Summary

Тандем жидкостной хроматографии на основе подхода для анализа метаболитов<em> Золотистый стафилококк</em

Published: March 28, 2017
doi:

Summary

Здесь мы опишем протокол для экстракции метаболитов из золотистого стафилококка и их последующего анализа с помощью жидкостной хроматографии и масс – спектрометрии.

Abstract

В попытке сорвать бактериальные патогены, хозяева часто ограничивают доступность питательных веществ в месте инфекции. Это ограничение может изменить содержания ключевых метаболитов, которые регуляторные факторы отвечают, регулируя клеточный метаболизм. В последние годы ряд белков и РНК стали важными регуляторами экспрессии генов вирулентности. Так, например, белок Cody реагирует на уровни разветвленных аминокислот и ГТФ и широко сохраняется в условиях низкой G + C грамположительных бактерий. В качестве глобального регулятора в стафилококк, Cody контролирует экспрессию десятков вирулентности и метаболических генов. Мы предполагаем , что золотистый стафилококк использует Коди, в частности, для изменения его метаболического состояния в целях адаптации к питательным ограничивающим условиям , потенциально встречающимся в принимающей среде. Эта рукопись описывает способ экстракции и анализа метаболитов из золотистого стафилококка с использованием жидкостной хроматографии в сочетании с масс – спектрометрическихtrometry, протокол, который был разработан, чтобы проверить эту гипотезу. Метод также подчеркивает лучшие практики, которые будут обеспечивать строгость и воспроизводимость, такие как поддержание биологического устойчивого состояния и постоянная аэрации без использования непрерывных культур хемостатических. По отношению к USA200 метициллин-чувствительных золотистого стафилококка изолировать UAMS-1 родительского штамма, изогенных Cody мутант показал значительное увеличение аминокислот , полученных из аспартата (например, треонин и изолейцин) и уменьшается в их предшественников (например, аспартат и О -acetylhomoserine ). Эти результаты хорошо коррелируют с данными , полученными транскрипционных с РНК-сл анализа: гены в этих путей были повышающей регуляции между 10- и 800-кратного в нуль – мутанта Cody. Сцепление глобальных анализов транскриптома и метабол может показать, как бактерии изменяют свой метаболизм, когда сталкиваются с экологическим или питательным стрессом, обеспечивая потенциальное понимание в Physiological изменения, связанные с истощением питательных веществ испытали во время инфекции. Такие открытия могут проложить путь к разработке новых антибактериальных и терапевтических средств.

Introduction

Бактериальные патогены должны бороться со многими проблемами в пределах принимающей среды. В дополнении к прямой атаке иммунных клеток, хозяин также изолирует питательные вещества , необходимые для выживания бактерий и репликации, генерирующие питательная иммунитета 1, 2. Чтобы выжить эти враждебные среды, бактериальные патогены развертывания факторов вирулентности. Некоторые из этих факторов позволяет бактериям уклоняться от иммунного ответа; Другие факторы включают секретируются пищеварительные ферменты, такие как гиалуронидаза, thermonuclease, и липазы, которые могут позволить бактерии пополнить недостающие питательные вещества, потребляя ткани , полученные составляющие 3, 4, 5. В самом деле, бактерии развивались регуляторные системы , которые связывают физиологическое состояние клетки к продукции факторов вирулентности 6, 7, <s до класса = "внешних ссылок"> 8, 9, 10.

Все больше данных указывает на Коди в качестве критического регулятора, связывающего обмен веществ и вирулентность. Несмотря на то, впервые обнаружен в Bacillus зиЫШз как репрессор гена 11 дипептид пермеазы (ДПП), Cody теперь известно, производится почти всеми низкими G + C , грам-положительных бактерий , 12, 13 и регулирует множество генов , участвующих в угле и азота , метаболизм 14, 15, 16, 17, 18, 19. В патогенных видов, Cody также контролирует экспрессию некоторых из наиболее важных генов вирулентности 20, 21,. эф "> 22, 23, 24, 25, 26, 27 Cody активируется в качестве белка ДНК-связывающего два класса лигандов: с разветвленной цепью аминокислот (ВСАА; изолейцин, лейцин и валин [РКН]) и ГТФ . Когда эти питательные вещества в изобилии, Cody репрессирует (или в некоторых случаях, стимулирует) транскрипцию. Поскольку эти питательные вещества становятся ограниченными, активность Cody постепенно уменьшается, что приводит к градуированному транскрипционному ответу, который перенаправляет предшественник с помощью различных метаболических путей, связанных с центральным метаболизмом 28, 29, 30.
Тандем жидкостной хроматографии в сочетании с масс – спектрометрией (ЖХ-МС) представляет собой мощный метод , который может точно определить и количественно малые молекулы внутриклеточных метаболитов 31. В сочетании с Закавкriptome анализ (например, РНК-Seq), этот аналитический рабочий процесс может дать представление о физиологических изменениях , которые происходят в ответ на экологический или питательный стресс. Здесь мы представляем метод для экстракции метаболита из клеток золотистого стафилококка и последующего анализа с помощью LC-MS. Этот подход был использован для демонстрации плеотропных эффектов Кодьте на золотистом стафилококке физиологии.

Protocol

1. Приготовление буферных растворов Подготовка фосфатно-солевого буфера (PBS,; рН 7,4) путем разбавления исходного раствора 10х PBS до конечной концентрации 1х с сверхчистых (дистиллированной и деионизированной) водой. Готовят раствор закалки путем объединения 2 мл ацетонитрила, 2 …

Representative Results

Мы провели анализ внутриклеточных пулов метаболита в золотистого стафилококка в процессе роста в пробирке в богатой, сложной среде. В качестве доказательства принципа, мы сравнили метаболит профили между метициллиночувствительным золотистым стафилокок…

Discussion

Все метаболиты малых молекул связаны друг с другом через их общее происхождение в центральных метаболических путях. Во время экспоненциального роста, бактериальные клетки находятся в биологическом и метаболическом стационарном состоянии, обеспечивая снимок физиологического состоя…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Эта работа была частично финансируется с помощью NIH Пути к независимости премии (грант GM 099893) и запуск факультета средств на СРБ, а также научно-исследовательский грант проекта (грант GM 042219). В спонсорам не играет никакой роли в дизайн исследования, сбора и интерпретации данных, или решение представить работу для публикации.

Materials

Material/Equipmenta
DeLong Culture Flask (250 ml) Belco 2510-00250
Sidearm Flask, 500 ml Pyrex 5340
3-hole Rubber Stopper, #7 Fisher 14-131E
Stainless Steel Filter holder/frit VWR 89428-936
Petri Dish, 35 mm Corning 430588 Not tissue culture treated
Mixed cellulose ester membrane, 0.22 μm pore size Millipore GSWP02500
Impact-resistant tubes, 2 ml USA Scientific 1420-9600
Silica Beads, 0.1 mm Biospec Products Inc 11079101Z
Precellys 24 homogenizer Bertin Instruments EQ03119-200-RD000.0
Micro BCA Protein Assay Kit Pierce (Thermo Scientific) 23235
Cogent Diamond hydride type C column Agilent 70000-15P-2
Accurate-Mass Time-of-Flight (TOF) LC-MS, 6200 Series Agilent G6230B
Quat Pump, 1290 Series Agilent G4204A 
Bin Pump, 1290 Series Agilent G4220A 
Valve Drive, 1290 Series Agilent G1107A 
Isocratic Pump, 1290 Series Agilent G1310B 
TCC, 1290 Series Agilent G1316C 
Sampler, 1290 Series Agilent G4226A 
Thermostat, 1290 Series Agilent G1330B 
Name Company Catalog Number Comments
Chemical
Tryptic Soy Broth Becton Dickinson 211825
Difco Agar, Granulated Becton Dickinson 214530 Solid media contains 1.5% [w/v] agar
Phosphate-buffered saline (pH 7.4) 10X Ambion AM9624 Dilute fresh to 1X with ultra-pure water
Acetonitrile Fisher Scientific A955-500 Optima LC-MS
Methanol Fisher Scientific A456-500 Optima LC-MS; toxic
Formic Acid Sigma Aldrich 94318 For mass spectrometry, 98%
Name Company Catalog Number Comments
Software
MassHunter Agilent G3337AA
Bacterial Strain Species Strain Genotype
SRB 337 Staphylococcus aureus USA200 MSSA UAMS-1 wild type
SRB 372 Staphylococcus aureus USA200 MSSA UAMS-1 ΔcodY::erm
aChemicals and materials listed are specific to the method described and do not include standard laboratory chemicals or supplies.

References

  1. Hood, M. I., Skaar, E. P. Nutritional immunity: transition metals at the pathogen-host interface. Nat. Rev. Microbiol. 10 (8), 525-537 (2012).
  2. Weinberg, E. D. Clinical enhancement of nutritional immunity. Comp. Ther. 1 (5), 38-40 (1975).
  3. Ibberson, C. B., et al. Staphylococcus aureus hyaluronidase is a CodY-regulated virulence factor. Infect. Immun. 82 (10), 4253-4264 (2014).
  4. Lee, C. Y., Iandolo, J. J. Mechanism of bacteriophage conversion of lipase activity in Staphylococcus aureus. J. Bacteriol. 164 (1), 288-293 (1985).
  5. Olson, M. E., et al. Staphylococcus aureus nuclease is an SaeRS-dependent virulence factor. Infect. Immun. 81 (4), 1316-1324 (2013).
  6. Somerville, G. A., Proctor, R. A. At the crossroads of bacterial metabolism and virulence factor synthesis in Staphylococci. Microbiol. Mol. Biol. Rev. 73 (2), 233-248 (2009).
  7. Seidl, K., et al. Staphylococcus aureus CcpA affects virulence determinant production and antibiotic resistance. Antimicrob. Agents Chemother. 50 (4), 1183-1194 (2006).
  8. Richardson, A. R., Somerville, G. A., Sonenshein, A. L. Regulating the intersection of metabolism and pathogenesis in Gram-positive bacteria. Microbiol. Spectr. 3 (3), 1-27 (2015).
  9. Geiger, T., et al. Role of the (p)ppGpp synthase RSH, a RelA/SpoT homolog, in stringent response and virulence of Staphylococcus aureus. Infect. Immun. 78 (5), 1873-1883 (2010).
  10. Gaupp, R., et al. RpiRc is a pleiotropic effector of virulence determinant synthesis and attenuates pathogenicity in Staphylococcus aureus. Infect. Immun. 84 (7), 2031-2041 (2016).
  11. Serror, P., Sonenshein, A. L. Interaction of CodY, a novel Bacillus subtilis DNA-binding protein, with the dpp promoter region. Mol. Microbiol. 20 (4), 843-852 (1996).
  12. Sonenshein, A. L. CodY, a global regulator of stationary phase and virulence in Gram-positive bacteria. Curr. Opin. Microbiol. 8 (2), 203-207 (2005).
  13. Brinsmade, S. R. CodY, a master integrator of metabolism and virulence in Gram-positive bacteria. Curr. Genet. , (2016).
  14. Molle, V., et al. Additional targets of the Bacillus subtilis global regulator CodY identified by chromatin immunoprecipitation and genome-wide transcript analysis. J. Bacteriol. 185 (6), 1911-1922 (2003).
  15. Moses, S., et al. Proline utilization by Bacillus subtilis: Uptake and catabolism. J. Bacteriol. 194 (4), 745-758 (2012).
  16. Lobel, L., Herskovits, A. A. Systems level analyses reveal multiple regulatory activities of CodY controlling metabolism, motility, and virulence in Listeria monocytogenes. PLoS Genet. 12 (2), 1-27 (2016).
  17. Belitsky, B. R., Sonenshein, A. L. CodY-mediated regulation of guanosine uptake in Bacillus subtilis. J. Bacteriol. 193 (22), 6276-6287 (2011).
  18. den Hengst, C. D., Buist, G., Nauta, A., Van Sinderen, D., Kuipers, O. P., Kok, J. Probing direct interactions between CodY and the oppD promoter of Lactococcus lactis. Microbiol. 187 (2), 512-521 (2005).
  19. Fisher, S. H. Regulation of nitrogen metabolism in Bacillus subtilis: vive la différence. Mol. Microbiol. 32 (2), 223-232 (1999).
  20. Dineen, S. S., McBride, S. M., Sonenshein, A. L. Integration of metabolism and virulence by Clostridium difficile CodY. J. Bacteriol. 192 (20), 5350-5362 (2010).
  21. Dineen, S. S., Villapakkam, A. C., Nordman, J. T., Sonenshein, A. L. Repression of Clostridium difficile toxin gene expression by CodY. Mol. Microbiol. 66 (1), 206-219 (2007).
  22. Hendriksen, W. T., et al. CodY of Streptococcus pneumoniae: Link between nutritional gene regulation and colonization. J. Bacteriol. 190 (2), 590-601 (2008).
  23. Bennett, H. J., et al. Characterization of relA and codY mutants of Listeria monocytogenes: Identification of the CodY regulon and its role in virulence. Mol. Microbiol. 63 (5), 1453-1467 (2007).
  24. Stenz, L., Francois, P., Whiteson, K., Wolz, C., Linder, P., Schrenzel, J. The CodY pleiotropic repressor controls virulence in Gram-positive pathogens. FEMS Immunol. and Med. Microbiol. 62 (2), 123-139 (2011).
  25. Majerczyk, C. D., et al. Direct targets of CodY in Staphylococcus aureus. J. Bacteriol. 192 (11), 2861-2877 (2010).
  26. Majerczyk, C. D., Sadykov, M. R., Luong, T. T., Lee, C., Somerville, G. A., Sonenshein, A. L. Staphylococcus aureus CodY negatively regulates virulence gene expression. J. Bacteriol. 190 (7), 2257-2265 (2008).
  27. Pohl, K., et al. CodY in Staphylococcus aureus: A regulatory link between metabolism and virulence gene expression. J. Bacteriol. 191 (9), 2953-2963 (2009).
  28. Sonenshein, A. L. Control of key metabolic intersections in Bacillus subtilis. Nat. Rev. Microbiol. 5 (12), 917-927 (2007).
  29. Brinsmade, S. R., et al. Hierarchical expression of genes controlled by the Bacillus subtilis global regulatory protein CodY. Proc. Nat. Acad. Sci. U.S.A. 111 (22), 2-7 (2014).
  30. Waters, N. R., et al. A spectrum of CodY activities drives metabolic reorganization and virulence gene expression in Staphylococcus aureus. Mol. Microbiol. 101 (3), 495-514 (2016).
  31. Zhou, B., Xiao, J. F., Tuli, L., Ressom, H. W. LC-MS-based metabolomics. Mol. Biosyst. 8 (2), 470-481 (2012).
  32. Somerville, G. A., et al. Staphylococcus aureus aconitase inactivation unexpectedly inhibits post-exponential-phase growth and enhances stationary-phase survival. Infect. Immun. 70 (11), 6373-6382 (2002).
  33. Somerville, G. A., Said-Salim, B., Wickman, J. M., Raffel, S. J., Kreiswirth, B. N., Musser, J. M. Correlation of acetate catabolism and growth yield in Staphylococcus aureus: Implications for host-pathogen interactions. Infect. Immun. 71 (8), 4724-4732 (2003).
  34. Brinsmade, S. R., Kleijn, R. J., Sauer, U., Sonenshein, A. L. Regulation of CodY activity through modulation of intracellular branched-chain amino acid pools. J. Bacteriol. 192 (24), 6357-6368 (2010).
  35. Kaiser, J. C., Omer, S., Sheldon, J. R., Welch, I., Heinrichs, D. E. Role of BrnQ1 and BrnQ2 in branched-chain amino acid transport and virulence in Staphylococcus aureus. Infect. Immun. 83 (3), 1019-1029 (2015).
  36. Ledala, N., Zhang, B., Seravalli, J., Powers, R., Somerville, G. A. Influence of iron and aeration on Staphylococcus aureus growth, metabolism, and transcription. J. Bacteriol. 196 (12), 2178-2189 (2014).
  37. Novick, R. P. Autoinduction and signal transduction in the regulation of staphylococcal virulence. Mol. Micorbiol. 48 (6), 1429-1449 (2003).
  38. Pesek, J. J., Matyska, M. T., Fischer, S. M., Sana, T. R. Analysis of hydrophilic metabolites by high-performance liquid chromatography-mass spectrometry using a silica hydride-based stationary phase. J. Chromatog. A. 1204 (1), 48-55 (2008).
  39. Guan, X., Hoffman, B., Dwivedi, C., Matthees, D. P. A simultaneous liquid chromatography/mass spectrometric assay of glutathione, cysteine, homocysteine and their disulfides in biological samples. J. Pharm. Biomed. Anal. 31 (2), 251-261 (2003).
  40. Sporty, J. L., Kabir, M. M., Turteltaub, K. W., Ognibene, T., Lin, S. J., Bench, G. Single sample extraction protocol for the quantification of NAD and NADH redox states in Saccharomyces cerevisiae. J. Sep. Sci. 31 (18), 3202-3211 (2008).
  41. Rabinowitz, J. D., Kimball, E. Acidic acetonitrile for cellular metabolome extraction from Escherichia coli. Anal. Chem. 79 (16), 6167-6173 (2007).
  42. Somerville, G. A., Powers, R. Growth and preparation of Staphylococcus epidermidis for NMR metabolomic analysis. Methods Mol. Biol. 1106, 71-91 (2014).
  43. Roux, A., Todd, D. A., Velazquez, J. V., Cech, N. B., Sonenshein, A. L. CodY-Mediated regulation of the Staphylococcus aureus Agr system integrates nutritional and population density signals. J. Bacteriol. 196 (6), 1184-1196 (2014).
  44. Guillet, J., Hallier, M., Felden, B. Emerging functions for the Staphylococcus aureus RNome. PLoS Pathog. 9 (12), 1003767 (2013).
  45. Sauer, U., et al. Metabolic flux ratio analysis of genetic and environmental modulations of Escherichia coli central carbon metabolism. J. Bacteriol. 181 (21), 6679-6688 (1999).
  46. Niittylae, T., Chaudhuri, B., Sauer, U., Frommer, W. B. Comparison of Quantitative Metabolite Imaging Tools and Carbon-13 Techniques for Fluxomics. Methods Mol. Biol. 553 (1), 355-372 (2009).
  47. de Carvalho, L. P. S., Fischer, S. M., Marrero, J., Nathan, C., Ehrt, S., Rhee, K. Y. Metabolomics of Mycobacterium tuberculosis reveals compartmentalized co-catabolism of carbon substrates. Chem. Biol. 17 (10), 1122-1131 (2010).
  48. Weisenberg, S. A., Butterfield, T. R., Fischer, S. M., Rhee, K. Y. Suitability of silica hydride stationary phase, aqueous normal phase chromatography for untargeted metabolomic profiling of Enterococcus faecium and Staphylococcus aureus. J. Sep. Sci. 32 (13), 2262-2265 (2009).

Play Video

Cite This Article
Samuels, D. J., Wang, Z., Rhee, K. Y., Brinsmade, S. R. A Tandem Liquid Chromatography–Mass Spectrometry-based Approach for Metabolite Analysis of Staphylococcus aureus. J. Vis. Exp. (121), e55558, doi:10.3791/55558 (2017).

View Video