Summary

Spore adsorpsjon som Nonrecombinant Display System for enzymer og antigener

Published: March 19, 2019
doi:

Summary

Denne protokollen fokuserer på bruk av bakteriell spores som et “live” nanobiotechnological-verktøy for å adsorberes heterologous molekyler med ulike biologiske aktiviteter. Metodene for å måle effektiviteten av adsorpsjon vises også.

Abstract

Bakteriell spore er en metabolically quiescent celle, dannet av en rekke beskyttende lag rundt en dehydrert cytoplasma. Denne særegne strukturen gjør spore ekstremt stabil og motstandsdyktig og har foreslått bruk av spore som en plattform for å vise heterologous molekyler. Så langt, en rekke antigener og enzymer har vært vist på sporer av Bacillus subtilis og noen andre arter, først med en rekombinant tilnærming, og deretter, etter en enkel og effektiv nonrecombinant metode. Nonrecombinant skjermsystemet er basert på direkte opptak av heterologous molekyler på spore overflaten, unngå bygging av rekombinant stammer og utgivelsen av genmodifiserte bakterier i miljøet. Adsorbert molekyler er stabilisert og beskyttet av samspillet med sporer, som begrenser rask nedbrytning av antigener og tap av enzym aktivitet i ugunstige forhold. Når utnyttes, kan spore-adsorbert enzymer samlet lett med minimal reduksjon av aktivitet og gjenbrukes for flere reaksjon runder. I dette papiret vises slik adsorberes modell molekyler å renset sporer av B. subtilis, hvordan man skal vurdere effektiviteten av adsorpsjon og hvordan du samler brukt spores for å resirkulere dem for nye reaksjoner.

Introduction

Displaysystemer er rettet mot presentere biologisk aktive molekyler på overflaten av mikroorganismer og finne programmer i en rekke felt, fra industriell til medisinsk og miljømessige bioteknologi. I tillegg til phages1,2 og cellene i ulike Gram-negative og -positive arter3,4,5,6,7, har bakteriell sporer også vært foreslått som displaysystemer med to tilnærminger8,9.

På grunn av sin særegne struktur, nemlig en dehydrert cytoplasma omgitt av en rekke beskyttende lag10, gir spore flere fordeler sammenlignet med phage – og celle-baserte display systemer8,9. En første fordel kommer fra den ekstreme robusthet og stabilitet av sporer på forhold som ville være skadelig for alle andre celler10,11. Spore vises antigener og enzymer er stabile etter langvarig lagring ved romtemperatur12 og beskyttet mot fornedrelse ved lav pH og høye temperaturer13. En annen fordel med sporene er sikkerheten til mange spore-forming arter. B. subtilis, B. clausii, B. coagulans, og flere andre arter brukes verden over som probiotika og har vært på markedet for mennesker eller dyr bruk for tiår14,15. Dette eksepsjonelle sikkerhet posten er en opplagt generelle forutsetning for et overflaten skjermsystem og er spesielt relevant når systemet er ment for mennesker eller dyr Bruk16. En tredje er viktig fordel av en spore-baserte vise system at den ikke har begrensninger for størrelsen av molekylet som utsettes. I phage-baserte systemer, et stort heterologous protein kan påvirke strukturen av kapsid, mens celle-baserte systemer den kan påvirke strukturen i membranen eller grense/forlengelsesslanger membran translokasjon trinn17. Beskyttende lag rundt spore består av mer enn 70 ulike proteiner10 og er fleksible nok til å akseptere store utenlandske proteiner uten tydelig strukturelle feil eller nedsatt fysisk funksjon8. I tillegg med systemene spore-baserte vise er membran translokasjon av heterologous protein ikke nødvendige8,9. Faktisk er heterologous proteiner enten produsert i mor cellen cytoplasma og montert på spore som danner i samme cytoplasma eller adsorbert på eldre spore8,9.

Spore skjermen ble først innhentet av utvikle en genetisk system til ingeniør spore overflaten18. Denne genetiske systemet var basert på jeg) bygging av en genet fusjon genet koding for en spore pels protein (brukes som en bærer) og gene koding for protein skal vises – tilstedeværelsen av transcriptional og translasjonsforskning signalene fra den endogene Gene vil kontrollere uttrykket av fusion og ii) integrering av chimeric genet på B. subtilis kromosomet gi genetisk stabilitet. En rekke antigener og enzymer har blitt vist av denne rekombinant tilnærming, med ulike spore overflaten proteiner som bærere og sikte på ulike potensielle programmer, alt fra mucosal vaksine biocatalyst, biosensor, bioremediation, eller bioanalytical verktøyet8,13.

En annen tilnærming av spore har nylig vært utviklet19. Dette andre systemet nonrecombinant og avhengig av spontan og stramt opptak av molekyler på spore overflaten9. Antigener19,20 og enzymer13,21 har vist effektivt og har avdekket at denne metoden er betydelig mer effektiv enn den rekombinante. Denne nonrecombinant kan vise proteiner i opprinnelige form20 og kan også brukes med autoklaveres, død sporer19. Molekylær mekanisme adsorpsjon er ikke fullt avklart ennå. Negativ ladning og hydrophobicity av spore har blitt foreslått som egenskaper relevante for adsorpsjon13,19,22. Nylig har det vært vist at en modell protein, røde autofluorescent protein (mRFP) av den coral Discosoma, når adsorbert å spore, klarte å infiltrere gjennom overflaten lag lokalisere i indre lag23. Hvis viste gjelder for andre proteiner, kunne den interne lokaliseringen av heterologous proteiner forklare deres økt stabilitet når adsorbert sporer23.

I en fersk studie, enzymene utløse to påfølgende trinnene i xylan fornedrelse veien var uavhengig vises på sporer av B. subtilis og når ruges sammen, kunne utføre begge fornedrelse trinnene21. Sporer samlet etter reaksjonen var fortsatt aktiv og kan fortsette xylan nedbrytning etter tillegg av fersk substrat21. Selv om et tap på rundt 15% av det endelige produktet ble observert i andre reaksjon21, er gjenbruk av adsorbert enzymer for enkelt, samt flere trinn, reaksjoner en ekstra viktig fordel av spore display system.

Pan et al.24 rapportert flere tilnærming vise heterologous proteiner spore overflaten: heterologous proteiner (en endoglucanase protein og en beta-galactosidase en) produsert i mor cellen under sporulation var spontant innkapslet i forming spore pelsen, uten behovet av en operatør. Denne ekstra spore display system er en kombinasjon av metodene beskrevet så langt. Faktisk er det rekombinant siden heterologous proteiner var konstruert for å bli uttrykt i mor cellen under sporulation, mens deres montering i pelsen var spontan og derfor nonrecombinant24. Effektiviteten av visningen av denne ekstra imidlertid å være testet og sammenliknet med andre metodene ved hjelp av samme heterologous proteiner.

Nåværende protokollen ekskluderer produksjonsprosesser spore og rensing, som har vært beskrevet mye andre steder24. Det inkluderer adsorpsjon reaksjonen, evaluering av effektiviteten av adsorpsjon av dot-blotting og fluorescens mikroskopi, og resirkulering av adsorbert enzymer for ekstra reaksjon runder.

Protocol

1. adsorpsjon reaksjon Inkuber 2, 5 og 10 µg av mRFP med 2 x 109 av B. subtilis vill-type renset sporer i 200 µL av bindende buffer, 50 mM natriumsitrat, pH 4.0 (16,7 mM natriumsitrat dihydrate, 33.3 mM sitronsyre) 1t ved 25 ° C på en rocking shaker (figur 1) . Sentrifuge bindende blandinger (13 000 x g i 10 min) å smuldre vekk pellets (P2 P5 og P10) og supernatants (S2, S5 og S10). Lagre supernatants for indirekte vurdering av effektivit…

Representative Results

Vellykket adsorpsjon kan vurderes av vestlige blotting. På reaksjonen, blandingen er fraksjonert med sentrifugering og vasket, og pellets brøken (figur 1) brukes til å hente overflaten proteiner. Ekstraktet er fraksjonert av SDS polyakrylamid gel geleelektroforese (side), electrotransferred til en polyvinylidene fluor (PVDF) membran, og reagerte mot primære og sekundære antistoffer. Tilstedeværelsen av proteiner av forventede størrelsen, bare i kjøref…

Discussion

Denne spore adsorpsjon protokollen er svært enkel og grei. Reaksjonen er strengt avhengig pH i bufferen som reaksjon og effektiviteten av adsorpsjon er optimal på surt pH-verdier (pH 5.0 eller lavere). På nøytral pH forhold, effektiviteten av adsorpsjon er lav, og på alkaliske pH-verdier, adsorpsjon forekomme. Optimal adsorpsjon oppnås med et volum på 200 µL i 1,5 mL rør (eller holde et lignende forhold) på en rocking shaker.

Adsorpsjon er svært stramt, og vasker med en buffer på s…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet av «Finanziamento di Ricerca di Ateneo”til L. Baccigalupi, prosjekttittel” SP-LAY: bakteriell sporer live plattform for proteiner visning “.

Materials

0.1% Poly-L-lysine solution Sigma P8920
0.45 µm Nitrocellulose Blotting Membrane Sartorius M_Blotting_Membranes
100× objective UPlanF1  Olympus microscope equipment
Bacillus subtilis strain NCIB3610 Bacillus Genetic Stock Center 3A1
BD ACCURI C6 PLUS BD flow cytometer
BX51 Olympus Fluorescent microscope
Clarity Biorad 1705060
DP70 digital camera a Olympus microscope equipment
Goat anti-Rabbit IgG (H+L) Cross-Adsorbed Secondary Antibody, FITC Thermo fisher F-2754
Goat Anti-Rabbit IgG H&L (HRP)  Abcam ab6721
Monoclonal Anti-polyHistidine−Peroxidase antibody Sigma A7058-1VL used to detect adsorbed proteins presenting a 6xhistidine-tag at C- or N- terminal 
SecureSlip glass coverslip Sigma S1815-1PAK
Superwhite Uncharged Microscope Slides VWR 75836-190
U-CA Magnification Changer  Olympus microscope equipment

References

  1. Felici, F., et al. Peptide and protein display on the surface of filamentous bacteriophage. Biotechnology Annual Review. 1, 149-183 (1995).
  2. Cortese, R., et al. Identification of biologically active peptides using random libraries displayed on phage. Current Opinion in Biotechnology. 6, 73-80 (1995).
  3. Sousa, C., Cebolla, A., de Lorenzo, V. Enhanced metalloadsorption of bacterial cells displaying poly-His peptides. Nature Biotechnology. 14, 1017-1020 (1996).
  4. Richins, R., Kaneva, I., Mulchandani, A., Chen, W. Biodegradation of organophosphorus pesticides by surface-expressed organophosphorus hydrolase. Nature Biotechnology. 15, 984-987 (1997).
  5. Wu, J. Y., et al. Expression of immunogenic epitopes of hepatitis B surface antigen with hybrid flagellin proteins by a vaccine strain of Salmonella. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 86, 4726-4730 (1989).
  6. Newton, S. M., Jacob, C. O., Stocker, B. A. Immune response to cholera toxin epitope inserted in Salmonella flagellin. Science. 244, 70-72 (1989).
  7. Fischetti, V. A., Medaglini, D., Pozzi, G. Gram-positive commensal bacteria for mucosal vaccine delivery. Current Opinion in Biotechnology. 7, 659-666 (1996).
  8. Isticato, R., Ricca, E. Spore surface display. Microbiology Spectrum. 2 (5), (2014).
  9. Ricca, E., et al. Mucosal vaccine delivery by non-recombinant spores of Bacillus subtilis. Microbial Cell Factories. 13, 115 (2014).
  10. McKenney, P. T., Driks, A., Eichenberger, P. The Bacillus subtilis assembly and functions of the multilayered coat. Nature Reviews Microbiology. 11, 33-44 (2013).
  11. Knecht, L. D., Pasini, P., Daunert, S. Bacterial spores as platforms for bioanalytical and biomedical applications. Analytical and Bioanalytical Chemistry. 400, 977-989 (2011).
  12. Isticato, R., Cangiano, G., De Felice, M., Ricca, E., Ricca, E., Henriques, A. O., Cutting, S. M. Display of molecules on the spore surface. Bacterial Spore Formers: Probiotics and Emerging Applications. , 193-200 (2004).
  13. Sirec, T., et al. Adsorption of β-galactosidase of Alicyclobacillus acidocaldaricus wild type and mutant spores of Bacillus subtilis. Microbial Cell Factories. 11, 100 (2012).
  14. Cutting, S. M. Bacillus probiotics. Food Microbiology. 28, 214-220 (2011).
  15. Baccigalupi, L., Ricca, E., Ghelardi, E., Venema, K., Do Carmo, A. P. Non-LAB Probiotics: Spore Formers. Probiotics and Prebiotics: Current Research and Future Trends. , 93-103 (2014).
  16. Cutting, S. M., Hong, H. A., Baccigalupi, L., Ricca, E. Oral Vaccine Delivery by Recombinant Spore Probiotics. International Reviews of Immunology. 28, 487-505 (2009).
  17. Lee, S. Y., Choi, J. H., Xu, Z. Microbial cell-surface display. Trends in Biotechnology. 21, 45-52 (2003).
  18. Isticato, R., et al. Surface display of recombinant proteins on Bacillus subtilis spores. Journal of Bacteriology. 183, 6294-6301 (2001).
  19. Huang, J. M., et al. Mucosal delivery of antigens using adsorption to bacterial spores. Vaccine. 28, 1021-1030 (2010).
  20. Isticato, R., et al. Non-recombinant display of the B subunit of the heat labile toxin of Escherichia coli wild type and mutant spores of Bacillus subtilis. Microbial Cell Factories. 12, 98 (2013).
  21. Mattossovich, R., et al. Conversion of xylan by recyclable spores of Bacillus subtilis thermophilic enzymes. Microbial Cell Factories. 16, 218 (2017).
  22. Pesce, G., et al. Surface charge and hydrodynamic coefficient measurements of Bacillus subtilis by optical tweezers. Colloids and Surfaces B: Biointerfaces. 116, 568-575 (2014).
  23. Donadio, G., et al. Localization of a red fluorescence protein adsorbed on wild type and mutant spores of Bacillus subtilis. Microbial Cell Factories. 15, 153 (2016).
  24. Pan, J. G., Choi, S. K., Jung, H. C., Kim, E. J. Display of native proteins on Bacillus subtilis spores. FEMS Microbiology Letters. 358, 209-217 (2014).
  25. Cutting, S., Vander Horn, P. B., Harwood, C., Cutting, S. Genetic analysis. Molecular Biological Methods for Bacillus. , (1990).
  26. Lanzilli, M., et al. Display of the peroxiredoxin Bcp1 of Sulfolobus solfataricus probiotic spores of Bacillus megaterium. New Biotechnology. 46, 38 (2018).
check_url/59102?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Isticato, R., Ricca, E., Baccigalupi, L. Spore Adsorption as a Nonrecombinant Display System for Enzymes and Antigens. J. Vis. Exp. (145), e59102, doi:10.3791/59102 (2019).

View Video