Summary

C2C12 Miyoblast Hücrelerde Myotonik Distrofi 1 Modelleme

Published: July 29, 2016
doi:

Summary

Bu protokol, biz optimize C2C12 hücre bakım, gen transfeksiyon / transdüksiyon ve miyosit farklılaşma dahil miyotonik distrofi 1 myoblast modelleri, kurulması prosedürleri sunuyoruz.

Abstract

Miyotonik distrofi 1 (DM1) müsküler distrofi yaygın bir şeklidir. çeşitli hayvan modelleri DM1 için kurulmuş olmasına rağmen onlar hücresel ve moleküler olayları incelemek için etkili bir hücresel alternatif sunmak, çünkü myoblast hücre modelleri hala önemlidir. C2C12 miyoblast hücreleri yaygın gene ya da viral transdüksiyon ile Miyogenesis direnç incelemek için kullanılmıştır olmasına rağmen, C2C12 hücre araştırma engellemektedir. Burada, C2C12 iskelet hücreleri ve miyosit farklılaşmanın başlaması içine genleri tanıtmak için günlük bakım, transfeksiyon ve transdüksiyon prosedürleri içerir optimize edilmiş bir protokol açıklar. Toplu olarak, bu işlemler iyi transfeksiyon / transdüksiyon verimliliği, hem de uyumlu farklılaşma sonuçlarını verir. miyotonik distrofi çalışma, hem de diğer kas hastalıkları yararlanacak DM1 miyoblast hücre modellerinin oluşturulması açıklanan protokol.

Introduction

Miyotonik distrofi (DM) birden fazla sistemi, en önemlisi kalp ve iskelet kasları 1 etkileyen otozomal dominant bir hastalıktır. Bu hastalıkta, DM1 ve DM2 iki alt tipi vardır. DM1 daha sık görülür ve DM2 2 daha ciddi bir tezahürü vardır. DM1 yatan genetik mutasyon 3 'çevrilmemiş bölge DM protein kinaz geni (DMPK) 3 (UTR) bulunan KKG üçüz tekrarlarının bir açılımıdır. Etkilenmemiş kişilerde KKG tekrar sayısı aksine 37'ye 5 ila, daha fazla 50 artar ve bazen DM1 hastalarının 4'te binlerce değişir. Bunun bir sonucu olarak, bu gibi RNA bağlayıcı proteinler,-kas benzeri 1 (MBNL1) CUGBP ve Elav benzeri Aile 1 (Celf1), düzeni bozulmuş bulunmaktadır. Nedeniyle genişletilmiş KKG tekrarlarda haciz, MBNL1 alternatif yapıştırma 5 düzenleyen yeteneğini kaybeder. Celf1, diğer taraftan, 6,7 yukarı düzenlenir. Celf1 aşırı ekspresyonu kas kaybı ile ilişkilidirMBNL1 fonksiyon kaybına atfedilen değildir ve halsizlik. DMPK 3'-UTR KKG genişleme, MBNL1 kaybı ve Celf1 aşırı ifadesi de dahil olmak üzere DM1 ile ilgili değişiklikleri, simüle Hayvan modelleri, kurulmuştur. Ancak, miyoblastların içinde DM1 modelleme özellikle DM1 ile ilgili hücresel ve moleküler olayları diseksiyon için, etkili bir alternatif sunuyor.

C2C12 myoblast hücre hattı ilk yaralı C3H fare kas izole ve yaygın Miyojenik farklılaşma 8,9 incelemek için kullanılmıştır. C2C12 hücreleri hızla cenin sığır serumu (FBS) ortam ihtiva-eden prolifere ve kolayca FBS boşaldığında farklılaşma tabi tutulur. Oysa, bu myoblast farklılaşma modeli kullanılarak iki zorluğu beraberinde getirir: C2C12 hücreleri sıklıkla gen transfeksiyonu / viral transdüksiyon dirençlidir; ve hücre işleme ve farklılaşma prosedüründe küçük farklılıklar mihotüp oluşumunda belirgin değişikliklere yol açabilir.

Bizim laboratuvar rutin ac olarak C2C12 miyoblastları kullanırell modeli ve etkili bir C2C12 hücre hattına 10 plazmid transfeksiyon, retroviral kalıt ve lentiviral transdüksiyonu ile genleri teslim protokolleri geliştirilmiştir. videoda, / transfekte C2C12 hücrelerini transduse ve DM1 myoblast modelleri kurulmasında farklılaşma tutarlılığını sağlamak için optimize prosedürleri göstermektedir.

Protocol

1. C2C12 Hücre Kültürü büyüme ortamında 100 mm plaka C2C12 fare miyoblastlar muhafaza (Dulbecco değiştirilmiş Eagle ortamı (DMEM)),% 20 fetal sığır serumu ile takviye edilmiş, 100 U / ml penisilin, 100 ug / ml streptomisin, ve 2 mM L-glutamin. % 60 konfluent – C2C12 pasajlı hücreler yaklaşık 50 olmak izin verin. büyüme ortamı atılır ve 3 mi oda sıcaklığında fosfat tamponlu serum fizyolojik (PBS) ile C2C12 hücreleri yıkayın. PBS çıkarın ve hücreleri ayırmak için 5…

Representative Results

C2C12 hücreleri GFP CUG5 veya GFP-CUG200 ile transfekte edilmiştir. Ilaç direnci seçimi yapıldıktan sonra, sabit havuzları GFP (Şekil 1A) ile görünür edilebilir, kurulmuştur. Farklılaşmış miyoblastların içinde mihotüp formasyonu 10 (Şekil 1B) immün ağır zinciri miyozin tarafından tespit edildi. Mihotüp oluşumu ölçümü füzyon endeksleri 2.6 ± 1.1% 35,4 ± 4,1 den% azalmış ve mihotüp alanları GFP-CUG200 <strong…

Discussion

C2C12 hücre hattı Miyogenesis 11-14 incelemek için bir model olarak kullanılmıştır. Bu hücreler, bir fibroblast-benzeri bir görünüm korumak,% 20 fetal inek serumu ihtiva eden ortamda hızla çoğalan ve hali hazırda% 2 at serumu 15 ihtiva eden ortam içinde farklılık gösterir. Hızlı büyüme ve farklılaşma bir Miyogenesis hücre modelinde avantajlı özellikleridir. Burada, C2C12 hücrelerine cDNA, 3'-UTR ve shRNA tanıtmak plazmid retroviral ve lentiviral vektörleri kullan?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

We thank Drs. Tom Cooper from the Baylor College of Medicine, Mani S. Mahadevan from the University of Wisconsin-Madison, and Didier Trono from the University of Geneva for reagents. This work is supported by a University of Houston startup fund (YL), American Heart Association grant (YL, 11SDG5260033), and the National Natural Science Foundation of China (XP, 81460047).

Materials

DMEM, high glucose Life Technologies 11965-084 for culture medium
Fetal Bovine Serum – Premium Atlanta Biologicals S11150 for culture medium
Penicillin-Streptomycin-Glutamine (100X) Life Technologies 10378-016 for culture medium
Insulin from bovine pancreas Sigma Aldrich I6634-100MG for differentiation medium
equine serum Atlanta Biologicals S12150 for differentiation medium
FuGENE HD Transfection Reagent Promega E2311  for transfection
G418 sulfate  Gold Biotechnology  G-418-10 for drug resistant selection
Puromycin dihydrochloride Sigma Aldrich sc-108071 for drug resistant selection
NuPAGE Novex 4-12% Bis-Tris Protein Gels, 1.0 mm, 15 well Life Technologies NP0323BOX for western blot
NuPAGE Transfer Buffer (20X) Life Technologies NP00061 for western blot
NuPAGE MES SDS Running Buffer (20X) Life Technologies NP0002 for western blot
Amersham Protran Supported 0.2 NC, 300mmx4m GE healthcare life science 10600015 for western blot
MF 20 Developmental Hybridoma Bank MF 20 primary Ab for immunostaining
Goat anti-Mouse IgG (H+L) Secondary Antibody, Texas Red-X conjugate Thermo Fisher Scientific T-862 secondary Ab for immunostaining
One step qRT-PCR MasterMix AnaSpec 05-QPRT-032X for qRT-PCR
TriPure Isolation Reagent Roche 11667165001 for RNA isolation
CUG-BP1 Antibody (3B1) santa cruz sc-20003 primary Ab western blot
Actin Antibody santa cruz sc-1615 goat polyclonal IgG for loading control
293T Ecopack Clontech 631507 cells for retrovirus preparation
pMSCV-puro Clontech 634401 empty retroviral vector for retrovirus preparation
pMSCV-Celf1Flag-puro house-constructed not available retroviral vector encoding Celf1Flag, used in retrovirus preparation
psPAX2 gift from Didier Trono not available for lentivirus preparation
pMD2.G gift from Didier Trono not available for lentivirus preparation
GFP-CUG5 gift from M.S. Mahadevan not available details in reference 10 
GFP- CUG200 gift from M.S. Mahadevan not available details in reference 10 
Triton X-100 Sigma Aldrich X100 for immunostaining
paraformaldehyde Sigma Aldrich P6148 for immunostaining
TWEEN 20 Sigma Aldrich P9416 for immunostaining
DAPI Sigma Aldrich D9542 for immunostaining

References

  1. Harper, P. S. . Myotonic dystrophy. 3rd edn. , (2001).
  2. Timchenko, L. Molecular mechanisms of muscle atrophy in myotonic dystrophies. Int J Biochem Cell Biol. 45 (10), 2280-2287 (2013).
  3. Brook, J. D., et al. Molecular basis of myotonic dystrophy: expansion of a trinucleotide (CTG) repeat at the 3′ end of a transcript encoding a protein kinase family member. Cell. 68 (4), 799-808 (1992).
  4. Chau, A., Kalsotra, A. Developmental insights into the pathology of and therapeutic strategies for DM1: Back to the basics. Dev Dyn. 244 (3), 377-390 (2015).
  5. Ho, T. H., et al. Muscleblind proteins regulate alternative splicing. EMBO J. 23 (15), 3103-3112 (2004).
  6. Kuyumcu-Martinez, N. M., Wang, G. S., Cooper, T. A. Increased steady-state levels of CUGBP1 in myotonic dystrophy 1 are due to PKC-mediated hyperphosphorylation. Mol Cell. 28 (1), 68-78 (2007).
  7. Kalsotra, A., et al. The Mef2 transcription network is disrupted in myotonic dystrophy heart tissue, dramatically altering miRNA and mRNA expression. Cell Rep. 6 (2), 336-345 (2014).
  8. Yaffe, D., Saxel, O. Serial passaging and differentiation of myogenic cells isolated from dystrophic mouse muscle. Nature. 270 (5639), 725-727 (1977).
  9. Blau, H. M., Chiu, C. P., Webster, C. Cytoplasmic activation of human nuclear genes in stable heterocaryons. Cell. 32 (4), 1171-1180 (1983).
  10. Peng, X., et al. Celf1 regulates cell cycle and is partially responsible for defective myoblast differentiation in myotonic dystrophy RNA toxicity. Biochim Biophys Acta. 1852 (7), 1490-1497 (2015).
  11. Amack, J. D., Mahadevan, M. S. The myotonic dystrophy expanded CUG repeat tract is necessary but not sufficient to disrupt C2C12 myoblast differentiation. Hum Mol Genet. 10 (18), 1879-1887 (2001).
  12. Amack, J. D., Paguio, A. P., Mahadevan, M. S. Cis and trans effects of the myotonic dystrophy (DM) mutation in a cell culture model. Hum Mol Genet. 8 (11), 1975-1984 (1999).
  13. Bhagavati, S., Shafiq, S. A., Xu, W. (CTG)n repeats markedly inhibit differentiation of the C2C12 myoblast cell line: implications for congenital myotonic dystrophy. Biochim Biophys Acta. 1453 (2), 221-229 (1999).
  14. Amack, J. D., Mahadevan, M. S. Myogenic defects in myotonic dystrophy. Dev Biol. 265 (2), 294-301 (2004).
  15. Emerson, C. P., Sweeney, H. L. . Methods in muscle biology. 52, (1997).
  16. Ward, A. J., Rimer, M., Killian, J. M., Dowling, J. J., Cooper, T. A. CUGBP1 overexpression in mouse skeletal muscle reproduces features of myotonic dystrophy type 1. Hum Mol Genet. 19 (18), 3614-3622 (2010).
  17. Koshelev, M., Sarma, S., Price, R. E., Wehrens, X. H. T., Cooper, T. A. Heart-specific overexpression of CUGBP1 reproduces functional and molecular abnormalities of myotonic dystrophy type 1. Hum Mol Genet. 19 (6), 1066-1075 (2010).
check_url/54078?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Liang, R., Dong, W., Shen, X., Peng, X., Aceves, A. G., Liu, Y. Modeling Myotonic Dystrophy 1 in C2C12 Myoblast Cells. J. Vis. Exp. (113), e54078, doi:10.3791/54078 (2016).

View Video