Summary

אפיון של תא החיסון-מסחטות נגזרות ושלפוחיות ולימוד השפעה פונקציונלית על סביבת התא

Published: June 02, 2020
doi:

Summary

הדו ח הנוכחי מדגיש את הדרישות כרונולוגי לחילוץ שלפוחית לפוחית (EV) בידוד מ מיקרוגלייה או דם מקרופאגים. Microglia-EVs נגזר הוערכו כרגולטורים של neurite מוצלח בעוד דם מקרופאג-נגזר EVs נחקרו בשליטה של הפלישה C6 glioma תא ב מבחנה. המטרה היא להבין טוב יותר אלה פונקציות EV כמו מגשרים החיסונית במיקרו סביבות מסוימות.

Abstract

מצב הנוירודלקתי של מערכת העצבים המרכזית (CN) ממלא תפקיד מרכזי בתנאים פיזיולוגיים ופתולוגיים. Microglia, התאים החיסוניים תושב במוח, ולפעמים את מח עצם החדירה מקרופאגים (BMDMs), לווסת את הפרופיל הדלקתי של המיקרוסביבה שלהם ב-CN. עכשיו זה מקובל כי החילוץ שלפוחית הזרע (EV) אוכלוסיות מתאי החיסון לפעול כמגשרים החיסונית. לפיכך, האיסוף והבידוד שלהם חשובים לזיהוי תוכנם, אך גם להערכת ההשפעות הביולוגיות שלהם על תאי הנמען. הנתונים הנוכחיים להדגיש דרישות כרונולוגי עבור EV בידוד מתאי מיקרוגלייה או דם מקרופאגים כולל ביטול הקוד הכולל ואת גודל ההדרה כרומטוגרפיה (SEC) צעדים. ניתוח פרוטמית לא ממוקד התיר את האימות של חתימות חלבון כמו סמנים EV והתאפיין את תוכן EV פעיל ביולוגית. Microglia-EVs נגזר היו גם בשימוש פונקציונלי על התרבות העיקרית של נוירונים כדי להעריך את החשיבות שלהם כמגשרים החיסונית neurite outgrowth. התוצאות הראו כי מיקרוגליה נגזר EVs לתרום כדי להקל על neurite מוצלח בתוך מבחנה. במקביל, דם מקרופאג נגזר EVs היו בשימוש פונקציונלי כמגשרים החיסונית בתרבויות ספרואיד של התאים C6 glioma, התוצאות מראה כי אלה EVs שלוט הפלישה התאים glioma בתוך מבחנה. דו ח זה מדגיש את האפשרות להעריך את הפונקציות של תא החיסון EV-בתיווך, אך גם להבין את הבסיסים המולקולריים של תקשורת כזו. פענוח זה יכול לקדם את השימוש בשלפוחיות טבעיות ו/או בהכנת הפריה חוץ גופית של שלפוחיות טיפוליות כדי לחקות את התכונות החסינות של המיקרו-סביבה של הפתווגיות של ה-CN.

Introduction

נוירופתוגיות רבות קשורות למצב הנוירו-דלקתי שהוא מנגנון מורכב שנחשב יותר ויותר, אך עדיין מובן בצורה גרועה משום שהתהליכים החיסוניים מגוונים ותלויים בסביבת התא. אכן, הפרעות ה-CN לא מערבת בשיטתיות את אותם אותות הפעלה ואוכלוסיות תאים החיסונית ולכן התגובות pro-או אנטי דלקתיות קשה להעריך כסיבות או השלכות של הפתווגיות. מקרופאגים תושב המוח בשם “microglia” נראה להיות בממשק בין מערכת העצבים והחיסונית1. Microglia יש מוצא מיאלואידית ונגזר שק החלמון במהלך המטפיאה פרימיטיבי ליישב את המוח, ואילו מקרופאגים היקפיים נגזרות הכבד עובר במהלך המטפיאה הסופית להפוך מקרופאגים היקפיים2. התאים מיקרוגלייה לתקשר עם נוירונים ותאי העצב-הנגזרים הנגזרות גליה כגון אסטרוציטים ו oligodendrocytes הפוך3. מספר מחקרים שנעשו לאחרונה הוכיחו כי מיקרוגלייה מעורבים בפלסטיות העצבית במהלך פיתוח המוח והומאוסטזיס רקמות למבוגרים, וגם במצב דלקתי הקשורים עם מחלות ניווניות4,5. אחרת, את היושרה של מכשול המוח בדם ניתן להתפשר על הפתווגיות אחרות. התגובות החיסונית, במיוחד בסרטן gliנובלסטומה מרובה, אינם נתמכים רק על ידי תאים מיקרוגלייה כמו מכשול המוח בדם הוא מאורגן מראש דרך תהליכים אנגיוגנטית ונוכחות של כלי הלימפה6,7. לכן, מח עצם גדול הנגזר מקרופאגים (BMDMs) הסתננות מתרחשת בגידול במוח ברחבי הגידול תלויי מנגנוני אנגיוגנזה8. התאים הסרטניים להפעיל השפעה משמעותית על מסכת BMDMs המובילה לתכונות מדכאים חיסוני וצמיחה גידול9. לפיכך, התקשורת בין התאים החיסוניים לבין מיקרואקולוגיה המוחית קשה להבנה כאשר מקור התאים ואותות ההפעלה מגוונים ב-10,11. ולכן מעניין לעצור את התפקודים של חתימות מולקולריות הקשורות לתאי החיסון בתנאים פיסיולוגיים. בהקשר זה, התקשורת תא התא בין תאים חיסוניים לבין מיקרוסביבה התא ניתן ללמוד באמצעות שחרור של שלפוחיות ושלפוחית (EVs).

הEVs מתוחקר יותר ויותר בוויסות התפקודים החיסוניים בריאים ובתנאים פתולוגיים12,13. ניתן לקחת בחשבון שתי אוכלוסיות, אקזומים ומיקרוטיבים. הם מציגים טווחי ביוגנזה וגדלים שונים. האקסוזומים הם שלפוחיות של ~ 30 – 150 בקוטר nm והם מופקים ממערכת אנדוזוממית מופרש במהלך המיזוג של גופים multivesicular (MVBs) עם קרום פלזמה. המיקרושלפוחיות הם כ-100 – 1000 ננומטר בקוטר והם מופקים על ידי החוצה מתוך ממברנה פלזמה תא14. מכיוון שהאקסוחלק לעומת האפליה המיקרובעית עדיין קשה להבין לפי הגודל והדפוסים המולקולריים, נשתמש רק במונח EVs בדו ח הנוכחי. התקשורת המשויכת EV המייצגת את מנגנון האבות הקדמון מאז המחקרים הראו את מעורבותם במינים חסרי חוליות, כולל נמטודס, חרקים או annelids15,16. יתר על כן, התוצאות מראות כי EVs יכול לתקשר עם תאים ממינים שונים להפגין מנגנון זה להיות מערכת נעילת מפתח, מבוסס על הראשון על פני השטח מולקולה זיהוי בין שלפוחיות ותאי הנמען ולאחר מכן מאפשר את ספיגת המגשרים16,17. אכן, EVs מכילים מולקולות רבות כמו חלבונים (למשל, אנזימים, התמרה אותות, ביוגנזה פקטור), שומנים (g., ceramide, כולסטרול) או חומצות גרעין (g., DNA, mRNA או miRNAs) מתנהג כמו הרגולטורים ישיר או עקיף של פעילויות תא הנמען14. זו הסיבה מחקרים מתודולוגיים נערכו גם על תאים חיסוניים כדי לבודד EVs ולאפיין במלואו את חתימות החלבון שלהם18,19.

המחקרים המוקדמים ביותר הפגינו שחרורו של אקסוזומים מיקרוגליה הראשי של חולדה תרבותית כמנגנון inducible בעקבות הפעלה התלויה Wnt3a או סרוטונין20,21. מבחינה פונקציונלית בתוך המוח, microglia-נגזר EVs להסדיר את השחרור שלפוחית סינפטית על ידי מסופים טרום סינפטיות בנוירונים תורמים לשליטה של היכולת העצבית הנוירולית22,23. Microglia-נגזר EVs יכול גם להפיץ את התגובה הדלקתית ציטוקינים בתיווך באזורים גדולים במוח24,25. חשוב מכך, ליגניות מגוונות עבור משפחת הקולטן כמו אגרה עשוי להפעיל הפקות ספציפיות של EVs ב מיקרוגלייה26. לדוגמה, במחקרים חוץ גופית מראים כי lps-הופעל מיקרוגלייה BV2 תאים קווי לייצר תוכן EV דיפרנציאלי כולל הפרו-דלקתיות ציטוקינים27. לכן, המגוון הפונקציונלי של אוכלוסיות משנה של תאים חיסוניים ב-cn, מיקרוגלייה והחדירה bmdms, עשוי להיות מוערך דרך אוכלוסיות ev שלהם כולל ההשפעה EV על תאי הנמען וזיהוי של תוכן EV.

בעבר תיארנו שיטות כדי להעריך את המאפיינים הפונקציונליים של microglia-ו-bmdm נגזר EVs לאחר בידוהם16,19. בדוח הנוכחי, אנו מציעים להעריך באופן עצמאי את ההשפעה של microglia-נגזר EVs על neurite outgrowth, ואת ההשפעה של מקרופאג-נגזר EVs על השליטה של אגרגטים תא glioma. מחקר זה מציע גם ניתוח הפרוטאומית רחב של שברים EV כדי לאמת את ההליך בידוד EV, כמו גם לזהות את חתימות החלבון הפעיל ביולוגית. ההשפעות מועילות הפענוח המולקולרי של תוכן EV יכול לעזור מניפולציה אפשרי שלהם להשתמש כמו סוכנים טיפוליים בהפרעות במוח.

Protocol

1. התרבות הראשית של Microglia/מקרופאגים התרבות הראשית של מיקרוגלייה תרבות מסחרית חולדה מיקרוגליה ראשונית (2 x 106 תאים) (לראות את הטבלה של חומרים) ב-בינונית שונה של הנשר מאוד (dmem) שיושלם עם 10% אקסוזום הסרום, 100 U/mL של פניצילין, 100 μg/mL סטרפטומיצין, ו 9.0 g/L גלוקוז ב 37 ° c ו…

Representative Results

אחד האתגרים העיקריים לייחוס השפעות ביולוגים לEVs ושלפוחיות (מידה) היא היכולת לבודד את EVs מתוך מדיום התרבות כולה. בדוח זה, אנו מציגים שיטה המשתמשת בשיטת ultracentto (UC) וגודל כרומטוגרפיה להדרה (SEC) אשר מצמידים לניתוח בקנה מידה גדול של חתימות חלבונים כדי לאמת סמנים EV ולזהות תרכובות אקטיביים. מקרופאג-?…

Discussion

מערכת העצבים המרכזית (CN) היא רקמה מורכבת שבה תקשורת תא לתא מסדיר פונקציות נוירואליות נורמליות הדרושות לומאוסטזיס30. EVs הם כיום נחקרו נרחב ותיאר מטענים מולקולרי חשוב עבור תקשורת תא אל התא31. הם מעבירים במפורש קוקטייל של מגשרים לתאי המקבל ומשפיעים על התפקודים שלהם בת…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

העבודה המוצגת הייתה נתמכת על ידי המיניסטייר דה ל’חינוך הלאלה, דה L’Enseignement, et la Recherche ו-INSERM. אנו מכירים בהכרת העיר במרכז המדעי בקמפוס לגישה למכשירים ועצות טכניות. אנו מכירים בהכרת ז’אן-פסקל גיסימנו, Soulaimane Aboulouard ואיזבל פורנייר לסיוע בספקטרומטר המסה. אנו מכירים בהכרת הערב את טאננה הערבי, כריסטול ואן קאמפ, פרנסואז le Marrec-Croq, יאקופו ויזייולי ופייר-אריק סוטיץ ‘ על תרומתו החזקה להתפתחויות המדעיות והטכניות.

Materials

12% Mini-PROTEAN TGX Precast Protein Gels Bio-rad 4561045EDU  
Acetonitrile Fisher Chemicals A955-1  
Amicon 50 kDa centrifugal filter Merck UFC505024  
Ammonium bicarbonate Sigma-Aldrich 9830  
HSP90 α/β antibody (RRID: AB_675659) Santa-cruz sc-13119  
B27 Plus supplement Gibco A3582801  
BenchMixer V2 Vortex Mixer Benchmark Scientific BV1003  
Bio-Rad Protein Assay Dye Reagent Concentrate (Bradford) Bio-Rad 5000006  
C18 ZipTips Merck Millipore ZTC18S096  
C6 rat glioma cell ATCC ATCC CCL-107  
Canonical tubes Sarstedt 62.554.002  
Centrifuge Eppendorf 5804000010  
CO2 Incubator ThermoFisher    
Confocal microscope LSM880 Carl Zeiss LSM880  
Cover glass Marienfeld 111580  
Culture Dish (60 mm) Sarstedt 82.1473  
Dithiothreitol Sigma-Aldrich 43819  
DMEM Gibco 41966029  
EASY-nLC 1000 Liquid Chromatograph ThermoFisher    
Electron microscope JEM-2100 JEOL    
Ethylene glycol-bis(2-aminoethylether)-N,N,N′,N′-tetraacetic acid Sigma-Aldrich 03777-10G  
Ethylenediaminetetraacetic acid Sigma-Aldrich ED-100G  
Exo-FBS Ozyme EXO-FBS-50A-1 Exosome depleted FBS
ExoCarta database (top 100 proteins of Evs)     http://www.exocarta.org/
Fetal Bovine Serum Gibco 16140071  
Fetal Horse Serum Biowest S0960-500  
Filtropur S 0.2 Sarstedt 83.1826.001  
Fisherbrand Q500 Sonicator with Probe Fisherbrand 12893543  
FlexAnalysis Brucker    
Fluorescence mounting medium Agilent S3023  
Formic Acid Sigma-Aldrich 695076  
Formvar-carbon coated copper grids Agar scientific Ltd AGS162-3  
Glucose Sigma-Aldrich G8769  
Glutaraldehyde Sigma-Aldrich 340855  
Hoechst 33342 Euromedex 17535-AAT  
Idoacetamide Sigma-Aldrich I1149  
InstantBlue Coomassie Protein Stain Expedeon ISB1L  
Invert light microscope CKX53 Olympus    
L-glutamine Gibco 25030-024  
LabTek II 8 wells  Nunc 154534  
Laemmli 2X Bio-Rad 1610737  
Laminin Corning 354232  
MaxQuant software (proteins identification software)     https://maxquant.net/maxquant/
MBT Polish stell Brucker 8268711  
MEM 10X Gibco 21090-022  
Methylcellulose Sigma-Aldrich M6385-100G  
MiliQ water Merck Millipore    
Milk Regilait REGILAIT300  
Mini PROTEAN Vertical Electrophoresis Cell Bio-Rad 1658000FC  
MonoP FPLC column GE Healthcare   no longer available
Nanosight NS300 Malvern Panalytical NS300  
NanoSight NTA software v3.2 Malvern Panalytical    
NanoSight syringe pump Malvern Panalytical    
Neurobasal Gibco 21103-049  
Nitrocellulose membrane GE Healthcare 10600007  
Nonidet P-40 Fluka 56741  
Nunc multidish 24 wells ThermoFisher 82.1473  
Paraformaldehyde Electro microscopy Science 15713  
PC-12 cell line ATCC ATCC CRL-1721  
Penicillin-Streptomycin Gibco 15140-122  
Peptide calibration mix LaserBio Labs C101  
Peroxidase AffiniPure Goat Anti-Mouse IgG (H+L) Jackson ImmunoResearch 115-035-003  
Perseus software (Processing of identified proteins)     https://maxquant.net/perseus/
Phalloidin-tetramethylrhodamine conjugate Santa-cruz sc-362065  
Phenylmethanesulfonyl fluoride Sigma-Aldrich 78830  
Phosphate Buffer Saline Invitrogen 14190094 no calcium, no magnesium
pluriStrainer M/ 60 µm pluriSelect 43-50060  
Poly-D-lysine Sigma-Aldrich P6407  
Polycarbonate centrifuge tubes Beckman Coulter 355651  
Protease Inhibitor Sigma-Aldrich S8830-20TAB  
PureCol Cell Systems 5005  
Q-Exactive mass spectrometer ThermoFisher    
rapifleX mass spectrometer Brucker    
Rat cortical neurons Cell Applications R882N-20 Cell origin : Derived from cerebral cortices of day 18 embryonic Sprague Dawley rat brains
Rat Macrophage & Microglia Culture Medium Cell Applications R620K-100 Cell orgin : Normal healthy Rat bone marrow
Rat primary macrophages Cell Applications R8818-10a  
Rat primary microglia Lonza RG535  
Sepharose CL-2B GE Healthcare 17014001  
Sequencing Grade Modified Trypsin Promega V5111  
Slide Dustsher 100204  
Sodium Chloride Scharlau SO0227  
Sodium Dodecyl Sulfate Sigma-Aldrich L3771  
Sodium Fluoride Sigma-Aldrich S7920-100G  
Sodium hydroxide Scharlab SO0420005P  
Sodium pyrophosphate Sigma-Aldrich S6422-100G  
SpeedVac Vacuum Concentrator ThermoFisher    
String software (functional protein association networks)     https://string-db.org/
SuperSignal West Dura extended Duration Substrate ThermoFisher 34075  
Syringe 1.0 mL Terumo 8SS01H1  
Trans-Blot SD Semi-Dry Transfer cell Bio-Rad 1703940  
Trifluoroacetic acid Sigma-Aldrich T6508  
Tris Interchim UP031657  
Tris-Glycine Euromedex EU0550  
Tween 20 Sigma-Aldrich P2287  
Ultracentrifuge Beckman Coulter A95765  
Ultracentrifuge Rotor 70.1 Ti Beckman Coulter 342184  
Uranyl acetate Agar Scientific Ltd AGR1260A  
Whatman filter paper Sigma-Aldrich WHA10347510  
α-Cyano-4-hydroxycinnamic acid Sigma-Aldrich C2020-25G  

References

  1. Thion, M. S., Ginhoux, F., Garel, S. Microglia and early brain development: An intimate journey. Science. 362 (6411), 185-189 (2018).
  2. Ginhoux, F., et al. Fate mapping analysis reveals that adult microglia derive from primitive macrophages. Science. 330 (6005), 841-845 (2010).
  3. Sankowski, R., Mader, S., Valdes-Ferrer, S. I. Systemic Inflammation and the Brain: Novel Roles of Genetic, Molecular, and Environmental Cues as Drivers of Neurodegeneration. Frontiers in Cellular Neuroscience. 9, (2015).
  4. Chakrabarty, S., Kabekkodu, S. P., Singh, R. P., Thangaraj, K., Singh, K. K., Satyamoorthy, K. Microglia in health and disease. Cold Spring Harb. Perspect. Biol. 43 (3), 25-29 (2015).
  5. Sankowski, R., Mader, S., Valdés-Ferrer, S. I. Systemic inflammation and the brain: novel roles of genetic, molecular, and environmental cues as drivers of neurodegeneration. Frontiers in cellular neuroscience. 9, 28 (2015).
  6. Engelhardt, B., Vajkoczy, P., Weller, R. O. The movers and shapers in immune privilege of the CNS. Nature Immunology. 18 (2), 123-131 (2017).
  7. Louveau, A., et al. Structural and functional features of central nervous system lymphatic vessels. Nature. 523 (7560), 337-341 (2015).
  8. Domingues, P., et al. Tumor infiltrating immune cells in gliomas and meningiomas. Brain, Behavior, and Immunity. 53, 1-15 (2016).
  9. Hambardzumyan, D., Gutmann, D. H., Kettenmann, H. The role of microglia and macrophages in glioma maintenance and progression. Nature Neuroscience. 19 (1), 20-27 (2016).
  10. Thion, M. S., et al. Microbiome Influences Prenatal and Adult Microglia in a Sex-Specific Manner. Cell. 172 (3), 500-516 (2018).
  11. Hammond, T. R., et al. Single-Cell RNA Sequencing of Microglia throughout the Mouse Lifespan and in the Injured Brain Reveals Complex Cell-State Changes. Immunity. 50 (1), 253-271 (2019).
  12. Rajendran, L., et al. Emerging Roles of Extracellular Vesicles in the Nervous System. The Journal of Neuroscience. 34 (46), 15482-15489 (2014).
  13. Gupta, A., Pulliam, L. Exosomes as mediators of neuroinflammation. Journal of Neuroinflammation. 11 (1), 68 (2014).
  14. van Niel, G., D’Angelo, G., Raposo, G. Shedding light on the cell biology of extracellular vesicles. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 19 (4), 213-228 (2018).
  15. Budnik, V., Ruiz-cañada, C., Wendler, F. Extracellular vesicles round off communication in the nervous system. Nature Reviews Neurosciences. 17, 160-172 (2016).
  16. Raffo-Romero, A., et al. Medicinal Leech CNS as a Model for Exosome Studies in the Crosstalk between Microglia and Neurons. International Journal of Molecular Sciences. 19 (12), 4124 (2018).
  17. Zhou, Y., et al. Exosomes Transfer Among Different Species Cells and Mediating miRNAs Delivery. Journal of Cellular Biochemistry. 118 (12), 4267-4274 (2017).
  18. Arab, T., et al. Proteomic characterisation of leech microglia extracellular vesicles (EVs): comparison between differential ultracentrifugation and OptiprepTM density gradient isolation. Journal of extracellular vesicles. 8 (1), 1603048 (2019).
  19. Murgoci, A. -. N., et al. Brain-Cortex Microglia-Derived Exosomes: Nanoparticles for Glioma Therapy. ChemPhysChem. 19 (10), 1205-1214 (2018).
  20. Glebov, K., et al. Serotonin stimulates secretion of exosomes from microglia cells. Glia. 63 (4), 626-634 (2015).
  21. Hooper, C., et al. Wnt3a induces exosome secretion from primary cultured rat microglia. BMC Neuroscience. 13 (1), 144 (2012).
  22. Gabrielli, M., et al. Active endocannabinoids are secreted on extracellular membrane vesicles. EMBO reports. 16 (2), 213-220 (2015).
  23. Antonucci, F., et al. Microvesicles released from microglia stimulate synaptic activity via enhanced sphingolipid metabolism. The EMBO Journal. 31 (5), 1231-1240 (2012).
  24. Frühbeis, C., Fröhlich, D., Kuo, W. P., Krämer-Albers, E. -. M. Extracellular vesicles as mediators of neuron-glia communication. Frontiers in Cellular Neuroscience. 7, 182 (2013).
  25. Prada, I., et al. Glia-to-neuron transfer of miRNAs via extracellular vesicles: a new mechanism underlying inflammation-induced synaptic alterations. Acta neuropathologica. 135 (4), 529-550 (2018).
  26. Takenouchi, T., et al. Extracellular ATP induces unconventional release of glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase from microglial cells. Immunology Letters. 167 (2), 116-124 (2015).
  27. Yang, Y., Boza-Serrano, A., Dunning, C. J. R., Clausen, B. H., Lambertsen, K. L., Deierborg, T. Inflammation leads to distinct populations of extracellular vesicles from microglia. Journal of Neuroinflammation. 15 (1), 168 (2018).
  28. Duhamel, M., et al. Paclitaxel Treatment and Proprotein Convertase 1/3 (PC1/3) Knockdown in Macrophages is a Promising Antiglioma Strategy as Revealed by Proteomics and Cytotoxicity Studies. Molecular & Cellular Proteomics. 17 (6), 1126-1143 (2018).
  29. Pool, M., Thiemann, J., Bar-Or, A., Fournier, A. E. NeuriteTracer: A novel ImageJ plugin for automated quantification of neurite outgrowth. Journal of Neuroscience Methods. 168 (1), 134-139 (2008).
  30. Domingues, H. S., Portugal, C. C., Socodato, R., Relvas, J. B. Oligodendrocyte, Astrocyte, and Microglia Crosstalk in Myelin Development, Damage, and Repair. Frontiers in Cell and Developmental Biology. 4, 71 (2016).
  31. Rashed, M. H., et al. Exosomes: From Garbage Bins to Promising Therapeutic Targets. Int. J. Mol. Sci. Int. J. Mol. Sci. 18 (18), (2017).
  32. Yuana, Y., Sturk, A., Nieuwland, R. Extracellular vesicles in physiological and pathological conditions. Blood Reviews. 27 (1), 31-39 (2013).
  33. Frohlich, D., et al. Multifaceted effects of oligodendroglial exosomes on neurons: impact on neuronal firing rate, signal transduction and gene regulation. Philosophical Transactions of the Royal Society B: Biological Sciences. 369 (1652), (2014).
  34. Krämer-Albers, E. -. M., et al. Oligodendrocytes secrete exosomes containing major myelin and stress-protective proteins: Trophic support for axons. Proteomics. Clinical applications. 1 (11), 1446-1461 (2007).
  35. Verderio, C., et al. Myeloid microvesicles are a marker and therapeutic target for neuroinflammation. Annals of Neurology. 72 (4), 610-624 (2012).
  36. Prada, I., Furlan, R., Matteoli, M., Verderio, C. Classical and Unconventional Pathways of Vesicular Release in Microglia. GLIA. 61, 1003-1017 (2013).
  37. Prinz, M., Priller, J. The role of peripheral immune cells in the CNS in steady state and disease. Nature Neuroscience. 20 (2), 136-144 (2017).
  38. Li, Q., Barres, B. A. Microglia and macrophages in brain homeostasis and disease. Nature Reviews Immunology. , (2017).
  39. Kennedy, B. C., et al. Tumor-Associated Macrophages in Glioma: Friend or Foe. Journal of Oncology. 2013, 1-11 (2013).
  40. Potolicchio, I., Carven, G. J., Xu, X., Stipp, C., Riese, R. J., Stern, L. J., Santambroggio, L. Proteomic Analysis of Microglia-Derived Exosomes: Metabolic Role of the Aminopeptidase CD13 in Neuropeptide Catabolism1. The Journal of Immunology. 175, 2237-2243 (2005).
  41. Turola, E., Furlan, R., Bianco, F., Matteoli, M., Verderio, C. Microglial microvesicle secretion and intercellular signaling. Frontiers in Physiology. 3, (2012).
  42. Cocucci, E., Meldolesi, J. Ectosomes and exosomes : shedding the confusion between extracellular vesicles. Trends in Cell Biology. 25 (6), 364-372 (2015).
  43. Théry, C., et al. Minimal information for studies of extracellular vesicles 2018 (MISEV2018): a position statement of the International Society for Extracellular Vesicles and update of the MISEV2014 guidelines. Journal of Extracellular Vesicles. 7 (1), 1535750 (2018).
  44. de Vrij, J., et al. Glioblastoma-derived extracellular vesicles modify the phenotype of monocytic cells. International Journal of Cancer. 137 (7), 1630-1642 (2015).
  45. van der Vos, K. E., et al. Directly visualized glioblastoma-derived extracellular vesicles transfer RNA to microglia/macrophages in the brain. Neuro-Oncology. 18 (1), 58-69 (2016).
check_url/60118?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Lemaire, Q., Duhamel, M., Raffo-Romero, A., Salzet, M., Lefebvre, C. Characterization of Immune Cell-derived Extracellular Vesicles and Studying Functional Impact on Cell Environment. J. Vis. Exp. (160), e60118, doi:10.3791/60118 (2020).

View Video