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Estudio de la infección por criptosporidio en sistemas de cultivo organoides humanos derivados del tejido 3D por microinyección

DOI:

10.3791/59610

September 14th, 2019

In This Article

Summary

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Describimos protocolos para preparar ovocitos y purificar esporozoitos para el estudio de la infección de organoides intestinales y de las vías respiratorias humanas por Cryptosporidium parvum. Demostramos los procedimientos para la microinyección de parásitos en el lumen organoide intestinal y la inmunomancha ción de organoides. Por último, describimos el aislamiento de los ovocitos generados de los organoides.

Abstract

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Cryptosporidium parvum es una de las principales causas de la enfermedad diarreica humana. Para entender la patología del parásito y desarrollar fármacos eficientes, se necesita un sistema de cultivo in vitro que recapitula las condiciones en el huésped. Los organoides, que se asemejan mucho a los tejidos de su origen, son ideales para estudiar las interacciones huésped-parásito. Los organoides son estructuras tridimensionales (3D) derivadas del tejido que se derivan de células madre adultas y crecen en cultivo durante largos períodos de tiempo sin someterse a ninguna aberración o transformación genética. Tienen una polaridad bien definida con superficies apicales y basolaterales. Los organoides tienen varias aplicaciones en pruebas de drogas, biobanca, y modelado de enfermedades y estudios de interacción huésped-microbio. Aquí presentamos un protocolo paso a paso de cómo preparar los ovocitos y esporozoítos de Cryptosporidium para infectar los organoides intestinales y de las vías respiratorias humanas. A continuación, demostramos cómo se puede utilizar la microinyección para inyectar los microbios en el lumen organoide. Existen tres métodos principales por los que los organoides se pueden utilizar para los estudios de interacción huésped-microbio: microinyección, cizallamiento mecánico y chapado, y mediante la fabricación de monocapas. La microinyección permite el mantenimiento de la estructura 3D y permite un control preciso de los volúmenes del parásito y el contacto lateral apical directo para los microbios. Proporcionamos detalles para el crecimiento óptimo de organoides para la creación de imágenes u ovocitos. Por último, también demostramos cómo los ovocitos recién generados se pueden aislar del organoide para un mayor procesamiento y análisis aguas abajo.

Introduction

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El desarrollo de fármacos o vacunas para el tratamiento y la prevención de la infección por Cryptosporidium se ha visto obstaculizado por la falta de sistemas in vitro que imitan con precisión la situación in vivo en los seres humanos1,2. Muchos de los sistemas disponibles actualmente sólo permiten la infección a corto plazo (<5 días) o no soportan el ciclo de vida completo del parásito3,4. Otros sistemas que permiten el desarrollo completo del parásito se basan en líneas celulares inmortalizadas o líneas celulares cancerosas que no recapitula....

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Protocol

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Todo el manejo y resección de tejidos se realizó bajo protocolos aprobados por la Junta de Revisión Institucional (IRB) con el consentimiento del paciente.

1. Preparación de C. parvum Oocysts for Injection

NOTA: Los ovocitos de Cryptosporidium se compraron en una fuente comercial (ver la Tabla de Materiales). Estos ovocitos se producen en terneros y se almacenan en solución salina con fosfato tampón (PBS) con antibióticos. Se pueden almacenar durante unos 3 meses a 4 oC y nunca deben congelarse. Normalmente usamos ovocitos dentro de un mes. Los organoides pueden e....

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Results

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Los protocolos presentados aquí dan como resultado la purificación eficiente de ovocitos y esporozoitos(Figura 1A)listos para la microinyección. El protocolo de excystation da como resultado la liberación de esporozoitos de aproximadamente el 70-80% de los ovocitos, por lo tanto, es esencial filtrar los ovocitos y conchas restantes a través de un filtro de 3 m. La filtración da como resultado una purificación de casi 100% esporozoita(Figura 1B). Además, la adici.......

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Discussion

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Cultivo de parásitos Cryptosporidium en organoides intestinales y de las vías respiratorias proporciona un modelo preciso para estudiar las interacciones huésped-parásito10, pero también tiene muchas otras aplicaciones. Por ejemplo, los métodos actuales de selección y propagación de parásitos Cryptosporidium modificados genéticamente requieren el paso en ratones19 que no permite el aislamiento de parásitos que tienen modificaciones esenciales para la infec.......

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Disclosures

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Los autores no tienen nada que revelar.

Acknowledgements

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Estamos agradecidos a Deborah A. Schaefer de la Escuela de Ciencias Biomédicas Animales y Comparadas, Facultad de Agricultura y Ciencias de la Vida, Universidad de Arizona, Tucson, AZ, EE. UU. por ayudarnos con la producción y análisis de ovocitos. También agradecemos a Franceschi Microscopy and Imaging Center y a D.L. Mullendore de la Universidad Estatal de Washington por la preparación de TEM y la toma de imágenes de ovocitos organoides aislados.

D.D. es beneficiario de una subvención VENI de la Organización Neerlandesa de Investigación Científica (NWO-ALW, 016.Veni.171.015). I.H. es galardonado con una beca VENI de la Organización Neerla....

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Extracto de membrana basal (matriz extracelular)amsbio3533-010-02 
Anticuerpo Crypt-a-Glo (anticuerpo específico de ooquiste)Waterborne, IncA400FLR-1XConcentración final = Use 2-3 gotas/diapositiva
Crypto-Grab IgM recubierta de perlas magnéticasWaterborne, IncIMS400-20 
Bastidor Dynamag 15Thermofisher Scientific12301D 
Dynamag 2 bastidorThermofisher Scientific12321D 
EMD Millipore  Filtros de membrana de policarbonato isopore- 3µ mEMD-MilliporeTSTP02500 
Tinte verde rápidoSIGMAF7252-5G    
Microinyector Femtojet 4iEppendorf5252000013 
Capilares de vidrio de 1 mm de diámetroWPITW100F-4 
Matrigel (matriz extracelular)Corning356237 
Tubo de microfuga 1,5 mLEppendorfT9661-1000EA 
Puntas de microcargadorEppendorf612-7933 
Extractor de micropipetas P-97Instrumento de obturaciónP-97 
Suero de burro normalBio-RadC06SB 
PenstrepGibco15140-122 
Hipoclorito de sodio (usar 5%)Clorox50371478 
Correderas Super stickWaterborne, IncS100-3 
Swinnex-25 47 mm Portafiltros de policarbonatoEMD-MilliporeSX0002500 
Ácido taurocólico sodio sal hidratoSIGMAT4009-5G 
Tween-20Merck8221840500 
Agente de montaje VectashieldVector LabsH-1000 
Vortex Genie 2Industrias científicas, IncSI0236 
Adv+++ (DMEM+Penstrep+Glutamax+Hepes)    Cantidad final
DMEMInvitrogen12634-010500 mL
PenstrepGibco15140-1225 mL de stock en 500 mL DMEM
GlutamaxGibco350500385 mL de stock en 500 mL DMEM
HepesGibco156300565 mL de stock en 500 mL DMEM
ORGANOIDE INTESTINAL MEDIA-OME (Medios de expansión)<fuerte>    <fuerte>Concentración final
A83-01Tocris2939-50mg0.5 y micro; M
Adv+++  Preparación de hasta 100 mL
B27Invitrogen175040441x
EGFPeprotechAF-100-1550 ng/mL
GastrinTocris3006-1mg10 nM
NACSigmaA9125-25G1.25 mM
NICSigmaN0636-100G10 mM
Noggin CMEn casa* 10%
Inhibidor de P38 (SB202190)SigmaS7076-25 mg10 y micro; M
PGE2Tocris2296/1010 nM
PrimocinInvivoGenant-pm-11 mL/500 mL medios
RSpoI CMEn casa* 20%
Wnt3a CMEn casa* 50%
En la casa* - se proporcionarán líneas celulares a pedido   
-OMD (Medios de diferenciación)  Para diferenciar los organoides, los organoides del intestino delgado en expansión se cultivaron en un medio rico en Wnt durante seis a siete días después de la división, y luego se cultivaron en un medio de diferenciación (retiro de Wnt, nicotinamida, SB202190, en un medio de diferenciación (retiro de Wnt, nicotinamida, SB202190, prostaglandina E2 de un medio rico en Wnt u OME)
MEDIOS ORGANOIDES PULMONARES- LOM (Medios de diferenciación)    Concentración final
Adv+++  Preparación de hasta 100 mL
ALK-I A83-01Tocris2939-50mg500 nM
B27Invitrogen175040440.07638888889
FGF-10Peprotech100-26100 ng/mL
FGF-7Peprotech100-1925 ng/mL
N-acetilcisteínaSigmaA9125-25G1.25 mM
NicotinamidaSigmaN0636-100G5 mM
Noggin UPEU-Protein ExpressContactar con la empresa directamente10%
p38 MAPK-ISigmaS7076-25 mg1 y micro; M
PrimocinInvivoGenant-pm-11:500
RhoKI Y-27632Abmole BioscienceM1817_100 mg2.5 µ m
Rspo UPEU-Protein ExpressContactar directamente10%
tampón reductor (para la resuspensión de ooquistes y esporozoítos para inyección)    Concentración final
L-Glutatión reducidoSigmaG4251-10MG0.5 μ g/μ L de OME/OMD/LOM
BetaínaSigma619620,5 μ g/μ L de OME/OMD/LOM
L-CisteínaSigma168149-2.5G0.5 μ g/μ L de ácido linoleico OME/OMD/LOM
SigmaL1376-10MG6.8 μ g/mL de OME/OMD/LOM
TaurinaSigmaT0625-10MG0.5 μ g/μ L de tampón bloqueante < OME/OMD/LOMfuerte
> (para la tinción por inmunofluorescencia)    Concentración final
Burro/Suero de cabraBio-RadC06SB2%
PBSThermo-Fisher70011044Fabricación de hasta 100 mL
Tween 20MerckP13790.1%
Lista de anticuerpos utilizados      
Alexa 568 cabra anti-conejoInvitrogenA-11011Dilución-1:500; RRID: AB_143157
Kit completo Crypt-a-Glo- Anticuerpo marcado con fluoresceína Crypto-GloWaterborne, IncA400FLKDilución- 1:200
Crypta-Grab IMS Beads- Perlas magnéticas recubiertas de anticuerpo monoclonal reactivoWaterborne, IncIMS400-20Dilución-1:500
DAPIThermo Fisher ScientificD1306Dilución-1:1,000; RRID : AB_2629482
Phalloidin-Alexa 674InvitrogenA22287Dilución-1:1.000; RRID: AB_2620155
Anticuerpo anti-gp15 de conejo generado por R. M. O' Connor (coautor).A peticiónA peticiónDilución-1:500
Sporo-GloWaterborne, IncA600FLR-1XDilución- 1:200
con la empresa

References

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$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Checkley, W., et al. A review of the global burden, novel diagnostics, therapeutics, and vaccine targets for Cryptosporidium. The Lancet Infectious Diseases. 15 (1), 85-94 (2015).
  2. Bones, A. J., et al.

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Cryptosporidium InfectionOrganoid CultureMicroinjection TechniqueSporozoite PurificationExcystation Protocol3D Organoid SystemHost Microbe InteractionImmunofluorescence AssayFiltration MethodApical Injection

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