Summary

Konstruktion av definierade mänskliga Engineered hjärtvävnader att studera mekanismer för Cardiac Cellterapi

Published: March 01, 2016
doi:

Summary

This manuscript describes the creation of defined engineered cardiac tissues using surface marker expression and cell sorting. The defined tissues can then be used in a multi-tissue bioreactor to investigate mechanisms of cardiac cell therapy in order to provide a functional, yet controlled, model system of the human heart.

Abstract

Human cardiac tissue engineering can fundamentally impact therapeutic discovery through the development of new species-specific screening systems that replicate the biofidelity of three-dimensional native human myocardium, while also enabling a controlled level of biological complexity, and allowing non-destructive longitudinal monitoring of tissue contractile function. Initially, human engineered cardiac tissues (hECT) were created using the entire cell population obtained from directed differentiation of human pluripotent stem cells, which typically yielded less than 50% cardiomyocytes. However, to create reliable predictive models of human myocardium, and to elucidate mechanisms of heterocellular interaction, it is essential to accurately control the biological composition in engineered tissues.

To address this limitation, we utilize live cell sorting for the cardiac surface marker SIRPα and the fibroblast marker CD90 to create tissues containing a 3:1 ratio of these cell types, respectively, that are then mixed together and added to a collagen-based matrix solution. Resulting hECTs are, thus, completely defined in both their cellular and extracellular matrix composition.

Here we describe the construction of defined hECTs as a model system to understand mechanisms of cell-cell interactions in cell therapies, using an example of human bone marrow-derived mesenchymal stem cells (hMSC) that are currently being used in human clinical trials. The defined tissue composition is imperative to understand how the hMSCs may be interacting with the endogenous cardiac cell types to enhance tissue function. A bioreactor system is also described that simultaneously cultures six hECTs in parallel, permitting more efficient use of the cells after sorting.

Introduction

Hjärtvävnad engineering har avancerat kraftigt under det senaste decenniet, med flera grupper publicera resultaten av fullt fungerande, slå vävnader tillverkad av både murina cardiomyocytes 1-6 och, på senare tid, mänskliga stamceller härledda hjärtmyocyter 7-12. Hjärtvävnadsteknik fält drivs av två primära och väsentligen oberoende mål: 1) att utveckla exogena transplantat som kan transplanteras in inte hjärtan för att förbättra funktionen 4-6; och 2) att utveckla in vitro-modeller för att studera fysiologi och sjukdom, eller som screeningverktyg för terapeutisk utveckling 2,7.

Tredimensionell (3-D) cellodling anses nödvändig för att utveckla nästa generations analysverktyg, som 3-D matris återspeglar en mer naturlig hjärtmikro än traditionella 2-D monolager cellodling; faktiskt vissa aspekter av cellbiologi är fundamentalt olika i 2-D vs 3-D kulturer 13,14 </sup>. Dessutom är manipulerade hjärtvävnader tillverkade av helt definierade komponenter: en extracellulär matris, och en cellpopulation. För traditionella manipulerade humana hjärtvävnader, medan den extracellulära matriskompositionen (vanligen fibrin 9 eller kollagen 7,8,10) är strikt kontrollerad, ingångscellkomposition är mindre väl definierad, med hela blandningen av celler från en riktad hjärt differentiering av antingen embryonala stamceller (ESC 7,9) eller inducerade pluripotenta stamceller (IPSC 10,12) läggs till vävnaderna. Beroende på den specifika cellinjen och effektiviteten i differentieringsprotokoll som används, kan den resulterande andel av kardiomyocyter variera från mindre än 25% till över 90%, den specifika cardiomyocyte fenotyp (dvs ventricular-, atrial- eller pacemaker-liknande) kan också variera, även icke-cardiomyocyte fraktion kan vara mycket heterogen 15,16 och ändra löptiden för den differentierade hjärt myocytes 17.

Senaste hjärtvävnad ingenjörsarbete har försökt att styra ingångs population av celler, med antingen en hjärt reporter human embryonal stamcellslinje 8 eller cellytmarkörer 18 används för att isolera hjärt myocyte komponenten av differentiering. Även initialt en vävnad som består av endast hjärtmyocyter verkar vara den idealiska, är detta i själva verket inte fallet; hECTs som består endast av hjärtmyocyter misslyckas med att kompaktera i funktionella vävnader, med vissa grupper att hitta en 3: 1 förhållande av hjärtmyocyter: fibroblaster som producerar den högsta rycka kraft 8. Genom att använda olika urvals cell metoder, inklusive ytmarkörer för levande cellsortering, är det möjligt att skapa hECTs med definierade cellpopulationer. Medan markörer för icke-hjärt stromaceller har funnits under en längre tid, såsom den förmodade fibroblast markören CD90 19,20, har ytmarkörer av hjärtmuskelceller varit svårareatt identifiera. SIRPα var bland de första hjärt ytmarkörer identifierats för mänskliga hjärtmuskelceller 18 och har visat sig vara mycket selektiva för hjärt härstamning. Nyligen har vi funnit att dubbelsortering för SIRPα + och CD90 celler ger nästan rena kardiomyocyter, med CD90 + populationen som uppvisar en fibroblast-liknande fenotyp (Josowitz, opublicerade observationer). Baserat på dessa insamlade fynd, här beskriver vi skapar hECTs med hjälp av en 3: 1 blandning av SIRPα + / CD90 hjärtmuskelceller och CD90 + fibroblaster.

Förmågan att konstruera en helt definierad human hjärtvävnad är viktigt inte bara för att skapa robusta screeningverktyg, men även för att utveckla modellsystem för att undersöka nya cell- och genbaserade hjärt terapier. I synnerhet många cellterapi för hjärtsvikt, utnyttjar celltyper inklusive mesenkymala stamceller (MSC) 21 </sup>, har hjärt stamceller 22 och benmärgsmononukleära celler 23-25, testats i kliniska prövningar. Även om många av de första resultaten har varit lovande 21,23,25, minskar den initiala fördel ofta över tiden 26-29. En liknande trend har rapporterats i murina konstruerad hjärtvävnader, som visar en betydande funktionell fördel på grund av MSC tillskott, men fördelen är inte upprätt under långtidsodling en. Bakom sub-optimal prestanda är vår begränsade kunskap om de mekanismer som styr cellterapier. En djupare förståelse av hur terapeutiska celler utöva sin välgörande inflytande, liksom eventuella negativa konsekvenser av myocyt-nonmyocyte interaktioner, skulle göra det möjligt att utveckla förbättrade behandlingar ger kliniskt signifikanta och varaktiga fördelar, med minimala biverkningar för patienter med hjärtsvikt.

Här beskriver vi användningen av definierade hECTs att interrogåt mekanismerna för cellbaserad terapi. Den kontrollerade vävnadssammansättning är viktigt att identifiera specifika faktorer som påverkar cardiomyocyte prestanda. Direkt komplettera hECTs med den terapeutiska celltypen av intresse (t.ex. MSC) kan avslöja effekterna på hjärt myocyte prestanda, som vi har visat i rått ECT 1.

Följande flerstegsprotokoll börjar med riktad hjärtstamcellsdifferentiering, följt av tillverkning av flervävnads bioreaktor, och sluta med en beskrivning av vävnads konstruktion och funktionell analys. Våra experiment utförs med hjälp av NIH-godkända H7 mänskliga embryonala stamceller (hESC) linje. Emellertid har följande protokoll också testats med användning av en ytterligare hESC linje och tre inducerade pluripotenta stamceller (hiPSC) linjer med liknande resultat. Vi har funnit att effektiviteten i cardiomyocyte differentiering och framgång i Hect tillverkning kan vara cellinje beroende, särskilt for hiPSC linjer som härrör från enskilda patienter. Genom att följa detta protokoll, två 6-brunnar pläterad med totalt 1,68 miljoner hESCs (140.000 celler per brunn), vilket ger cirka 2,5 miljoner myocyter efter differentiering i 20 dagar och sortering, tillräckligt för att göra sex definierade vävnader.

Protocol

Obs: Utför alla cell manipulationer i aseptiska betingelser med användning av ett HEPA-filtrerad klass II biologiskt säkerhetsskåp och sterilisera alla lösningar genom att filtrera dem genom ett 0,2 pm filter. Utföra vävnads uppbyggnad och funktion testning i antingen samma aseptiska förhållanden eller ett dragskåp med laminärt flöde. 1. Sådd av H7 hESCs i Förberedelse för hjärt differentiering (Dag 1) Förberedelse av Basement Membrane Matrix Tina 150 pl …

Representative Results

För att få hjärtmuskelceller, är en något modifierad version av Boheler och Lian differentieringsmetoder som används 30,31. Det är absolut nödvändigt att differentieringen startar under log-fasen av celltillväxt, men också att utgångspopulationen är tillräckligt konfluent för att erhålla en användbar antal celler efter sortering (ca 75% är optimalt). Typiskt för H7 hESCs, plätering vid en densitet av 140.000 hESCs per brunn i en 6-brunnsskål i väsentlig 8 medier och 5% CO2 ink…

Discussion

Konstruktion av definierade mänskliga tekniska hjärtvävnad (Hect) kan ge en mer konsekvent och tillförlitlig modell av human hjärt myocyte funktion. Kritiskt, är alla cellulära och extracellulära komponenter i systemet är kända och kan manipuleras enligt önskemål, på så sätt avlägsna den confounding påverkan av andra okända celltyper till följd av differentieringsprocessen. Att balansera snabb celltillväxt och hög avkastning, är det att föredra att differentieringen börjar vid 75% sammanflytning …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete stöddes av NIH (1F30HL118923-01A1) till TJC, NIH / NHLBI PEN kontrakt HHSN268201000045C till KDC, forskningsanslaget råd Hongkong TRS T13-706 / 11 (KDC), NIH (R01 HL113499) till BDG, den amerikanska Heart Association (12PRE12060254) till RJ, och forskningsbidrag rådet Hongkong (TBRS, T13-706 / 11) RL Ytterligare finansiering lämnades till TJC av NIH DRB 5T32GM008553-18 och som en praktikplats på NIDCR-tvärvetenskaplig utbildning inom Systems and Develop biologi och fosterskador T32HD075735. Författarna vill också tacksamt erkänna Arthur Autz på The Zahn centrum av staden College of New York för att få hjälp med att bearbeta bioreaktorn och Mamdouh Eldaly för tekniskt stöd. Vi vill också tacka Dr Kenneth Boheler för råd om hjärt differentiering, och Dr Joshua Hare för generöst ger humana mesenkymala stamceller.

Materials

Cell Culture Company Catalog Number Comments
Amphotericin B Sigma-Aldrich A2411 Prepare a 2.5 mg/ml stock in DMSO and filter-sterilize
B27 with Insulin Life Technologies 17505055
B27 without Insulin Life Technologies A1895601
CHIR99021 Stemgent 04-0004 Create 6 μM stock, then aliquot and store at -20 °C.
Essential 8 Media Life Technologies A1517001
H7 Human Embryonic Stem Cells WiCell WA07
hESC Qualified Matrix, Corning Matrigel Corning 354277 Thaw on ice at 4 °C overnight then aliquot 150 μl into separate tubes and store at -20 °C.
IWR-1 Sigma-Aldrich I0161 Create 10 mM stock and aliquot. Store at -20 °C
Neonatal Calf Serum Life Technologies 16010159
Non-enzymatic Dissociation Reagent: Gentle Cell Dissociation Reagent Stem Cell Technologies 7174
Penicillin-Streptomycin Corning 30-002-CI
RPMI 1640 Life Technologies 11875-093 Keep refrigerated
Y-27632 (ROCK Inhibitor) Stemgent 04-0012 Resuspend to a 10 mM stock concentration, aliquot and store at -20 °C.  Avoid freeze thaw cycles.
Cell Sorting Company Catalog Number Comments
4’,6-Diamidino-2-Phenylindole, Dihydrochloride (DAPI) Life Technologies D1306
CD90-FITC BioLegend 328107
Enzymatic Dissociation Reagent: Cell Detach Kit I (0.04 % Trypsin/ 0.03% EDTA, Trypsin neutralization solution and Hanks Buffered Salt Solution)  PromoCell C-41200
Fetal Bovine Serum Atlanta Biologics S11250
SIRPα-PE/Cy7 BioLegend 323807
Tissue Construction Company Catalog Number Comments
0.25% Trypsin/0.1% EDTA Fisher Scientific 25-053-CI Optional: For collection of supplemental cells of interest
10x MEM Sigma-Aldrich M0275-100ML
10X PBS Packets Sigma-Aldrich P3813
Collagen, Bovine Type I Life Technologies A10644-01 Keep on ice
DMEM/F12 Life Technologies 11330057
Dulbecco’s Modified Eagles Medium (DMEM), High Glucose Sigma-Aldrich D5648
Polydimethylsiloxane (PDMS) Dow Corning Sylgard 184
Sodium HEPES Sigma-Aldrich H3784
Sodium Hydroxide Sigma-Aldrich 221465
Materials Company Catalog Number Comments
1.5 ml microcentrifuge tubes Fisher Scientific NC0536757
15 ml polyproylene centrifuge tube Corning 352096
5 ml Polystyrene Round-Bottom Tube Corning 352235 With integrated 35 μm cell strainer
50 ml polyproylene centrifuge tube Corning 352070
6-well flat bottom tissue-culture treated plate Corning 353046
Cell Scraper, Disposable Biologix 70-2180
Polysulfone McMaster-Carr
Polytetrafluoroethylene (Teflon) McMaster-Carr
Equipment Company Catalog Number Comments
Dissecting Microscope Olympus SZ-61 Or similar, must have a mount for the high speed camera to attach
Electrical Pacing System Astro-Med, Inc Grass S88X Stimulator
High Speed Camera Pixelink PL-B741U Or similar, but must be capable of 100 frames per second for accurate data acquisition
Plate Temperature Control Used to maintain media temperature during data acqusition.
Custom Materials Company Catalog Number Comments
LabView Post-tracking Program available upon request from the authors

References

  1. Serrao, G. W., et al. Myocyte-depleted engineered cardiac tissues support therapeutic potential of mesenchymal stem cells. Tissue Eng. Part A. 18 (13-14), 1322-1333 (2012).
  2. Hansen, A., et al. Development of a drug screening platform based on engineered heart tissue. Circ. Res. 107 (1), 35-44 (2010).
  3. Fink, C., Ergün, S., Kralisch, D., Remmers, U., Weil, J., Eschenhagen, T. Chronic stretch of engineered heart tissue induces hypertrophy and functional improvement. FASEB J. 14 (5), 669-679 (2000).
  4. Yildirim, Y., et al. Development of a biological ventricular assist device: preliminary data from a small animal model. Circulation. 116, 16-23 (2007).
  5. Sekine, H., et al. Cardiac Cell Sheet Transplantation Improves Damaged Heart Function via Superior Cell Survival in Comparison with Dissociated Cell Injection. Tissue Eng. Part A. 17 (23-24), 2973-2980 (2011).
  6. Lesman, A., et al. Transplantation of a tissue-engineered human vascularized cardiac muscle. Tissue Eng. Part A. 16 (1), 115-125 (2010).
  7. Turnbull, I. C., et al. Advancing functional engineered cardiac tissues toward a preclinical model of human myocardium. FASEB J. 28 (2), 644-654 (2014).
  8. Thavandiran, N., Dubois, N., et al. Design and formulation of functional pluripotent stem cell-derived cardiac microtissues. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 110 (49), 4698-4707 (2013).
  9. Schaaf, S., et al. Human engineered heart tissue as a versatile tool in basic research and preclinical toxicology. PloS One. 6 (10), e26397 (2011).
  10. Tulloch, N. L., et al. Growth of engineered human myocardium with mechanical loading and vascular coculture. Circ. Res. 109 (1), 47-59 (2011).
  11. Nunes, S. S., et al. Biowire: a platform for maturation of human pluripotent stem cell-derived cardiomyocytes. Nature Methods. 10 (8), 781-787 (2013).
  12. Ma, Z., et al. Three-dimensional filamentous human diseased cardiac tissue model. Biomaterials. 35 (5), 1367-1377 (2014).
  13. Baker, B. M., Chen, C. S. Deconstructing the third dimension: how 3D culture microenvironments alter cellular cues. J. Cell Sci. 125 (13), 3015-3024 (2012).
  14. Pontes Soares, C., Midlej, V., de Oliveira, M. E. W., Benchimol, M., Costa, M. L., Mermelstein, C. 2D and 3D-organized cardiac cells shows differences in cellular morphology, adhesion junctions, presence of myofibrils and protein expression. PloS One. 7 (5), e38147 (2012).
  15. Burridge, P. W., Keller, G., Gold, J. D., Wu, J. C. Production of De Novo Cardiomyocytes: Human Pluripotent Stem Cell Differentiation and Direct Reprogramming. Cell Stem Cell. 10 (1), 16-28 (2012).
  16. Mummery, C. L., Zhang, J., Ng, E. S., Elliott, D. A., Elefanty, A. G., Kamp, T. J. Differentiation of human embryonic stem cells and induced pluripotent stem cells to cardiomyocytes: a methods overview. Circ. Res. 111 (3), 344-358 (2012).
  17. Kim, C., et al. Non-cardiomyocytes influence the electrophysiological maturation of human embryonic stem cell-derived cardiomyocytes during differentiation. Stem Cells Dev. 19 (6), 783-795 (2010).
  18. Dubois, N. C., et al. SIRPA is a specific cell-surface marker for isolating cardiomyocytes derived from human pluripotent stem cells. Nature Biotechnol. 29 (11), 1011-1018 (2011).
  19. Hudon-David, F., Bouzeghrane, F., Couture, P., Thibault, G. Thy-1 expression by cardiac fibroblasts: lack of association with myofibroblast contractile markers. J. Mol. Cell. Cardiol. 42 (5), 991-1000 (2007).
  20. Gago-Lopez, N., et al. THY-1 receptor expression differentiates cardiosphere-derived cells with divergent cardiogenic differentiation potential. Stem Cell Reports. 2 (5), 576-591 (2014).
  21. Hare, J. M., Traverse, J. H., et al. A randomized, double-blind, placebo-controlled, dose-escalation study of intravenous adult human mesenchymal stem cells (prochymal) after acute myocardial infarction. J. Am. Coll. Cardiol. 54 (24), 2277-2286 (2009).
  22. Bolli, R., et al. Cardiac stem cells in patients with ischaemic cardiomyopathy (SCIPIO): initial results of a randomised phase 1 trial. Lancet. 378 (9806), 1847-1857 (2011).
  23. Wollert, K. C., et al. Intracoronary autologous bone-marrow cell transfer after myocardial infarction: the BOOST randomised controlled clinical trial. Lancet. 364 (9429), 141-148 (2004).
  24. Hirsch, A., et al. Intracoronary infusion of autologous mononuclear bone marrow cells or peripheral mononuclear blood cells after primary percutaneous coronary intervention: rationale and design of the HEBE trial–a prospective, multicenter, randomized trial. Am. Heart. J. 152 (3), 434-441 (2006).
  25. Jeevanantham, V., Butler, M., Saad, A., Abdel-Latif, A., Zuba-Surma, E. K., Dawn, B. Adult bone marrow cell therapy improves survival and induces long-term improvement in cardiac parameters: a systematic review and meta-analysis. Circulation. 126 (5), 551-568 (2012).
  26. Meyer, G. P., et al. Intracoronary bone marrow cell transfer after myocardial infarction: 5-year follow-up from the randomized-controlled BOOST trial. Eur. Heart J. 30 (24), 2978-2984 (2009).
  27. Meyer, G. P., et al. Intracoronary bone marrow cell transfer after myocardial infarction: eighteen months’ follow-up data from the randomized, controlled BOOST (BOne marrOw transfer to enhance ST-elevation infarct regeneration) trial. Circulation. 113 (10), 1287-1294 (2006).
  28. Hirsch, A., et al. Intracoronary infusion of mononuclear cells from bone marrow or peripheral blood compared with standard therapy in patients after acute myocardial infarction treated by primary percutaneous coronary intervention: results of the randomized controlled HEBE trial. Eur. Heart J. 32 (14), 1736-1747 (2011).
  29. Simari, R. D., et al. Bone marrow mononuclear cell therapy for acute myocardial infarction: a perspective from the cardiovascular cell therapy research network. Circ. Res. 114 (10), 1564-1568 (2014).
  30. Bhattacharya, S., et al. High efficiency differentiation of human pluripotent stem cells to cardiomyocytes and characterization by flow cytometry. J. Vis. Exp. (91), e52010 (2014).
  31. Lian, X., et al. Robust cardiomyocyte differentiation from human pluripotent stem cells via temporal modulation of canonical Wnt signaling. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 109 (27), 1848-1857 (2012).
  32. Burridge, P. W., et al. A universal system for highly efficient cardiac differentiation of human induced pluripotent stem cells that eliminates interline variability. PloS One. 6 (4), e18293 (2011).
  33. Kean, T. J., Lin, P., Caplan, A. I., Dennis, J. E. MSCs: Delivery Routes and Engraftment, Cell-Targeting Strategies, and Immune Modulation. Stem Cells Int. , 732742 (2013).
  34. Trachtenberg, B., et al. Rationale and design of the Transendocardial Injection of Autologous Human Cells (bone marrow or mesenchymal) in Chronic Ischemic Left Ventricular Dysfunction and Heart Failure Secondary to Myocardial Infarction (TAC-HFT) trial: A randomized, double-blind, placebo-controlled study of safety and efficacy. Am. Heart J. 161 (3), 487-493 (2011).
  35. Williams, A. R., et al. Intramyocardial stem cell injection in patients with ischemic cardiomyopathy: functional recovery and reverse remodeling. Circ. Res. 108 (7), 792-796 (2011).
  36. Razeghi, P., Young, M. E., Alcorn, J. L., Moravec, C. S., Frazier, O. H., Taegtmeyer, H. Metabolic gene expression in fetal and failing human heart. Circulation. 104 (24), 2923-2931 (2001).
  37. Rajabi, M., Kassiotis, C., Razeghi, P., Taegtmeyer, H. Return to the fetal gene program protects the stressed heart: a strong hypothesis. Heart Fail. Rev. 12 (3-4), 331-343 (2007).
  38. Taegtmeyer, H., Sen, S., Vela, D. Return to the fetal gene program: a suggested metabolic link to gene expression in the heart. Ann. N. Y. Acad. Sci. 1188, 191-198 (2010).
check_url/53447?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Cashman, T. J., Josowitz, R., Gelb, B. D., Li, R. A., Dubois, N. C., Costa, K. D. Construction of Defined Human Engineered Cardiac Tissues to Study Mechanisms of Cardiac Cell Therapy. J. Vis. Exp. (109), e53447, doi:10.3791/53447 (2016).

View Video