Summary

Сочетая Неуменьшающие СДС-СТРАНИЧНЫЙ анализ и химические перекрестные ссылки для обнаружения Мультимерных комплексов, стабилизированных дисульфидными связями в клетках млекопитающих в культуре

Published: May 02, 2019
doi:

Summary

Соединений дисульфида длиной были знаны, что стабилизировали структуру много протеинов. Простой метод анализа мультимерных комплексов, стабилизированных этими связями, заключается в неуменьшении анализа СДС-СТРАНИЧКА. Здесь, этот метод проиллюстрирован путем анализировать ядерную изоформу dUTPase от людской косточки остеосаркомы клетки линии U-2 OS.

Abstract

Структуры многих белков стабилизируются с помощью ковалентных дисульфидных связей. В последние работы, эта связь была также классифицируется как пост-поступательного модификации. Таким образом, важно уметь изучать эту модификацию в живых клетках. Простой метод для анализа этих цистеин стабилизировались мультимерные комплексы через двухступенчатый метод не снижения СДС-СТРАНИЧНЫЙ анализ и формальдегид кросс-ссылок. Этот двухступенчатый метод выгоден в качестве первого шага к выявлению мультимерных комплексов, стабилизированных дисульфидными связями из-за его технической легкости и низкой стоимости эксплуатации. Здесь, человеческая кость остеосаркомы клеточной линии U-2 OS используется для иллюстрации этого метода, специально анализируя ядерную Изоформа dUTPase.

Introduction

Соединений дисульфида длиной были знаны, что стабилизировали структуру много протеинов. В последние работы, эта связь также была классифицирована как обратимые после поступательного изменения, действуя как цистеин основе “редокс переключатель”, позволяющий модуляции функции белка, местоположение и взаимодействие1,2, 3,4. Таким образом, важно иметь возможность изучить эту модификацию. Простой метод для анализа этих цистеин стабилизированных мультимерные комплексы через несокращения СДС-PAGE анализ5. Анализ СДД-страниц является методом, используемым во многих лабораториях, где результаты могут быть получены и интерпретируются быстро, легко и с минимальными затратами, и выгодно по сравнению с другими методами, используемыми для выявления дисульфидных связей, таких как масс-спектрометрия6 ,7 и круговой дихроизм8.

Одним из важных шагов в определении, если этот метод является подходящим методом для оказания помощи в исследовании является тщательное изучение первичной последовательности белка интерес застраховать есть цистеин остаток (ы) настоящее время. Еще одним полезным шагом является исследование каких-либо предыдущих кристаллических структур опубликованы или использовать Биоинформатика приложения для изучения трехмерной структуры белка интерес для визуализации, где остаток цистеина (ы) могут быть расположены. Если остаток (ы) присутствует на внешней поверхности это может быть лучшим кандидатом для формирования дисульфидной связи, а не цистеин остаток похоронен на внутренней стороне структуры. Тем не менее, важно отметить, что белки могут подвергнуться структурным изменениям после подложных взаимодействий или белков белка взаимодействий, позволяющих эти остатки затем становятся подвержены воздействию окружающей среды, а также.

Выявленные мультимерные комплексы можно затем проверить с помощью химического скрещиывания, используя формальдегид. Формальдегид является идеальным кросс-Linker для этого технику проверки из-за высокой проницаемости клеток и коротких кросс-ссылок пролета ~ 2-3 е, обеспечивая обнаружение специфических белок-белковых взаимодействий9,10. Здесь, этот метод иллюстрируется путем анализа ядерного Изоформа dUTPase из человеческой кости остеосаркомы клеточной линии U-2 OS11. Однако, этот протокол может быть адаптирован для других клеточных линий, тканей и организмов.

Protocol

1. Блокирование свободных остатков цистеина использование Йодацетамид Вырасти U-2 ячейки OS в 6 см2 блюдо до 50%-60% беглость в минимальной необходимой среде с высоким содержанием глюкозы, содержащей 10% фетальной бычьей сыворотки и 1% натрия пируват на 37 ° c в 5% CO2. Сделайт?…

Representative Results

Ядерная dutpase формирует межмолекулярную связь дисульфида, формируя стабильную конфигурацию дисульфида через взаимодействие двух остатков цистеина, расположенных на третьей аминокислоты каждого мономерного протеина11. Это показано на рисунке …

Discussion

Метод, изложенная здесь, дает прямой протокол для анализа мультимногомерных комплексов, стабилизированных через дисульфидные связи. Этот протокол может быть легко адаптирован к другим клеточных линий культуры, тканей и организмов, позволяющих для широкого спектра применений.

<p class="…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Мы с благодарностью оцениваем усилия, выдвинутые д-р Дженнифер Фишер для очистки поликлональных антител dUTPase и Керри Чиккалион за все ее усилия, чтобы помочь редактировать эту рукопись. Это исследование было частично поддержано грантом фонда здоровья Нью-Джерси (Грант #PC 11-18).

Materials

16% precast TGX gels ThermoFisher Xp00160
175 cm2 Flask Cell star 658175
18CO ATCC CRL-1459
6 cm2 dish VWR 10861-588
A549 ATCC CCL-185
Amersham ECL detection kit GE 16817200
Blot transfer apparatus Biorad 153BR76789
BME Sigma Aldrich M3148
Bradford protein reagent Biorad 5000006
Bromophenol Blue
BSA Cell signaling 99985
Cell lysis buffer Cell signaling 9803
Centrifuge Eppendor 5415D
DMEM Gibco 11330-032
Drill
EDTA Sigma Aldrich M101
Electrophoresis apparatus Invitrogen A25977
Extra thick western blotting paper ThermoFisher 88610
Fetal bovine serum Gibco 1932693
Formaldehyde ThermoFisher 28908
Glass-teflon homogenizer
Glycerol Sigma Aldrich 65516
Glycine RPI 636050
Heat block Denville 10285-D
Hepes Sigma Aldrich H0527
Hydrochloric acid VWR 2018010431
Iodoacetamide ThermoFisher 90034
Kimwipe Kimtech 34155
Methanol Pharmco 339000000
Non-fat dry milk Cell signaling 99995
PBS Sigma Aldrich P3813
PMSF Sigma Aldrich 329-98-6
Posi-click tube Denville C2170
Power supply Biorad 200120
Prestained marker ThermoFisher 26619
PVDF membrane Biorad 162-0177
Rocker Reliable Scientific 55
Saos2 ATCC HTB-85
SDS Biorad 161-0302
Secondary antibody Cell signaling 70748
Small cell scraper Tygon S-50HL class VI
Sodium chloride RPI S23020
Sodium pyruvate Gibco
Sonicator Branson 450
Sponge pad for blotting Invitrogen E19051
Stir plate Corning PC353
Sucrose Sigma Aldrich S-1888
Tris Base RPI T60040
Tris Buffered Saline, with Tween 20, pH 7.5 Sigma Aldrich SRE0031
Tris-Glycine running buffer VWR J61006
Triton X-100 Sigma Aldrich T8787
Tween 20 Sigma Aldrich P9416
U-2 OS ATCC HTB-96
X-ray film ThermoFisher 34090

References

  1. Klomsiri, C., Karplus, P. A., Poole, L. B. Cysteine-based redox switches in enzymes. Antioxidants and Redox Signaling. 14 (6), 1065-1077 (2011).
  2. Antelmann, H., Helmann, J. D. Thiol-based redox switches and gene regulation. Antioxidants and Redox Signaling. 14 (6), 1049-1063 (2011).
  3. Brandes, N., Schmitt, S., Jakob, U. Thiol-based redox switches in eukaryotic proteins. Antioxidants and Redox Signaling. 11 (5), 997-1014 (2009).
  4. Groitl, B., Jakob, U. Thiol-based redox switches. Biochimica et Biophysica Acta. 1844 (8), 1335-1343 (2014).
  5. Stern, B. D., Wilson, M., Jagus, R. Use of nonreducing SDS-PAGE for monitoring renaturation of recombinant protein synthesis initiation factor, eIF-4 alpha. Protein Expression and Purification. 4 (4), 320-327 (1993).
  6. Gorman, J. J., Wallis, T. P., Pitt, J. J. Protein disulfide bond determination by mass spectrometry. Mass Spectrometry Reviews. 21 (3), 183-216 (2002).
  7. Li, X., Yang, X., Hoang, V., Liu, Y. H. Characterization of Protein Disulfide Linkages by MS In-Source Dissociation Comparing to CID and ETD Tandem MS. Journal of the American Society for Mass Spectrometry. , (2018).
  8. Kelly, S. M., Price, N. C. The use of circular dichroism in the investigation of protein structure and function. Current Protein and Peptide Science. 1 (4), 349-384 (2000).
  9. Klockenbusch, C., Kast, J. Optimization of formaldehyde cross-linking for protein interaction analysis of non-tagged integrin beta1. Journal of Biomedicine and Biotechnology. 2010, 927585 (2010).
  10. Gavrilov, A., Razin, S. V., Cavalli, G. In vivo formaldehyde cross-linking: it is time for black box analysis. Briefings in Functional Genomics. 14 (2), 163-165 (2015).
  11. Rotoli, S. M., Jones, J. L., Caradonna, S. J. Cysteine residues contribute to the dimerization and enzymatic activity of human nuclear dUTP nucleotidohydrolase (nDut). Protein Science. , (2018).
  12. Caradonna, S., Muller-Weeks, S. The nature of enzymes involved in uracil-DNA repair: isoform characteristics of proteins responsible for nuclear and mitochondrial genomic integrity. Current Protein and Peptide Science. 2 (4), 335-347 (2001).
  13. Macpherson, L. J., et al. Noxious compounds activate TRPA1 ion channels through covalent modification of cysteines. Nature. 445 (7127), 541-545 (2007).
  14. Carey, M. F., Peterson, C. L., Smale, S. T. Chromatin immunoprecipitation (ChIP). Cold Spring Harbor Protocols. 2009 (9), (2009).

Play Video

Cite This Article
Rotoli, S. M., Caradonna, S. J. Combining Non-reducing SDS-PAGE Analysis and Chemical Crosslinking to Detect Multimeric Complexes Stabilized by Disulfide Linkages in Mammalian Cells in Culture. J. Vis. Exp. (147), e59483, doi:10.3791/59483 (2019).

View Video