Summary

Isolasjon og kanylering av Cerebral Parenkymalt arterioler

Published: May 23, 2016
doi:

Summary

This manuscript describes a simple and reproducible protocol for isolation of intracerebral arterioles (a group of blood vessels encompassing parenchymal arterioles, penetrating arterioles and pre-capillary arterioles) from mice, to be used in pressure myography, immunofluorescence, biochemistry, and molecular studies.

Abstract

Intracerebrale parenkymceller arterioler (PAS), som inkluderer parenkymatøs arterioler, gjennomtrengende arterioler og pre-kapillær arterioler, er høy motstand blodkar forgrening ut fra pial arterier og arterioler og dykke inn i hjernen parenchyma. Individuell PA perfuse en diskret sylindrisk territorium parenchyma og nervecellene som finnes. Disse arterioler er en sentral aktør i reguleringen av cerebral blodstrøm både globalt (cerebrovaskulær autoregulation) og lokalt (funksjonell hyperemia). PAs er en del av neurovascular enhet, en struktur som tilsvarer regionale blodstrømmen til metabolsk aktivitet i hjernen og omfatter også nevroner, interneuroner og astrocytter. Perfusjon gjennom PAs er direkte knyttet til aktiviteten av neuroner i det aktuelle område og økning i nevronal metabolisme fører til en styrking i lokal perfusjon forårsaket av utvidelse av foret PA. Regulering av PAs skiller seg fra bedre-pregetpial arterier. Pressure-indusert vasokonstriksjon er større i PAS og vasodilaterende mekanismer variere. I tillegg trenger PAs ikke får ytre innervasjon fra perivaskulær nerver – innervasjon er egenverdi og indirekte i naturen gjennom kontakt med astrocytic endfeet. Dermed data om kontraktile regulering akkumulert av studier med pial arterier ikke direkte oversette til å forstå PA funksjon. Videre er det fortsatt ikke avklart hvordan patologiske tilstander som høyt blodtrykk og diabetes, påvirker PA struktur og reaktivitet. Dette kunnskapsgapet er delvis en konsekvens av tekniske problemer knyttet til PA isolasjon og kanylering. I dette manuskriptet presenterer vi en protokoll for isolasjon og kanylering av gnager PAS. Videre viser vi eksempler på forsøk som kan utføres med disse arterioler, inkludert agonist-indusert konstriksjon og myogenisk reaktivitet. Selv om fokus for dette manuskriptet er på PA kanylering og trykk myography, isolert PAs kan også benyttes for biokjemiske, biofysiske, molekylære, og avbildningsstudier.

Introduction

Den cerebral sirkulasjon er unikt organisert for å understøtte de metabolske kravene til sentralnerveceller, celler som har begrenset energilager, og er følgelig meget følsomme for endringer i oksygentrykk og tilførsel av nødvendige næringsstoffer. Som spesielle nerve subpopulasjoner blir aktive når bestemte oppgaver utføres, fremmer blodkar et sterkt lokalisert økning i perfusjon å hindre lokal hypoksi og utarming av næringsstoffer 1. Dette er en form for funksjonell hyperemia kjent som neurovaskulær kopling, og er avhengig av riktig drift av neurovascular enhet, som består av aktive neuroner, astrocytter og cerebrale arterier 2. Intracerebrale parenchymale arterioler, en gruppe av blodkar som omfatter parenkymal, gjennomtrengende og pre-kapillære arterioler, er sentralt viktig for denne reaksjon, og det er da viktig å studere dem enkeltvis for å undersøke neurovascular kopling 3.

<p class = "jove_content"> parenchymale arterioler er små (20-70 nm indre diameter) med høy motstand blodkar som perfuse distinkte neuronpopulasjoner i hjernen. Forgrening ut fra pial arterier på overflaten, parenchymale arterioler trenge inn i hjernen parenchyma ved en nesten 90 vinkel til mate undergrunnen mikrosirkulasjon (figur 1). Disse arterioler spille en avgjørende rolle i å opprettholde passende perfusjonstrykk som de er de mest distale glatte muskel-oppbevaringsbeholdere som beskytter kapillærer. I motsetning til overflaten pial sirkulasjon, parenchymale arterioler mangler sikkerhet grener og anastomoser, og følgelig er "flaskehalser" av cerebral sirkulasjon 4. Som et resultat av dysfunksjon av parenchymale arterioler bidrar til utvikling av cerebrovaskulære sykdommer så som vaskulær demens og små iskemisk slag (også kjent som tause eller lakunære slag). studier .indikatorere at parenchymal arterioler dysfunksjon kan induseres ved essensiell hypertensjon 5, kronisk stress 6, og er en tidlig begivenhet i småkarssykdom genetisk musemodell 7. Videre er eksperimentelt-indusert okklusjon av enkle penetrerende arterioler i rotter er tilstrekkelig til å forårsake små iskemisk slag som er sylindrisk i form, tilsvarende det som ble observert hos eldre mennesker 8.

I tillegg til disse anatomiske forskjeller, mekanismer som regulerer kontraktile funksjon varierer mellom pial arterier og parenkymatøs arterioler. Myogenisk vasokonstriksjon er større i parenchymale arterioler 9, muligens på grunn av den manglende ytre innervasjon 10, distinkte måter mechanotransduction 11, og forskjeller i intracellulær Ca2 + signale 12,13 i vaskulære glatte muskelceller. Tyder på at endotel-avhengig vasodilaterende mekanismer også variere mellom disse vascuLar segmenter, med parenkymceller arterier stiller større avhengighet av mekanismer som involverer Ca 2+-aktivert K + -kanaler og electrotonic kommunikasjon i karveggen sammenlignet med diffusible faktorer som nitrogenoksid og prostacykliner 14. Derfor data samlet i eksperimenter med pial arterier kan ikke nødvendigvis gjelder for parenkymatøs arterioler, etterlot et tomrom i vår kunnskap om lokal kontroll av cerebral perfusjon.

Til tross for sin betydning, parenkymceller arterioler er langt under-studert, hovedsakelig på grunn av de tekniske utfordringene med isolasjon og montering for ex vivo studier. I dette manuskriptet beskriver vi en metode for å isolere og cannulate cerebrale parenkymceller arterioler, som kan brukes for trykk myography, eller for å isolere vev for immunolabeling, elektrofysiologi, molekylær biologi, og biokjemisk analyse.

Protocol

1. Kanyle og Chamber Forberedelse Sett ren borosilikatglass kapillærer (ytre diameter: 1,2 mm, indre diameter: 0,69 mm; 10 mm i lengde) inn i sporene til en pipette puller med en platina-filament (diameter 100 pm). Bruke riktige innstillingene, trekk kapillær å generere en kanyle med en lang og tynn spiss (figur 2) med en mikropipette avtrekker. Innstillingene som brukes er: Heat – 700, Pull – 100, Velocity – 50, Time – 10. Sett kanylen inn i holderen av trykk myograph …

Representative Results

Figur 5A viser en representativ innsnevring av mus PAS til 60 mM KCl aCSF å evaluere integriteten av preparatet. PAs skal innsnevre mellom 15 – 30%, i nærvær av 60 mM KCl. Hvis innsnevringen er under 15%, forkaste PA og cannulate en annen, så det tyder på at arteriole ble skadet under isolasjon og kanylering prosess. Figur 5B illustrerer PA innsnevringen til økende konsentrasjoner av tro…

Discussion

Cerebral parenkymceller arterioler er høy motstand arterioler med få anastomoser og greiner som perfuse forskjellige nevronale populasjoner. Disse spesialiserte blodårer er sentrale aktører i cerebrovaskulær autoregulation og nevrovaskulære kobling gjennom astrocyte-mediert vasodilatasjon en. Betydningen av disse spesialiserte blodårer i cerebral vaskulær sykdom har vært kjent i ca 50 år, når det banebrytende arbeidet til Dr. Miller Fisher beskrevet strukturelle endringer i parenkymceller arteriole…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Funded by NHLBI R01HL091905 (SE), the United Leukodystrophy Foundation CADASIL research grant (FD) and AHA 15POST247200 (PWP). The authors would like to thank Samantha P. Ahchay for providing the image on Figure 1, and Dr. Gerry Herrera, Ph.D., for providing critical comments on the manuscript.

Materials

artificial Cerebrospinal Fluid
NaCl Fisher Scientific S-640
KCl Fisher Scientific P217
MgCl Anhydrous Sigma-Aldrich M-8266
NaHCO3 Fisher Scientific S233
NaH2PO4 Sigma-Aldrich S9638
D-(+)-Glucose Sigma-Aldrich G2870
CaCl2 Sigma-Aldrich C4901
Bovine Serum Albumin Sigma-Aldrich A9647
Name Company Catalog Number Comments
Isolation/ Cannulation
Stereo Microscope Olympus SZX7
Super Fine Forceps Fine Science Tools 11252-00
Vannas Spring Scissors Fine Science Tools 15000-00
Wiretrol 50 μL VWR Scientific 5-000-1050
0.2 μm Sterile Syringe Filter VWR Scientific 28145-477
Micropipette Puller Sutter Instruments P-97
Borosilicate Glass O.D.: 1.2 mm, I.D.: 0.68 mm Sutter Instruments B120-69-10
Dark Green Nylon Thread Living Systems Instrumentation THR-G
Linear Alignment Single Vessel Chamber Living Systems Instrumentation CH-1-LIN
Pressure Servo Controller with Peristaltic Pump Living Systems Instrumentation PS-200
Video Dimension Analyzer Living Systems Instrumentation VDA-10
Four Channel Recorder with LabScribe 3 Recording and Analysis Software Living Systems Instrumentation DAQ-IWORX-404
Heating Unit Warner Instruments 64-0102
Automatic Temperature Controller Warner Instruments TC-324B

References

  1. Dunn, K. M., Nelson, M. T. Neurovascular signaling in the brain and the pathological consequences of hypertension. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 306, H1-H14 (2014).
  2. Iadecola, C. Neurovascular regulation in the normal brain and in Alzheimer’s disease. Nat Rev Neurosci. 5, 347-360 (2004).
  3. Dabertrand, F., et al. Prostaglandin E2, a postulated astrocyte-derived neurovascular coupling agent, constricts rather than dilates parenchymal arterioles. J Cereb Blood Flow Metab. 33, 479-482 (2013).
  4. Nishimura, N., Schaffer, C. B., Friedman, B., Lyden, P. D., Kleinfeld, D. Penetrating arterioles are a bottleneck in the perfusion of neocortex. Proc Natl Acad Sci U S A. 104, 365-370 (2007).
  5. Pires, P. W., Jackson, W. F., Dorrance, A. M. Regulation of myogenic tone and structure of parenchymal arterioles by hypertension and the mineralocorticoid receptor. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 309, H127-H136 (2015).
  6. Longden, T. A., Dabertrand, F., Hill-Eubanks, D. C., Hammack, S. E., Nelson, M. T. Stress-induced glucocorticoid signaling remodels neurovascular coupling through impairment of cerebrovascular inwardly rectifying K+ channel function. Proc Natl Acad Sci U S A. 111, 7462-7467 (2014).
  7. Dabertrand, F., et al. Potassium channelopathy-like defect underlies early-stage cerebrovascular dysfunction in a genetic model of small vessel disease. Proc Natl Acad Sci U S A. 112, E796-E805 (2015).
  8. Shih, A. Y., et al. The smallest stroke: occlusion of one penetrating vessel leads to infarction and a cognitive deficit. Nature neuroscience. 16, 55-63 (2013).
  9. Cipolla, M. J., et al. Increased pressure-induced tone in rat parenchymal arterioles vs. middle cerebral arteries: role of ion channels and calcium sensitivity. Journal of applied physiology. 117, 53-59 (2014).
  10. Hamel, E. Perivascular nerves and the regulation of cerebrovascular tone. Journal of applied physiology. 100, 1059-1064 (2006).
  11. Brayden, J. E., Li, Y., Tavares, M. J. Purinergic receptors regulate myogenic tone in cerebral parenchymal arterioles. J Cereb Blood Flow Metab. 33, 293-299 (2013).
  12. Dabertrand, F., Nelson, M. T., Brayden, J. E. Ryanodine receptors, calcium signaling, and regulation of vascular tone in the cerebral parenchymal microcirculation. Microcirculation. 20, 307-316 (2013).
  13. Dabertrand, F., Nelson, M. T., Brayden, J. E. Acidosis dilates brain parenchymal arterioles by conversion of calcium waves to sparks to activate BK channels. Circ Res. 110, 285-294 (2012).
  14. You, J., Johnson, T. D., Marrelli, S. P., Bryan, R. M. Functional heterogeneity of endothelial P2 purinoceptors in the cerebrovascular tree of the rat. Am J Physiol. 277, H893-H900 (1999).
  15. Nagase, K., Iida, H., Dohi, S. Effects of ketamine on isoflurane- and sevoflurane-induced cerebral vasodilation in rabbits. J Neurosurg Anesthesiol. 15, 98-103 (2003).
  16. Fisher, C. M. The arterial lesions underlying lacunes. Acta Neuropathol. 12, 1-15 (1968).
  17. Brown, W. R., Moody, D. M., Thore, C. R., Anstrom, J. A., Challa, V. R. Microvascular changes in the white mater in dementia. J Neurol Sci. 283, 28-31 (2009).
  18. Pires, P. W., Dams Ramos, C. M., Matin, N., Dorrance, A. M. The effects of hypertension on the cerebral circulation. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 304, H1598-H1614 (2013).
  19. Filosa, J. A., Bonev, A. D., Nelson, M. T. Calcium dynamics in cortical astrocytes and arterioles during neurovascular coupling. Circ Res. 95, e73-e81 (2004).
  20. Dacey, R. G., Duling, B. R. A study of rat intracerebral arterioles: methods, morphology, and reactivity. Am J Physiol. 243, H598-H606 (1982).
  21. Coyne, E. F., Ngai, A. C., Meno, J. R., Winn, H. R. Methods for isolation and characterization of intracerebral arterioles in the C57/BL6 wild-type mouse. J Neurosci Methods. 120, 145-153 (2002).
  22. Cipolla, M. J., Smith, J., Kohlmeyer, M. M., Godfrey, J. A. SKCa and IKCa Channels, myogenic tone, and vasodilator responses in middle cerebral arteries and parenchymal arterioles: effect of ischemia and reperfusion. Stroke. 40, 1451-1457 (2009).

Play Video

Cite This Article
Pires, P. W., Dabertrand, F., Earley, S. Isolation and Cannulation of Cerebral Parenchymal Arterioles. J. Vis. Exp. (111), e53835, doi:10.3791/53835 (2016).

View Video