Summary

Intraportal transplantasjon av bukspyttkjertelen holmer i musemodell

Published: May 05, 2018
doi:

Summary

Bukspyttkjertelen Holme transplantasjon er en måte å oppnå normoglycemia i type 1 diabetes. Denne artikkelen fokuserer på transplantasjon teknikken gjennom intraportal ruten å opprettholde normale blodsukkeret hos diabetiker mus.

Abstract

Bukspyttkjertelen Holme transplantasjon å redusere hyperglykemi er svært vellykket i gnagere med kjemisk indusert diabetes. Webområdet for vanligste transplantasjon i eksperimentell Holme transplantasjon er nyre kapselen. Men som mindre er kjent om samspillet av bukspyttkjertelen holmer med blod bestanddeler, fornuftig det også å bruke portalen blodåre tilnærming i eksperimentell Holme transplantasjon.

Denne protokollen demonstrerer en intraportal Holme transplantasjon teknikk i NMRI naken mus. Streptozotocin (180 mg/kg) injiseres intraperitoneally for å indusere hyperglykemi i mottakerens mus. De blir betraktet som diabetiker på en ikke-faste blodsukkernivå større enn 20 mmol/L. Én dag før transplantasjon, er musen bukspyttkjertelen holmer isolert fra donor bukspyttkjertelen av collagenase fordøyelse; minst 350 holmer benyttes per diabetiker mottaker. Avhengig av Holme isolasjon avkastningen, benyttes to eller flere donor mus per mottaker. Etter natten kultur på 37 ° C administreres holmer i mottakerens leveren via portalen blodåre. Etter operasjonen, mus er beskyttet i rødt Makrolon hus og observert til er våken. Denne protokollen opprettholder glykemisk kontroll for 120 dager i syngeneic mus og 15 dager i allogene mus.

Introduction

Holme transplantasjon er en lovende tilnærming til behandling av type 1 diabetes mellitus1. Første forsøk på å overføre et sauer bukspyttkjertelen fragment til en diabetiker pasient ble utført av Watson Williams i 1893. Men et stort gjennombrudd i klinisk Holme transplantasjon ble oppnådd med Edmonton-protokollen, og deretter en rekke nasjonale programmer ble utviklet2. I siste, flere steder, som benmargen, omental veske, intramuskulær regionen, mage slimhinnen, milt og nyre capsule, ble undersøkt i preklinisk modeller, men portalen venøse systemet er regnet som en av området passer og effektiv i kliniske programmer3,4,5,6.

Eksogene administrasjon av insulin kan erstattes av Holme infusjon i portalen blodåre. Dette er ansett som en foretrukket sted fordi oksygentilførsel er sammenlignbar med i native bukspyttkjertelen beliggenhet nedstrøms av samløpet av portalen arterien og venen. Dessuten, det er et stort område, slik at den tredimensjonale strukturen i øyene kan bli bevart, og endometrial blodkar kunne tilrettelagt5. I en mottaker diabetiker mus, 2000 mennesker eller svin Holme ekvivalenter eller 350 musen er holmer tilstrekkelig å reversere den hyperglycemic state7,8. Euglycemic nivåer ble rapportert 15 dager i musen mottaker modellen xenogeneic holmer og allogene musen til mus modell, og i mer enn 120 dager i syngeneic musen til mus transplantasjon.

Faktorer relevant for effekten av Holme transplantasjon via portalen blodåre er riktig anestesi, punktering og hemostasen9. Anestesi kan være forårsaket av innånding (5% isoflurane) eller injeksjon (Ketamin, xylazine eller pentobarbital), og stoffer er ofte kombinert. Kontroll av dybden og tidspunktet for anestesi, bør oppmerksomhet vies i delstaten musen, for eksempel fargen på slimhinnene, øye lokket, hornhinnen refleks, pustefrekvens og kroppstemperatur. Det er viktig å sikre at dyret ikke er sliter og at det overlever operasjonen. Temperaturen kan opprettholdes av ulike oppvarming enheter, for eksempel oppvarming pads, red lyspærer, etc. A varm varmeplaten er brukt til å opprettholde en temperatur på 25-30 ° C mellom musen og tabellen operasjon, som hindrer forekomst av nedkjøling. Doser av anestesi er viktig, som alle er metaboliseres i leveren, og nedsatt funksjon kan være transiently uordnede av tilførsel av Holme suspensjon. Det ideelle punktering punktet for portalen blodåre er plasseringen mellom første og andre sideelv venen.

Antall holmer og tiltenkte injeksjon volumet også påvirke utfallet av transplantasjon, høyt volum kan øke skjæring stress. En 0,2-mL volum anses hensiktsmessig for Holme transplantasjon i portalen blodåre. Puncturing såret (26-gauge p) induserer blødning fra portalen blodåre, som må stoppes på en riktig og effektiv måte. Sterilt gasbind eller en finger kan brukes med minimal trykk på stedet av punktering i ca 6 min å stoppe blødningen. Tatt sammen, portalen Holme injeksjon er effektivt og gir regulering over blodsukkernivået i kjemisk indusert diabetiker musen modeller.

Protocol

Alle prosedyrer i denne protokollen er godkjent av tysk dyr velferd lov og retningslinjer. Vurder å bruke 10 – 12 uke-gamle NMRI naken mus og C57Bl/6 mus (donor: gammel kvinne; mottaker: mannlige) gjennom eksperimenter. Bruk NMRI naken mus Holme isolering. Holde musene definerte vilkår i henhold til lokale dyr anlegget forskrifter. 1. induksjon av Diabetes ved Streptozotocin På dag -4, måle kroppen vekten av 10 til 12 uke-gamle NMRI naken mus og C57Bl/6 mus bruker en veiing maski…

Representative Results

Kompetansen til transplanterte holmer ble studert i kjemisk indusert diabetiker mus. Øyene ble transplantert via portalen venøse systemet i diabetiker mus modell. Donor-mottaker forholdet var 2:1. I syngeneic musemodell, ble to donor mus benyttet for å få 350 holmer. Øyene ble deretter transplanted i diabetiker mus. En reduksjon i blodsukkernivå ble observert på dag 1 etter transplantasjon, antyder en rolle av transplantert bukspyttkjertelen holmer i å redusere blodsukkernivå. St…

Discussion

I denne studien er intraportal ruten Holme transplantasjon utforsket. Denne protokollen er svært effektiv i lindrende diabetiker stress og grundig mulighet å utforske Holme transplantasjon studier. Denne protokollen bekrefter at ca 350 murine holmer er i stand til å reversere hyperglycemic staten. Videre ingen av musene døde under prosedyren og glykemisk kontroll ble oppnådd i alle mottakere. Kroppen vekt og blod glucose høyder innspilt regelmessig for å gjenspeile den kompetanse, standard og funksjonalitet av tra…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi ønsker å erkjenne Gundula Hertl for hennes støtte.

Materials

C57Bl/6 mice  Charles River (Sulzfeld, Germany) (10-12 weeks)
BALB/c mice Charles River (Sulzfeld, Germany) (10-12 weeks)
NMRI nude mice Charles River (Sulzfeld, Germany) (10-12 weeks)
Ketamine Bela-pharm
Xylazine CEVA TIERGESUNDHEIT GmbH
Syringe, 23G and 26G needle BD
Petri Dish Falcon 303800
NaCl Carl Roth 351007
Sterile Gauze Fuhrmann 7647-14-5
Shaking Water bath Kotterman 1501
Scissors Braun 1501
Glucose Meter  One Touch
Warm Thermal Plate Thermo Fisher
Braunol (povidone-iodide solution) B.Braun Melsungen AG 3864154
Liposic Edo – Sprinkled Ointment (eye ointment) Dr. G Mann Chem.-Pharm.  GmbH
Incubator Fa. Roth
Flow Bench Herdus
Ficoll Sigma-Aldrich 10771
5-0 Silk Suture Vicryl Braun (7.5 *1.75mm)
Michel Clamps (clips) Aesculap  BN507R
P/FCS Solution Gibco 21180-021
TCM-199 (10x) Gibco 21180-021
FCS Biowest S1810-500
Penicillin-streptomycin Gibco 15140-122
HEPES (1 M) Biochrom L 1613
Gentamycin Ratiopharm
Ciprofloxacin Fresenius Kabi
Hank's Solution Gibco 14060-040
Collagenase Roche 11213865001
Streptozotocin Calbiochem 572204
OPSITE-spray (wound healer) Smith and nephew 66004978
Reugular food Altromin
Head light LED 16042 (magnifying glass) Eschenbach 16042
Rat anti-mouse PECAM-1(CD31) monoclonal primary antibody Millipore, Chemicon CBL1337 Dilution (1:100)
Donkey anti-rat secondary antibody Dianova 712095153 Dilution (1:400)
Polyclonal guinea pig anti-insulin primay antibody Dako A0564 Dilution (1:500)
Donkey anti-guinea pig secondary antibody Dianova 706-259-148 Dilution (1:400)

References

  1. McCall, M., Shapiro, A. M. Update on islet transplantation. Cold Spring Harbor Perspectives in Medicine. 2 (7), a007823 (2012).
  2. Shapiro, A. M., et al. Islet transplantation in seven patients with type 1 diabetes mellitus using a glucocorticoid-free immunosuppressive regimen. New England Journal of Medicine. 343 (4), 230-238 (2000).
  3. Cantarelli, E., et al. Bone marrow as an alternative site for islet transplantation. Blood. 114 (20), 4566-4574 (2009).
  4. Echeverri, G. J., et al. Endoscopic gastric submucosal transplantation of islets (ENDO-STI): technique and initial results in diabetic pigs. American Journal of Transplantation. 9 (11), 2485-2496 (2009).
  5. Korsgren, O., et al. Optimising islet engraftment is critical for successful clinical islet transplantation. Diabetologia. 51 (2), 227-232 (2008).
  6. Merani, S., Toso, C., Emamaullee, J., Shapiro, A. M. Optimal implantation site for pancreatic islet transplantation. British Journal of Surgery. 95 (12), 1449-1461 (2008).
  7. Lingwal, N., et al. Inhibition of gelatinase B (matrix metalloprotease-9) activity reduces cellular inflammation and restores function of transplanted pancreatic islets. Diabetes. 61 (8), 2045-2053 (2012).
  8. Chen, C., et al. Improved intraportal islet transplantation outcome by systemic IKK-beta inhibition: NF-kappaB activity in pancreatic islets depends on oxygen availability. American Journal of Transplantation. 11 (2), 215-224 (2011).
  9. Wang, Y., Wang, T., Zhang, L. Three aspects are critical for carrying out intraportal islet transplants successfully in a diabetes mouse model. Experimental and Clinical Transplantation. 10 (3), 302-304 (2012).
  10. Neuman, J. C., Truchan, N. A., Joseph, J. W., Kimple, M. E. A method for mouse pancreatic islet isolation and intracellular cAMP determination. Journal of Visualized Experiments. (88), e50374 (2014).
  11. Zmuda, E. J., Powell, C. A., Hai, T. A method for murine islet isolation and subcapsular kidney transplantation. Journal of Visualized Experiments. (50), (2011).
  12. Rother, K. I., Harlan, D. M. Challenges facing islet transplantation for the treatment of type 1 diabetes mellitus. Journal of Clinical Investigation. 114 (7), 877-883 (2004).
  13. Su, Z., et al. Small islets are essential for successful intraportal transplantation in a diabetes mouse model. Scandinavian Journal of Immunology. 72 (6), 504-510 (2010).
  14. Rekittke, N. E., Ang, M., Rawat, D., Khatri, R., Linn, T. Regenerative Therapy of Type 1 Diabetes Mellitus: From Pancreatic Islet Transplantation to Mesenchymal Stem Cells. Stem Cells International. 2016, 22 (2016).
check_url/57559?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Khatri, R., Hussmann, B., Rawat, D., Gürol, A. O., Linn, T. Intraportal Transplantation of Pancreatic Islets in Mouse Model. J. Vis. Exp. (135), e57559, doi:10.3791/57559 (2018).

View Video