Summary

הקפאה בלחץ גבוהה טנדם ומהיר הקפאת חילוף של צמח רקמות למיקרוסקופים אלקטרונים חודרים

Published: October 13, 2014
doi:

Summary

Obtaining high-quality transmission electron microscopy images is challenging, especially in the case of plant cells, which have abundant large water-filled vacuoles and aerated spaces. Tandem high-pressure freezing and quick freeze substitution greatly reduce preparation time of plant samples for TEM while producing samples with excellent ultrastructural preservation.

Abstract

מאז מיקרוסקופ האלקטרונים ההילוכים 1940s (TEM) היה לספק ביולוגים עם תמונות רזולוציה גבוהה במיוחד של חומרים ביולוגיים. ובכל זאת, בגלל פרוטוקולים מייגע וגוזל זמן שגם דורשים ניסיון בהכנת דגימות נטול חפץ, TEM אינו נחשב טכניקה ידידותית למשתמש. הכנת מדגם מסורתית לTEM משמשת fixatives הכימי לשימור מבנים הסלולר. הקפאה בלחץ גבוהה היא cryofixation של דגימות ביולוגיות תחת לחצים גבוהים כדי לייצר שיעורי קירור מהירים מאוד, ובכך מגביל את היווצרות קרח, שהוא מזיק לשלמות ultrastructure הסלולרי. הקפאה בלחץ גבוהה ותחלופת הקפאה כרגע שיטות בחירה להפקת המורפולוגיה באיכות הגבוהה ביותר בסעיפי שרף עבור TEM. שיטות אלו למזער את החפצים קשורים בדרך כלל עם עיבוד קונבנציונלי לTEM של חלקים דקים. לאחר cryofixation המים קפואים במדגם מוחלפים בנוזלממס אורגני בטמפרטורות נמוכות, תהליך הנקרא חילוף הקפאה. החלפת הקפאה מבוצעת בדרך כלל על פני כמה ימים בציוד ייעודי, יקר. חידוש האחרון מאפשר לתהליך להסתיים בשלוש שעות, במקום שני הימים הרגילים. זה ואחריו בדרך כלל על ידי עוד כמה ימים של הכנת מדגם הכוללת חדירה והטבעה בשרף אפוקסי לפני חתך. כאן אנו מציגים פרוטוקול שילוב הקפאה בלחץ גבוה ותחלופת הקפאה מהירה המאפשרת קיבוע מדגם צמח כדי להיות מושלם בתוך שעות. הפרוטוקול יכול בקלות להיות מותאם לעבודה עם רקמות או אורגניזמים אחרים. רקמות צמח הן בעלי עניין מיוחד בגלל הנוכחות של חללי סודה ווקואולות מלא מים המונעים הקפאת קרח חינם של מים. בנוסף, התהליך של קיבוע כימי הנו ארוך במיוחד בצמחים בשל קירות תא המעכבים את החדירה של הכימיקלים לעמוקים בתוך הרקמות. רקמות צמח ולכן particularly מאתגר, אך פרוטוקול זה הוא אמין ומייצר דגימות באיכות הגבוהה ביותר.

Introduction

הידע של ultrastructure התא שלנו מגיע בעיקר ממיקרוסקופ אלקטרונים, אשר יכולה לפתור את הפרטים בטווח של ננומטרים ספורים 1. למרות היותו כל כך חזק בTEM רזולוציה אינו נחשב ידידותי למשתמש, כהכנת מדגם דורשת זמן רב ופרוטוקולים מייגע, ודורשת מומחיות כלשהי מהרופא. קיבעון מסורתי של דגימות יש בשילוב השימוש באלדהידים וtetroxide אוסמיום לפני עיבוד נוסף הכולל התייבשות, הטבעה בשרף ולאחר מכן חתך לייצר חלקים דקים במיוחד שלאחר מכן מוכתמים במתכות כבדות. עם זאת, ידוע כי קיבעון כימי יכול לייצר חפצים כוללים צבירת חלבון ואובדן של שומני 1, ושינויים בממברנות שסופו של דבר משפיעים על מספר תאים סלולריים 2. ממצאים אלה מיוחסים במידה רבה לקצב האיטי של קיבעון והתייבשות בטמפרטורת חדר 3, 4, 5.

<p class="Jove_content"> Cryofixation על ידי לחץ גבוה הקפאה (HPF) נמנע מרוב החפצים שנגרמו על ידי קיבוע כימי. עיקרון cryofixation הוא שזה מוריד את נקודת הקיפאון של מים על ידי 20 מעלות, מאיטה את ההתגרענות והצמיחה של גבישי קרח ומגביר את הצמיגות של מים בדגימה ביולוגית, כך שמרכיבים הסלולר בעצם הם משותקים 6, 7. HPF יורד של מדגם טמפרטורה לזו של חנקן נוזלי, בלחץ גבוה מאוד (210 מגפ"ס או 2,100 בר) באלפיות שני. כאשר נעשה כראוי HPF מונע היווצרות של גבישי קרח גדולים שיכול לגרום נזק גדול לultrastructure תא. HPF ניתן להשתמש כדי לתקן את הדגימות של 100-200 עובי מיקרומטר בריכוזים טיפוסיים של מומסים ביולוגיים 7. ישנם מספר רב של ביקורות על הפיזיקה ועקרונות שבבסיס HPF, למשל 1, 7, 8.

לאחר HPF, דגימות מודגרת בטמפרטורה נמוכה (-78.5 ° C ל -90 &# 176; C) בנוכחות fixatives הנוזל האורגני ממס המכיל חומר כימי כמו tetroxide אוסמיום, בדרך כלל לכמה ימים. בטמפרטורה נמוכה זו, המים במדגם הוא הוחלף על ידי הממס האורגני, בדרך כלל אצטון או מתנול 1, 9. לפיכך, תהליך זה נקרא החלפת הקפאה (FS). המדגם אז חימם בהדרגה ובמשך הזמן הזה הוא קבוע, בדרך כלל עם tetroxide אוסמיום וuranyl אצטט 9. יש crosslinking בטמפרטורות נמוכות היתרון של תיקון מולקולות שהם משותקים 1. FS לכן מייצר דגימות באיכות מעולה בהשוואה לאלו שנקבעו על ידי קיבוע כימי קונבנציונלי בטמפרטורת חדר, במיוחד שזה גורם לשימור ultrastructural משופר, שימור טוב יותר של antigenicity והפחית את ההפסד של רכיבים מאוגדים סלולריים 10, 11.

רוב FS מתבצע על פני תקופות זמן ארוכות, בדרך כלל עד מספר ימים. הדבר נכון במיוחד Truדואר עבור דגימות צמחים 12, 13, 14. פרוטוקול האחרון שפותח על ידי מקדונלד 'ס והווב מקטין באופן משמעותי את הזמן לFS מכמה ימים לכמה שעות 15. בהליך שלהם מהיר תחלופה הקפאה (QFS), FS מתבצע מעל 3 שעות, ואילו בFS סופר מהיר דגימות (SQFS) מעובדות ב90 דקות. האיכות של דגימות המיוצרות על ידי שיטות אלה היא דומה לאלה שהניבו על ידי פרוטוקולי FS מסורתיים. אנחנו אימצנו את פרוטוקול QFS לעיבוד במורד הזרם של דגימות צמח לאחר HPF. זה הוכיח עצמו כדי להציל את לא רק זמן אלא גם כסף, כQFS וSQFS להשתמש בציוד מעבדה משותף במקום מכונות FS הזמינות מסחרי יקרות.

רקמות צמח הן לעתים קרובות מאוד מאתגרות כדי להתכונן לTEM. בממוצע, תאי צמח הם גדולים יותר מאשר כל אחד תאי חיידקים או בעלי חיים. הנוכחות של ציפורן הידרופובי שעווה, קירות תא עבים, וקואולות מלא מים גדולים המכילה חומצות, hydrolases אורגני ופנוליות גompounds שעשוי לכבוש עד 90% מכלל נפח התא 16, ואת הנוכחות של חללי סודה קשה מקטינה את מוליכות חום של המערכת 17. יתר על כן, במקרה של צמחים, עובי המדגם כמעט תמיד עולה על 20 מיקרומטר, המגבלה לשימוש בקיבוע כימי. בעוביים אלה, מוליכות החום הנמוכה של מים מונעים שיעור הקפאה יותר מ -10000 ° C / sec במרכז המדגם. השיעור שנדרש כדי למנוע היווצרות מזיקה משושה קרח (גבישי קרח עם צפיפות נמוכה יותר וגדולות יותר מ10 עד 15 ננומטר) 8. יחד, אתגרי הווה אלה לשתי ההקפאה הנכונה של המדגם וFS שלאחר מכן. יחד עם זאת, cryofixation היא השיטה הטובה ביותר לתיקון דגימות צמח. הנה פרוטוקול לHPF-QFS של דגימות רקמת צמח מוצג. הוא מתמקד בthaliana ארבידופסיס מיני מודל, אלא גם נוצל בעבר עם benthamiana Nicotiana. התוצאות האופייניות להוכיח כי HPF-QFS מייצרת samples באיכות דומה לHPF-FS המסורתי בשבריר של הזמן. עם התאמות נכונים, פרוטוקול זה יכול לשמש גם עבור דגימות ביולוגיות עבות יחסית אחרות.

Protocol

הערה: הליך QFS דורש טיפול קיצוני וזהירות על ידי המשתמש ואנו מדגישים אמצעי בטיחות אלה כאן כהתראות והערות היכן שאפשר. 1.Preparation לHPF הפעלה לפני שיתחיל בהכנת מדגם, להפעיל את המקפיא בלחץ גב…

Representative Results

תוצאות המוצגות להלן התקבלו באמצעות Wohlwend קומפקטי 02 לHPF (איור 1 א). אחד יתרונות עיקריים של מכשיר זה הוא הקלות של שימוש בנישאי הדגימה והמחזיקים בו. בעת שימוש במכשירים אחרים, מקדונלד 'ס ממליץ ששני משתמשים צריכים לבצע את הכנת המדגם וHPF, אחד הכנת הדגימות ואילו השני …

Discussion

ההצלחה של הפרוטוקול המובא כאן תלויה במידה רבה על המשתמש. ראשית, נדרשת הכנה מתקדמת, כדי להבטיח כי כל חומרים הדרושים הם זמינים ובכמות מספיקה להשלמת כל ריצת HPF-QFS. שנית, המשתמש חייב לעבוד במהירות, נע מצעד לצעד בצורה יעילה הממזערת טיפול מדגם, ובכך ממזערים את השינויים במדינה…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

החסד ונדיבותו של ד"ר קנט מקדונלד 'ס של אוניברסיטת ברקלי בקליפורניה הם מאוד מוערכים. אנו מודים למבקר אנונימי להצעות מועילות מאוד. המעבדה ברץ-סמית נתמכת על ידי קרנות הזנק מאוניברסיטת טנסי.

Materials

Name of Material/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
Wohlwend HPF Compact 02 High Pressure Freezing Machine Technotrade International, Inc HPF02 With integrated oscilloscope to display freezing and pressure curves; PC (not included) is required for display  of freezing parameters
Holder for DN 3 x 0.5 mm aluminum apecimen carriers Technotrade International, Inc 290
Specimen carriers, P=1000, DN 3 x 0.5 aluminum, type A Technotrade International, Inc 241-200
Specimen carriers, P=1000, DN 3 x 0.5 aluminum, type B Technotrade International, Inc 242-200
Storage Dewar 20.5 L, MVE Millennium 2000 XC20 Chart
Baker's yeast The older the better, to avoid excessive gas (CO2) production
Tooth picks
Thermocouple data logger EL-USB-TC OMEGA Engineering Inc. OM-EL-USB-TC  Replacement battery purchased separately
Temperature probe Electron Microscopy Sciences 34505
Heater block 12/13 mm
Rotary shaker Fisher Scientific 11-402-10
Leaf punch – Harris Uni-core 2.00 Ted-Pella Inc. 15076
Pink dental wax Electron Microscopy Sciences 72660
Cryogenic vials 2 mL Electron Microscopy Sciences 61802-02
Methanol
Blow dryer
Dry ice
Liquid nitrogen
Acetone
Forceps Several pairs

References

  1. Studer, D., Humbel, B. M., Chiquet, M. Electron microscopy of high pressure frozen samples bridging the gap between cellular ultrastructure and atomic resolution. Histochemistry and cell biology. 130, 877-889 (2008).
  2. Studer, D., Hennecke, H., Muller, M. High-pressure freezing of soybean nodules leads to an improved preservation of ultrastructure. Planta. 188, 155-163 (1992).
  3. Bowers, B. a. M. M., Crang, R. F. E., Klomparens, K. L. Ch 2. Artifacts in Biological Electron Microscopy. 2, 13-42 (1988).
  4. Mollenhauer, H. H., Crang, R. F. E., Klomparens, K. L. Ch 3. Artifacts in Biological Electron Microscopy. , 43-64 (1988).
  5. Kiss, J. Z., Giddings, T. H., Staehelin, L. A., Sack, F. D. Comparison of the ultrastructure of conventionally fixed and high pressure frozen/freeze substituted root tips of Nicotiana and Arabidopsis. Protoplasma. 157, 64-74 (1990).
  6. Moor, H., Steinbrecht, R. A., Zierold, K. . Cryotechniques in Biological Electron Microscopy. , 175-191 (1987).
  7. Vanhecke, D., Graber, W., Studer, D. Close-to-native ultrastructural preservation by high pressure freezing. Methods in cell biology. 88, 151-164 (2008).
  8. Dahl, R., Staehelin, L. A. High-pressure freezing for the preservation of biological structure theory and practice. Journal of electron microscopy. 13, 165-174 (1989).
  9. McDonald, K. High-pressure freezing for preservation of high resolution fine structure and antigenicity for immunolabeling. Methods in molecular biology. 117, 77-97 (1999).
  10. Hippe-Sanwald, S. Impact of freeze substitution on biological electron microscopy. Microscopy research and technique. 24, 400-422 (1993).
  11. Kiss, J. Z., McDonald, K. Electron microscopy immunocytochemistry following cryofixation and freeze substitution. Methods in cell biology. 37, 311-341 (1993).
  12. Segui-Simarro, J. M., Austin 2nd, J. R., White, E. A., Staehelin, L. A. Electron tomographic analysis of somatic cell plate formation in meristematic cells of Arabidopsis preserved by high-pressure freezing. The Plant cell. 16, 836-856 (2004).
  13. Kobayashi, K., Otegui, M. S., Krishnakumar, S., Mindrinos, M., Zambryski, P. INCREASED SIZE EXCLUSION LIMIT encodes a putative DEVH box RNA helicase involved in plasmodesmata function during Arabidopsis embryogenesis. The Plant cell. 19, 1885-1897 (2007).
  14. Austin, J. R., 2nd, L. A., Staehelin, Three-dimensional architecture of grana and stroma thylakoids of higher plants as determined by electron tomography. Plant physiology. 155, 1601-1611 (2011).
  15. McDonald, K. L., Webb, R. I. Freeze substitution in 3 hours or less. Journal of microscopy. 243, 227-233 (2011).
  16. Taiz, L. The Plant Vacuole. The Journal of experimental biology. , 172-1113 (1992).
  17. Wilson, S. M., Bacic, A. Preparation of plant cells for transmission electron microscopy to optimize immunogold labeling of carbohydrate and protein epitopes. Nature protocols. 7, 1716-1727 (2012).
  18. Ding, B., Turgeon, R., Parthasarathy, M. V. Substructure of freeze-substituted plasmodesmata. Protoplasma. 169, 28-41 (1992).
  19. McDonald, K. L. Rapid Embedding Methods into Epoxy and LR White Resins for Morphological and Immunological Analysis of Cryofixed Biological Specimens. Microscopy and microanalysis. 20, 152-163 (2014).
  20. McDonald, K. L., Auer, M. High-pressure freezing, cellular tomography, and structural cell biology. BioTechniques. 41, 137, 139-141 (2006).
  21. Spiegelhalter, C., et al. From dynamic live cell imaging to 3D ultrastructure novel integrated methods for high pressure freezing and correlative light-electron microscopy. PloS one. 5, e9014 (2010).
  22. McDonald, K. L. A review of high-pressure freezing preparation techniques for correlative light and electron microscopy of the same cells and tissues. Journal of microscopy. 235, 273-281 (2009).
check_url/51844?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Bobik, K., Dunlap, J. R., Burch-Smith, T. M. Tandem High-pressure Freezing and Quick Freeze Substitution of Plant Tissues for Transmission Electron Microscopy. J. Vis. Exp. (92), e51844, doi:10.3791/51844 (2014).

View Video