Summary

無脊椎動物の病理学研究に向けた Hemolymph のMetarhizium Blastospores の収集とRhipicephalus Microplusダニへの接種の開示

Published: June 01, 2019
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Summary

ダニ hemolymph の分析は、いくつかの病原体が病気を引き起こす方法と、ダニ免疫学的がこの感染症にどのように反応するかに関する重要な情報源を表しています。本研究は、真菌 propagules を接種し、 Rhipicephalus microplusうっ積の雌から hemolymph を採取する方法を示す。

Abstract

ダニは、吸血シソとRhipicephalus microplusは、貧血、体重減少、動物の革の減価償却を引き起こし、またいくつかの病原体のベクターとして作用することができるので、獣医学の非常に重要な義務があります。これらの寄生虫を防除するための法外な費用のために、化学殺ダニ剤の不適切な使用によって引き起こされる環境への損傷、および伝統的な parasiticides に対する抵抗の増加、ダニの代替制御、の使用によるentomopathogenic 菌類は、例えば、興味深いアプローチと考えられてきました。それにもかかわらず, ダニの免疫システムは、これらの entomopathogens と戦うために動作する方法を示しているいくつかの研究.従って、この議定書はうっ積の女性への entomopathogen 接種のために使用される2つの方法および hemolymph のコレクションおよび hemocytes 収穫のために使用される2つの技術を示す。ダニの女性の体の脚の挿入で病原体の接種は、頻繁に Gené’s 器官を損傷する恒星と capitulum の間の接種とは異なり、女性の生物学的パラメータの評価を可能にする。背 hemolymph のコレクションは、脚を介したコレクションよりも高いボリュームの回復をもたらした。ダニ hemolymph の収集と処理のいくつかの制限は、i) hemocytes 「破壊」の高いレート、ii) hemolymph 破壊 midgut、および iii) 低 hemolymph ボリュームの回復が含まれます。Hemolymph が足の切断を通して集められるとき、hemolymph は凝固プロセスを支持する足の入り口で集まるために時間を取る。さらに、最初の方法は実行が容易であると考えられるにもかかわらず、背のコレクションと比較して、脚を通してコレクションで得られる hemocytes は少なくなります。Entomopathogenic 剤によって媒介されるマダニにおける免疫応答を理解することは、その病因を明らかにし、ティック制御のための新しい標的を開発するのに役立つ。ここに記載されている接種プロセスは、非常に低い技術資源を必要とし、病原性微生物にダニを暴露するだけでなく使用することができる。同様に、ダニ hemolymph の収集は、多くの生理学的研究のための最初のステップを表すことができる。

Introduction

牛のダニ、 Rhipicephalus microplusは、熱帯地域の家畜に巨大な負の影響を与える hematophagus ectoparasite です。このダニは、バベシアボビスバベシア Bigemina、およびAnaplasma marginaleなどの病原性薬剤のベクターであり、直接 hemofeeding 損傷と組み合わせることにより、乳および食肉生産量を減少させることができ、貧血および究極的には死を引き起こす。この ectoparasite による損失は、ブラジル1年間で32億4000万ドルと見積もられた。持続可能な方法が求められており、entomopathogenic 剤の使用は、化学殺ダニ薬2,3,4の使用を減らすための有望な代替と考えられています。

Metarhizium属などの Entomopathogenic 菌類は、ダニを含む節足動物の天敵であり、biocontrollers として使用することができます。これらの病原体は、表皮を通して宿主に積極的に感染し、彼らの体256を植民地化する。感染が進行するにつれて、細胞および体液性応答はダニ免疫系によって媒介される。ダニ hemolymph の分析は、病原体7,8に挑戦した後の免疫応答を評価するのに有用なツールとして報告されている。

節足動物の免疫応答は、体液性応答および細胞反応に分けられる。体液性応答には、赤血球凝集反応プロセスおよび抗菌タンパク質/ペプチドの産生が含まれ、一方、細胞性免疫応答は hemocytes を介して行われる。これらの細胞は、すべての節足動物から hemolymph に存在し、それが直接貪食とカプセル化プロセスに関連しているように、先天性免疫応答9を含む研究で表現力豊かな役割を開発するために報告されています。したがって、hemocytes に関する研究は、死の経路を調査し、オートファジー、アポトーシス、壊死などのプロセスを理解するのに役立ちます。一部の無脊椎動物は二枚貝類として、hemocytes のコレクションは、細胞破壊、低 hemolymph 量、および低濃度の回収細胞10のような制限に直面する。非常に頻繁に、適用される方法論に応じて、細胞の減少した濃度が得られ、細胞の定量化および分析に直接影響を与える。

Hemolymph で循環する hemocytes の数は、異なる節足動物の間で変動し、性別、年齢、および節足動物の発達段階11などの異なる生理的段階により同じ種で変化することができる。Hemocytes はまた、いくつかの臓器に付着し、感染プロセス11の直後に循環に放出されることが見出され得る。それにもかかわらず、ほとんどの研究では昆虫の使用が報告され、ダニは生理学や病理に関する調査が少ない。ダニの病原の接種および hemolymph のコレクションはより少なく使用された技術であるにもかかわらず、標準的な方法を確立することはより正確な研究の開発を助ける。

本研究の目的は、hemolymph の収集と病原体の接種のための最も使用された方法をmicroplusティックに比較し、hemolymph 獲得および hemocytes 濃度における有効性を評価することであった。

Protocol

本研究で使用されたダニは人工コロニーから得たもので、活発はリオデジャネイロの連邦農村大学で、脊椎動物の使用に関する倫理委員会によって承認されている (CEUA/UFRRJ #037/2014)。 1. ダニうっ積メス ダニの収集後、水道水を使用して女性うっ積を洗浄し、0.5% (v/v) 次亜塩素酸ナトリウム溶液に 500 mL ガラスビーカーに3分間、キューティクル衛生のために (<strong c…

Representative Results

本稿はティックに適用された接種と hemolymph の収集方法にアプローチします。脚の大腿とダニの女性の身体の間の接種の後、いくつかの体液 (hemolymph) がプロセス中に分泌される。しかし、接種が終了すると、針の先端または接種部位に液体や組織が存在しなかったため、真菌懸濁液が完全に接種されたことを確認することが重要です。接種プロセスが正しく行われた?…

Discussion

病原体が宿主の内部にあることを保証するので、研究が実験節足動物モデルにおける微生物の生体内作用を調査することを目的とする場合に、病原菌の接種が有用である。この技術はまた、RNA 干渉 (RNAi) などの接種分子にも適用することができる。恒星と capitulum の間の接種は、実行が容易であると考えられるが、しばしば臓器 Gené’s 損傷を与えるが、卵の生存率12,

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

この研究は、ブラジル、金融コード001から Coordenacão ・デ・ Aperfeiçoamento ・デ・ Pessoal ・デ・ Nível ・スーペリア (ケープ) によって部分的に資金を調達しました。ケープは A.F. マルシアノ愛用のための博士奨学金を提供しました。我々は、j. Fiorotti のための博士課程奨学金を提供するブラジルの科学技術開発協議会 (CNPq) に感謝した。この研究は、カルロス・シャーガスフィーリョ国際財団のリオデジャネイロ州 (FAPERJ) および CNPq V.R.E.P. の研究助成金によっても支援されました。ビッテンコートは CNPq の研究者です。

Materials

Alkaline Hypochlorite solution Sigma-Aldrich A1727
D-(+)-Glucose Sigma-Aldrich G8270-1KG
EDTA Synth 2706
Fetal Bovine Serum Gibco 16000036
Flexible rubber BD
Giemsa stain Sigma-Aldrich 48900-500ML-F
Glass capillary CTechGlass CT95-02
Insulin syringe (needle) BD SKU: 324910
KH2PO4 Vetec 60REAVET014512
Leibovitz's L-15 culture medium  Gibco 11415-064
Methanol Sigma-Aldrich 34860-1L-R
Microscope slides Kasvi K5-7105
Microtubes BRAND Z336769-1PAK
Na2HPO4 Vetec 60REAVET014593
NaCl Sigma-Aldrich S7653-1KG
Neubauer chamber  Kasvi K5-0111
Penicillin Gibco 15140163
Protease inhibitor cocktail Sigma-Aldrich P2714
Tween 80 Vetec 60REAVET003662

References

  1. Grisi, L., et al. Reassessment of the potencial economic impact of cattle parasites in Brazil. Revista Brasileira de Parasitologia Veterinária. 23 (2), 150-156 (2014).
  2. Schrank, A., Vainstein, M. H. Metarhizium anisopliae enzymes and toxins. Toxicon. 56 (7), 1267-1274 (2010).
  3. Camargo, M. G., et al. Metarhizium anisopliae for controlling Rhipicephalus microplus ticks under field conditions. Veterinary Parasitology. 223, 38-42 (2016).
  4. Perinotto, W. M. S., et al. In vitro pathogenicity of different Metarhizium anisopliae s.l. isolates in oil formulations against Rhipicephalus microplus. Biocontrol Science and Technology. 27 (3), 338-347 (2017).
  5. Pedrini, N., Crespo, R., Juarez, M. P. Biochemistry of insect epicuticle degradation by entomopathogenic fungi. Comparative Biochemistry and Physiology. Part C: Toxicology and Pharmacolpgy. 146 (1-2), 124-137 (2007).
  6. Ortiz-Urquiza, A., Keyhani, N. O. Action on the surface: Entomopathogenic fungi versus the insect cuticle. Insects. 4 (3), 357-374 (2013).
  7. Angelo, I. C., et al. Detection of serpins involved in cellular immune response of Rhipicephalus microplus challenged with fungi. Biocontrol Science and Technology. 24 (3), 351-360 (2014).
  8. De Paulo, J. F., et al. Rhipicephalus microplus infected by Metarhizium: unveiling hemocyte quantification, GFP-fungi virulence, and ovary infection. Parasitology Research. 117, 1847-1856 (2018).
  9. Marmaras, V. J., Lampropoulou, M. Regulators and signalling in insect haemocyte immunity. Cell Signal. 21, 186-195 (2009).
  10. Hinzmann, M. F., Lopes-Lima, M., Gonçalves, J., Machado, J. Antiaggregant and toxic properties of different solutions on hemocytes of three freshwater bivalves. Toxicological & Environmental Chemistry. 95, 790-805 (2013).
  11. Nation, J. L. . Insect Physiology and Biochemistry. , (2016).
  12. Gene, J. Mémoires de l’Académie royale des sciences. Torino. 9, 751 (1848).
  13. Lees, A. D., Beament, J. W. L. An organ waxing in ticks. The Quarterly Journal of the Mythic Society. 7, 291-332 (1948).
  14. Sonenshine, D. E., Roe, R. M. . Biology of ticks. , (2014).
  15. Tan, J., et al. Characterization of hemocytes proliferation in larval silkworm Bombyx mori. Journal of Insect Physiology. 59 (6), 595-603 (2013).
  16. Bowden, T. J. The humoral immune systems of the American lobster (Homarus americanus) and the European lobster (Homarus gammarus). Fish Research. 186, 367-371 (2017).
  17. Sonenshine, D. E., Hynes, W. L. Molecular characterization and related aspects of the innate immune response in ticks. Frontiers in Bioscience. 13, 7046-7063 (2008).
  18. Tsakas, S., Marmaras, V. Insect immunity and its signaling: an overview. Invertebrate Survival Journal. 7, 228-238 (2010).
  19. Burgdorfer, W. Hemolymph Test. A technique for detection of Rickettsiae in ticks. American Journal of Tropical Medicine and Hygiene. 19, 1010-1014 (1970).
  20. Dunham-Ems, S. M., et al. Live imaging reveals a biphasic mode of dissemination of Borrelia burgdorferi within ticks. Journal of Clinical Investigation. 119, 3652-3665 (2009).
  21. Patton, T. G., et al. Saliva, salivary gland, and hemolymph collection from Ixodes scapularis ticks. Journal of Visualized Experiments. 60, e3894 (2012).
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Fiorotti, J., Gôlo, P. S., Marciano, A. F., Camargo, M. G., Angelo, I. C., Bittencourt, V. R. E. P. Disclosing Hemolymph Collection and Inoculation of Metarhizium Blastospores into Rhipicephalus Microplus Ticks Towards Invertebrate Pathology Studies. J. Vis. Exp. (148), e59899, doi:10.3791/59899 (2019).

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