for repeated studies in mice. J. Appl. Physiol. 87, 2362-2365 (1999).
- Walters, D. M., Wills-Karp, M., Mitzner, W. Assessment of cellular profile and lung function with repeated bronchoalveolar lavage in individual mice. Physiol. Genomics. 2, 29-36 (2000).
- Rivera, B., Miller, S., Brown, E., Price, R. A novel method for endotracheal intubation of mice and rats used in imaging studies. Contemporary Topics in Laboratory Animal Science / American Association for Laboratory Animal Science. 44, 52-55 (2005).
- Hamacher, J., et al. Microscopic wire guide-based orotracheal mouse intubation: description, evaluation and comparison with transillumination. Laboratory Animals. 42, 222-230 (2008).
- Spoelstra, E. N., et al. A novel and simple method for endotracheal intubation of mice. Laboratory Animals. 41, 128-135 (2007).
- Zhao, X., et al. A technique for retrograde intubation in mice. Lab Animal. 35, 39-42 (2006).
- Vergari, A., et al. A new method of orotracheal intubation in mice. European Review for Medical and Pharmacological Sciences. 8, 103-106 (2004).
- Vergari, A., Polito, A., Musumeci, M., Palazzesi, S., Marano, G. Video-assisted orotracheal intubation in mice. Laboratory Animals. 37, 204-206 (2003).
- Hastings, R. H., Summers-Torres, D. Direct Laryngoscopy in Mice. Contemporary Topics in Laboratory Animal Science / American Association for Laboratory Animal Science. 38, 33-35 (1999).
- MacDonald, K. D., Chang, H. Y., Mitzner, W. An improved simple method of mouse lung intubation. J. Appl. Physiol. 106, 984-987 (2009).
- Ewart, S. L., Levitt, R. C., Mitzner, W. Respiratory system mechanics in mice measured by end-inflation occlusion. Journal of Applied Physiology. 79, 560-566 (1995).
- MacDonald, K. D., McKenzie, K. R., Mitzner, W., Zeitlin, P. L. Lung Mechanics in Heterozygous CF Mice after Repeated LPS Dosing. Am. J. Respir. Crit. Care Med. 175 (4), A930 (2007).
