Summary

En Tandem væskekromatografi-massespektrometri-baseret tilgang til Metabolit Analyse af<em> Staphylococcus aureus</em

Published: March 28, 2017
doi:

Summary

Her beskriver vi en protokol til ekstraktion af metabolitter fra Staphylococcus aureus og deres efterfølgende analyse via væskekromatografi og massespektrometri.

Abstract

I et forsøg på at forpurre bakterielle patogener, værter ofte begrænse tilgængeligheden af ​​næringsstoffer i stedet for infektion. Denne begrænsning kan ændre mængderne af centrale metabolitter, som regulatoriske faktorer reagerer, justering cellulær metabolisme. I de senere år har en række proteiner og RNA opstået som vigtige regulatorer af virulens genekspression. For eksempel Cody proteinet reagerer på niveauer af forgrenede aminosyrer og GTP og er bredt konserveret i lav G + C grampositive bakterier. Som en global regulator i Staphylococcus aureus, Cody kontrollerer ekspressionen af snesevis af virulens og metaboliske gener. Vi hypotesen, at S. aureus anvender Cody delvis at ændre sin metabolisk tilstand i et forsøg på at tilpasse sig til næringsstof-begrænsende betingelser potentielt stødt i værtsmiljøet. Dette manuskript beskriver en fremgangsmåde til ekstraktion og analyse af metabolitter fra S. aureus under anvendelse af væskekromatografi koblet med massespektrumtrometry, en protokol, der blev udviklet for at teste denne hypotese. Fremgangsmåden fremhæver også god praksis som kan sikre stringens og reproducerbarhed, såsom opretholdelse af biologisk stabil tilstand og konstant beluftning uden brug af kontinuerlige kemostat kulturer. I forhold til de USA200 methicillin-modtagelige S. aureus isolere UAMS-1 parentale stamme, den isogene Cody mutanten udviste signifikante stigninger i aminosyrer afledt fra aspartat (fx threonin og isoleucin) og fald i deres forstadier (for eksempel aspartat og O -acetylhomoserine ). Disse fund korrelerer godt med transkriptionelle data opnået med RNA-seq analyse: gener i disse veje opreguleret mellem 10- og 800-fold i Cody null mutant. Kobling globale analyser af transkriptom og metabolomet kan afsløre, hvordan bakterier ændre deres metabolisme når de står med miljø- eller ernæringsmæssig stress, der giver potentiel indsigt i fysiological ændringer forbundet med næringsstof udtynding oplevet under infektion. Sådanne opdagelser kan bane vejen for udviklingen af ​​hidtil ukendte anti-infektiøse og terapeutika.

Introduction

Bakteriepatogener skal kæmpe med mange udfordringer inden værten miljø. Ud over direkte angreb af immunceller, værten sekvestrerer også næringsstoffer afgørende for bakteriel overlevelse og replikation, frembringelse ernæringsmæssige immunitet 1, 2. For at overleve disse fjendtlige miljøer, bakterielle patogener implementere virulensfaktorer. Nogle af disse faktorer tillader bakterierne at unddrage sig den immunrespons; Andre faktorer omfatter udskilles fordøjelsesenzymer, såsom hyaluronidase, thermonuclease, og lipase, som kan gøre det muligt for bakterierne at genopbygge manglende næringsstoffer ved at indtage vævsafledte bestanddele 3, 4, 5. Faktisk har bakterier udviklet reguleringssystemer, der binder den fysiologiske tilstand af cellen til produktion af virulensfaktorer 6, 7, <s op class = "xref"> 8, 9, 10.

En voksende dokumentation peger på Cody som et kritisk regulator forbinder metabolisme og virulens. Selvom først opdaget i Bacillus subtilis som en repressor af dipeptidet permease (dpp) gen 11 er Cody nu vides at blive produceret af næsten alle de lave G + C Gram-positive bakterier 12, 13 og regulerer snesevis af gener involveret i carbon og nitrogenmetabolisme 14, 15, 16, 17, 18, 19. I patogene arter, Cody styrer også udtryk for nogle af de vigtigste virulensgener 20, 21,. ef "> 22, 23, 24, 25, 26, 27 Cody aktiveres som en DNA-bindende protein ved to klasser af ligander: forgrenet aminosyre (BCAA, isoleucin, leucin og valin [ILV]) og GTP . Når disse næringsstoffer er rigelige, Cody undertrykker (eller i nogle tilfælde stimulerer transskription). Da disse næringsstoffer bliver begrænset, Cody aktivitet nedsættes gradvis, hvilket resulterer i en gradueret transkriptionel respons, som re-dirigeres forstadier gennem forskellige metaboliske veje er forbundet til det centrale stofskifte 28, 29, 30.
Tandem væskekromatografi koblet til massespektrometri (LC-MS) er en kraftfuld teknik, der nøjagtigt kan identificere og kvantificere små molekyler intracellulære metabolitter 31. Når parret med transcriptome analyse (fx RNA-Seq), denne analytiske arbejdsgang kan give indsigt i de fysiologiske forandringer, der sker som reaktion på miljømæssig eller ernæringsmæssig stress. Her præsenteres en fremgangsmåde til metabolit ekstraktion fra Staphylococcus aureus-celler og efterfølgende analyse via LCMS. Denne fremgangsmåde er blevet anvendt til at påvise de pleiotrope virkninger af Cody på S. aureus fysiologi.

Protocol

1. Udarbejdelse af Buffer Solutions Forberede phosphatbufret saltvand (PBS; pH 7,4) ved fortynding af en stamopløsning af 10x PBS til en slutkoncentration på 1 x med ultrarent (destilleret og deioniseret) vand. Forberede quenching opløsning ved at kombinere 2 ml acetonitril, 2 ml methanol, 1 ml ultrarent H2O, og 19 pi (0,1 mM slutkoncentration) myresyre. Forberede LC-MS opløsningsmiddel A ved tilsætning af myresyre (0,2% [v / v] slutkoncentration) til ultrarent vand. <…

Representative Results

Vi har analyseret intracellulære metabolit pools i S. aureus under in vitro vækst i et rigt, komplekst medium. Som bevis for princippet, sammenlignede vi metabolitprofiler mellem methicillinmodtagelig S. aureus osteomyelitis isolere UAMS-1 (vildtype [WT]) og en isogen stamme, der mangler den globale transkriptionel regulator Cody (Δ Cody) 26. Steady-state blev eksponentielle kulturer af WT og Cody stammer etableret i…

Discussion

Alle små molekyler metabolitter forbundet med hinanden via deres fælles oprindelse i de centrale metaboliske veje. Under eksponentiel vækst, bakterieceller er i biologisk og metabolisk stabil tilstand, tilvejebringelse af et øjebliksbillede af den fysiologiske tilstand under specifikke betingelser. Cody overvåger næringsstof tilstrækkelighed ved at reagere på ILV og GTP. Som ILV og GTP pools dråbe, er Cody aktivitet sandsynligvis nedsættes gradvis, indstilling af ekspression af dens målgener til at tilpasse s…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbejde blev finansieret delvist af en NIH Pathway til Independence Award (give GM 099.893) og fakultet startup midler til SRB samt et forskningsprojekt Grant (give GM 042.219). De finansieringskilderne havde ingen rolle i studie design, dataindsamling og fortolkning, eller beslutningen om at indsende arbejde til offentliggørelse.

Materials

Material/Equipmenta
DeLong Culture Flask (250 ml) Belco 2510-00250
Sidearm Flask, 500 ml Pyrex 5340
3-hole Rubber Stopper, #7 Fisher 14-131E
Stainless Steel Filter holder/frit VWR 89428-936
Petri Dish, 35 mm Corning 430588 Not tissue culture treated
Mixed cellulose ester membrane, 0.22 μm pore size Millipore GSWP02500
Impact-resistant tubes, 2 ml USA Scientific 1420-9600
Silica Beads, 0.1 mm Biospec Products Inc 11079101Z
Precellys 24 homogenizer Bertin Instruments EQ03119-200-RD000.0
Micro BCA Protein Assay Kit Pierce (Thermo Scientific) 23235
Cogent Diamond hydride type C column Agilent 70000-15P-2
Accurate-Mass Time-of-Flight (TOF) LC-MS, 6200 Series Agilent G6230B
Quat Pump, 1290 Series Agilent G4204A 
Bin Pump, 1290 Series Agilent G4220A 
Valve Drive, 1290 Series Agilent G1107A 
Isocratic Pump, 1290 Series Agilent G1310B 
TCC, 1290 Series Agilent G1316C 
Sampler, 1290 Series Agilent G4226A 
Thermostat, 1290 Series Agilent G1330B 
Name Company Catalog Number Comments
Chemical
Tryptic Soy Broth Becton Dickinson 211825
Difco Agar, Granulated Becton Dickinson 214530 Solid media contains 1.5% [w/v] agar
Phosphate-buffered saline (pH 7.4) 10X Ambion AM9624 Dilute fresh to 1X with ultra-pure water
Acetonitrile Fisher Scientific A955-500 Optima LC-MS
Methanol Fisher Scientific A456-500 Optima LC-MS; toxic
Formic Acid Sigma Aldrich 94318 For mass spectrometry, 98%
Name Company Catalog Number Comments
Software
MassHunter Agilent G3337AA
Bacterial Strain Species Strain Genotype
SRB 337 Staphylococcus aureus USA200 MSSA UAMS-1 wild type
SRB 372 Staphylococcus aureus USA200 MSSA UAMS-1 ΔcodY::erm
aChemicals and materials listed are specific to the method described and do not include standard laboratory chemicals or supplies.

References

  1. Hood, M. I., Skaar, E. P. Nutritional immunity: transition metals at the pathogen-host interface. Nat. Rev. Microbiol. 10 (8), 525-537 (2012).
  2. Weinberg, E. D. Clinical enhancement of nutritional immunity. Comp. Ther. 1 (5), 38-40 (1975).
  3. Ibberson, C. B., et al. Staphylococcus aureus hyaluronidase is a CodY-regulated virulence factor. Infect. Immun. 82 (10), 4253-4264 (2014).
  4. Lee, C. Y., Iandolo, J. J. Mechanism of bacteriophage conversion of lipase activity in Staphylococcus aureus. J. Bacteriol. 164 (1), 288-293 (1985).
  5. Olson, M. E., et al. Staphylococcus aureus nuclease is an SaeRS-dependent virulence factor. Infect. Immun. 81 (4), 1316-1324 (2013).
  6. Somerville, G. A., Proctor, R. A. At the crossroads of bacterial metabolism and virulence factor synthesis in Staphylococci. Microbiol. Mol. Biol. Rev. 73 (2), 233-248 (2009).
  7. Seidl, K., et al. Staphylococcus aureus CcpA affects virulence determinant production and antibiotic resistance. Antimicrob. Agents Chemother. 50 (4), 1183-1194 (2006).
  8. Richardson, A. R., Somerville, G. A., Sonenshein, A. L. Regulating the intersection of metabolism and pathogenesis in Gram-positive bacteria. Microbiol. Spectr. 3 (3), 1-27 (2015).
  9. Geiger, T., et al. Role of the (p)ppGpp synthase RSH, a RelA/SpoT homolog, in stringent response and virulence of Staphylococcus aureus. Infect. Immun. 78 (5), 1873-1883 (2010).
  10. Gaupp, R., et al. RpiRc is a pleiotropic effector of virulence determinant synthesis and attenuates pathogenicity in Staphylococcus aureus. Infect. Immun. 84 (7), 2031-2041 (2016).
  11. Serror, P., Sonenshein, A. L. Interaction of CodY, a novel Bacillus subtilis DNA-binding protein, with the dpp promoter region. Mol. Microbiol. 20 (4), 843-852 (1996).
  12. Sonenshein, A. L. CodY, a global regulator of stationary phase and virulence in Gram-positive bacteria. Curr. Opin. Microbiol. 8 (2), 203-207 (2005).
  13. Brinsmade, S. R. CodY, a master integrator of metabolism and virulence in Gram-positive bacteria. Curr. Genet. , (2016).
  14. Molle, V., et al. Additional targets of the Bacillus subtilis global regulator CodY identified by chromatin immunoprecipitation and genome-wide transcript analysis. J. Bacteriol. 185 (6), 1911-1922 (2003).
  15. Moses, S., et al. Proline utilization by Bacillus subtilis: Uptake and catabolism. J. Bacteriol. 194 (4), 745-758 (2012).
  16. Lobel, L., Herskovits, A. A. Systems level analyses reveal multiple regulatory activities of CodY controlling metabolism, motility, and virulence in Listeria monocytogenes. PLoS Genet. 12 (2), 1-27 (2016).
  17. Belitsky, B. R., Sonenshein, A. L. CodY-mediated regulation of guanosine uptake in Bacillus subtilis. J. Bacteriol. 193 (22), 6276-6287 (2011).
  18. den Hengst, C. D., Buist, G., Nauta, A., Van Sinderen, D., Kuipers, O. P., Kok, J. Probing direct interactions between CodY and the oppD promoter of Lactococcus lactis. Microbiol. 187 (2), 512-521 (2005).
  19. Fisher, S. H. Regulation of nitrogen metabolism in Bacillus subtilis: vive la différence. Mol. Microbiol. 32 (2), 223-232 (1999).
  20. Dineen, S. S., McBride, S. M., Sonenshein, A. L. Integration of metabolism and virulence by Clostridium difficile CodY. J. Bacteriol. 192 (20), 5350-5362 (2010).
  21. Dineen, S. S., Villapakkam, A. C., Nordman, J. T., Sonenshein, A. L. Repression of Clostridium difficile toxin gene expression by CodY. Mol. Microbiol. 66 (1), 206-219 (2007).
  22. Hendriksen, W. T., et al. CodY of Streptococcus pneumoniae: Link between nutritional gene regulation and colonization. J. Bacteriol. 190 (2), 590-601 (2008).
  23. Bennett, H. J., et al. Characterization of relA and codY mutants of Listeria monocytogenes: Identification of the CodY regulon and its role in virulence. Mol. Microbiol. 63 (5), 1453-1467 (2007).
  24. Stenz, L., Francois, P., Whiteson, K., Wolz, C., Linder, P., Schrenzel, J. The CodY pleiotropic repressor controls virulence in Gram-positive pathogens. FEMS Immunol. and Med. Microbiol. 62 (2), 123-139 (2011).
  25. Majerczyk, C. D., et al. Direct targets of CodY in Staphylococcus aureus. J. Bacteriol. 192 (11), 2861-2877 (2010).
  26. Majerczyk, C. D., Sadykov, M. R., Luong, T. T., Lee, C., Somerville, G. A., Sonenshein, A. L. Staphylococcus aureus CodY negatively regulates virulence gene expression. J. Bacteriol. 190 (7), 2257-2265 (2008).
  27. Pohl, K., et al. CodY in Staphylococcus aureus: A regulatory link between metabolism and virulence gene expression. J. Bacteriol. 191 (9), 2953-2963 (2009).
  28. Sonenshein, A. L. Control of key metabolic intersections in Bacillus subtilis. Nat. Rev. Microbiol. 5 (12), 917-927 (2007).
  29. Brinsmade, S. R., et al. Hierarchical expression of genes controlled by the Bacillus subtilis global regulatory protein CodY. Proc. Nat. Acad. Sci. U.S.A. 111 (22), 2-7 (2014).
  30. Waters, N. R., et al. A spectrum of CodY activities drives metabolic reorganization and virulence gene expression in Staphylococcus aureus. Mol. Microbiol. 101 (3), 495-514 (2016).
  31. Zhou, B., Xiao, J. F., Tuli, L., Ressom, H. W. LC-MS-based metabolomics. Mol. Biosyst. 8 (2), 470-481 (2012).
  32. Somerville, G. A., et al. Staphylococcus aureus aconitase inactivation unexpectedly inhibits post-exponential-phase growth and enhances stationary-phase survival. Infect. Immun. 70 (11), 6373-6382 (2002).
  33. Somerville, G. A., Said-Salim, B., Wickman, J. M., Raffel, S. J., Kreiswirth, B. N., Musser, J. M. Correlation of acetate catabolism and growth yield in Staphylococcus aureus: Implications for host-pathogen interactions. Infect. Immun. 71 (8), 4724-4732 (2003).
  34. Brinsmade, S. R., Kleijn, R. J., Sauer, U., Sonenshein, A. L. Regulation of CodY activity through modulation of intracellular branched-chain amino acid pools. J. Bacteriol. 192 (24), 6357-6368 (2010).
  35. Kaiser, J. C., Omer, S., Sheldon, J. R., Welch, I., Heinrichs, D. E. Role of BrnQ1 and BrnQ2 in branched-chain amino acid transport and virulence in Staphylococcus aureus. Infect. Immun. 83 (3), 1019-1029 (2015).
  36. Ledala, N., Zhang, B., Seravalli, J., Powers, R., Somerville, G. A. Influence of iron and aeration on Staphylococcus aureus growth, metabolism, and transcription. J. Bacteriol. 196 (12), 2178-2189 (2014).
  37. Novick, R. P. Autoinduction and signal transduction in the regulation of staphylococcal virulence. Mol. Micorbiol. 48 (6), 1429-1449 (2003).
  38. Pesek, J. J., Matyska, M. T., Fischer, S. M., Sana, T. R. Analysis of hydrophilic metabolites by high-performance liquid chromatography-mass spectrometry using a silica hydride-based stationary phase. J. Chromatog. A. 1204 (1), 48-55 (2008).
  39. Guan, X., Hoffman, B., Dwivedi, C., Matthees, D. P. A simultaneous liquid chromatography/mass spectrometric assay of glutathione, cysteine, homocysteine and their disulfides in biological samples. J. Pharm. Biomed. Anal. 31 (2), 251-261 (2003).
  40. Sporty, J. L., Kabir, M. M., Turteltaub, K. W., Ognibene, T., Lin, S. J., Bench, G. Single sample extraction protocol for the quantification of NAD and NADH redox states in Saccharomyces cerevisiae. J. Sep. Sci. 31 (18), 3202-3211 (2008).
  41. Rabinowitz, J. D., Kimball, E. Acidic acetonitrile for cellular metabolome extraction from Escherichia coli. Anal. Chem. 79 (16), 6167-6173 (2007).
  42. Somerville, G. A., Powers, R. Growth and preparation of Staphylococcus epidermidis for NMR metabolomic analysis. Methods Mol. Biol. 1106, 71-91 (2014).
  43. Roux, A., Todd, D. A., Velazquez, J. V., Cech, N. B., Sonenshein, A. L. CodY-Mediated regulation of the Staphylococcus aureus Agr system integrates nutritional and population density signals. J. Bacteriol. 196 (6), 1184-1196 (2014).
  44. Guillet, J., Hallier, M., Felden, B. Emerging functions for the Staphylococcus aureus RNome. PLoS Pathog. 9 (12), 1003767 (2013).
  45. Sauer, U., et al. Metabolic flux ratio analysis of genetic and environmental modulations of Escherichia coli central carbon metabolism. J. Bacteriol. 181 (21), 6679-6688 (1999).
  46. Niittylae, T., Chaudhuri, B., Sauer, U., Frommer, W. B. Comparison of Quantitative Metabolite Imaging Tools and Carbon-13 Techniques for Fluxomics. Methods Mol. Biol. 553 (1), 355-372 (2009).
  47. de Carvalho, L. P. S., Fischer, S. M., Marrero, J., Nathan, C., Ehrt, S., Rhee, K. Y. Metabolomics of Mycobacterium tuberculosis reveals compartmentalized co-catabolism of carbon substrates. Chem. Biol. 17 (10), 1122-1131 (2010).
  48. Weisenberg, S. A., Butterfield, T. R., Fischer, S. M., Rhee, K. Y. Suitability of silica hydride stationary phase, aqueous normal phase chromatography for untargeted metabolomic profiling of Enterococcus faecium and Staphylococcus aureus. J. Sep. Sci. 32 (13), 2262-2265 (2009).
check_url/55558?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Samuels, D. J., Wang, Z., Rhee, K. Y., Brinsmade, S. R. A Tandem Liquid Chromatography–Mass Spectrometry-based Approach for Metabolite Analysis of Staphylococcus aureus. J. Vis. Exp. (121), e55558, doi:10.3791/55558 (2017).

View Video