Summary

Identifikasjon av nye regulatorer av plantetranspirasjon ved storskala termisk bildebehandling screening i Helianthus Annuus

Published: January 30, 2020
doi:

Summary

Vi tilbyr en metode for å identifisere modulatorer av foliar transpirasjon ved storskala screening av et sammensatt bibliotek.

Abstract

Plantetilpasning til biotiske og abiotiske påkjenninger styres av en rekke faktorer, blant annet regulering av stomatal blenderåpning som svar på vannunderskudd eller patogener spiller en avgjørende rolle. Identifisere små molekyler som regulerer stomatal bevegelse kan derfor bidra til å forstå det fysiologiske grunnlaget som planter tilpasser seg miljøet. Store screening tilnærminger som har blitt brukt til å identifisere regulatorer av stomatal bevegelse har potensielle begrensninger: noen stole tungt på abscisic acid (ABA) hormon signaling banen, derfor unntatt ABA-uavhengige mekanismer, mens andre stole på observasjon av indirekte, langsiktige fysiologiske effekter som plantevekst og utvikling. Screeningmetoden som presenteres her tillater storskala behandling av planter med et bibliotek av kjemikalier kombinert med en direkte kvantifisering av deres transpirasjon ved termisk avbildning. Siden fordampning av vann gjennom transpirasjon resulterer i bladoverflatekjøling, gir termisk avbildning en ikke-invasiv tilnærming til å undersøke endringer i stomatal konduktasjon over tid. I denne protokollen dyrkes Helianthus annuus frøplanter hydroponically og deretter behandlet ved rotfôring, der den primære roten kuttes og dyppes i kjemikaliet som testes. Termisk avbildning etterfulgt av statistisk analyse av kotyledonære temperaturendringer over tid gjør det mulig å identifisere bioaktive molekyler som modulerer stomatal blenderåpning. Våre konseptbeviseksperimenter viser at et kjemikalie kan bæres fra kuttroten til kosedonen til solsikkefrøingen innen 10 minutter. I tillegg, når planter behandles med ABA som en positiv kontroll, kan en økning i bladoverflatetemperaturen oppdages i løpet av minutter. Vår metode tillater dermed effektiv og rask identifisering av nye molekyler som regulerer stomatal blenderåpning.

Introduction

Stresstoleranse i planter er en polygen egenskap påvirket av en rekke molekylære, cellulære, utviklingsmessige og fysiologiske egenskaper og mekanismer1. Planter i et varierende miljø må kontinuerlig modulere sine stomatale bevegelser for å balansere den fotosyntetiske etterspørselen etter karbon samtidig som tilstrekkelig vann opprettholdes og forhindrer patogeninvasjon2; Men mekanismene som disse avveining “beslutninger” er gjort er dårlig forstått3. Innføring av bioaktive molekyler i planter kan modulere deres fysiologi og bidra til å undersøke nye reguleringsmekanismer.

Den store screeningen av små molekyler er en effektiv strategi som brukes i anti-kreft narkotika oppdagelse og farmakologiske analyser for å teste de fysiologiske effektene av hundrevis til tusenvis av molekyler i løpet av kort tid4,5. I plantebiologi har høy gjennomstrømning vist sin effektivitet for eksempel i identifisering av det syntetiske molekylet pyrabactin6, samt oppdagelsen av den ettertraktede reseptoren av abscisic acid (ABA)7,8. Siden da har agonister og antagonister av ABA-reseptorer, og små molekyler i stand til å modulere uttrykket av ABA-inducible reporter gener blitt identifisert9,10,11,12,13,14,15. Screeningtilnærminger med høy gjennomstrømning er tilgjengelig for å identifisere små forbindelser som kan modulere stomatal blenderåpning har noen ulemper: (i) protokoller som roterer rundt ABA-signalveien, kan forhindre identifisering av nye ABA-uavhengige mekanismer, og (ii) in vivo strategier som brukes for identifisering av bioaktive små molekyler stole primært på deres fysiologiske effekter på frø spiring eller frøplante vekst, og ikke på regulering av plantetranspirasjon per se.

I tillegg, mens det er mange måter å behandle planter med bioaktive molekyler, er de fleste av dem ikke godt egnet for en storstilt studie av stomatal bevegelse. Kort, de tre vanligste teknikkene er foliar søknad ved sprøyting eller dypping, behandling av rotsystemet, og rot vanning. Foliar-applikasjonen er ikke kompatibel med de vanligste og raskeste metodene for å måle stomatal blenderåpning siden tilstedeværelsen av dråper på bladoverflaten forstyrrer storskala datainnsamling. De store begrensningene for rotvanning er de store kravene til prøvevolum, den potensielle oppbevaringen av forbindelsene ved elementer i jordsfæren, og avhengigheten av aktivt rotopptak.

Her presenterer vi en storstilt metode for å identifisere nye forbindelser som regulerer plantetranspirasjon som ikke nødvendigvis involverer ABA- eller kjente tørkeresponsive mekanismer og gir effektiv og pålitelig behandling av planter. I dette systemet behandles Helianthus annuus planter ved hjelp av en rotfôringstilnærming som består av å kutte den primære roten av frøplanter dyrket hydroponically og dyppe kuttstedet inn i prøveløsningen. Når behandlet, effekten av hver forbindelse på transpirasjon av planter måles ved hjelp av en infrarød termisk bildekamera. Siden en viktig determinant for bladoverflatetemperatur er frekvensen av fordampning fra bladet, kan termiske bildedata være direkte korrelert til stomatal konduktasjon. Den relative endringen i foliar temperatur etter kjemisk behandling gir dermed et direkte middel til å kvantifisere anlegget transpirasjon.

H. annuus er en av de fem største oljefrøavlingene i verden16 og funn gjort direkte på dette anlegget kan lette fremtidige overføringer av teknologi. I tillegg har H. annuus frøplanter store og flate kotyledoner, samt en tykk primærrot, som var ideell for utviklingen av denne protokollen. Denne metoden kan imidlertid lett tilpasses andre planter og en rekke forbindelser.

Denne protokollen kan brukes til effektivt å identifisere molekyler som kan utløse stomatal lukking eller fremme stomatal åpning, som har store implikasjoner for å forstå signalene som regulerer stomatal konduktisering og plantetilpasning til miljømessige Understreker.

Protocol

1. Dyrking av plantene Tilsett et 4 cm tykt lag med fin vermikulitt til standard 10 x 20 tommer (254 mm x 501 mm) plantebrett uten hull. Plasser frøholderne (se Materialtabell) 2 cm fra hverandre i plantebrettene. Fyll frøholdere med vermikulitt. Plasser et solsikkefrø med sin spisse ende ned i hver frøholder, og skyv ned slik at halvparten av frøet forblir utsatt.MERK: Et solsikkefrø er asymmetrisk, og den spisse enden fra der radikelen vil dukke opp, b?…

Representative Results

Et eksperiment ved hjelp av det røde farderet Erythrosine B (0,8 kDa) viser evnen til kjemikalier som skal synlig absorberes gjennom en kuttrot i kotyledonene til en solsikkefrø innen 10 minutter (figur 1). Når planter behandles med ABA, oppdages en økning i bladtemperaturen i solsikkekotyledoner i løpet av minutter. Denne økningen i bladtemperaturen er forbundet med en reduksjon i stomatal bl…

Discussion

Antall forbindelser som kan testes på en gitt dag avhenger for det meste av (i) den miljøkontrollerte plassen som er tilgjengelig for å dyrke plantene og å utføre skjermen, samt (ii) antall personer som kan være involvert i trinn 6 i protokollen. Vi anbefaler bruk av tre eksperimentelle replikaser for å konsolidere tolkningen av resultatene etter statistisk behandling. På en typisk dag kan en til to personer screene 60 forbindelser i triplicates uten problemer ved å teste for eksempel [60 kjemikalier + 6 negativ…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Arbeidet ble støttet av Pomona College Start-up Funds and Hirsch Research Initiation Grants Fund (til FJ) samt Pomona College Molecular Biology Program gjennom Stellar Summer Research Assistant Program (til KG).

Materials

1020 plastic growing trays without drain holes Standard 10 x 20 inch trays
2.0 mL microtubes, capless Genesee Scientific 22-283NC
Abscisic acid (ABA) Sigma-Aldrich A1049
Air pump Active Aqua AAPA7.8L 2 Outlets, 3W, 7.8 L/min
Airstones
Chemical compound library MicroSource Discovery Natural Product Collection
Creative Versa-Tool (wood burning tool) Nasco 9724549
Dimethylsulfoxide (DMSO), plant cell culture tested Sigma-Aldrich D4540
Dwarf Sunspot Sunflower seeds Outsidepride.com
Erythrosin B Sigma-Aldrich 200964
Hydroponics fertilizer set (FloraBloom, FloraGrow, FloraMicro) General Hydroponics GL51GH1421.31.11
Kimwipes Delicate Task Wipers Kimberly-Clark Professional 34155
Laptop Dell
MES hydrate Sigma-Aldrich M2933
Microdissection scissors
Microsoft Excel Microsoft
Potassium hydroxide (KOH) Sigma-Aldrich P5958
ResearchIR Software FLIR
R-Tech Rigid Polystyrene Foam Board Insulfoam
Seedholders Araponics N/A
Super Tub (plastic utility tub) Maccourt ST3608 36 x 24 x 8 inch tub used for hydroponics
T450sc LWIR (Long-Wave Infrared) Handheld Thermal Imaging Camera FLIR FLIR-T62101 Comes with required charging cable and USB cable needed to connect to laptop
Vermiculite
Water filter SunSun HW-304B Pro Canister Filter

References

  1. Basu, S., Ramegowda, V., Kumar, A., Pereira, A. Plant adaptation to drought stress. F1000Research. 5, (2016).
  2. McLachlan, D. H., Kopischke, M., Robatzek, S. Gate control: guard cell regulation by microbial stress. The New Phytologist. 203 (4), 1049-1063 (2014).
  3. Leung, J., Bazihizina, N., Mancuso, S., Valon, C. Revisiting the Plant’s Dilemma. Molecular Plant. 9 (1), 7-9 (2016).
  4. Macarron, R., et al. Impact of high-throughput screening in biomedical research. Nature Reviews Drug Discovery. 10 (3), 188-195 (2011).
  5. Wigglesworth, M. J., Murray, D. C., Blackett, C. J., Kossenjans, M., Nissink, J. W. Increasing the delivery of next generation therapeutics from high throughput screening libraries. Current Opinion in Chemical Biology. 26, 104-110 (2015).
  6. Zhao, Y., et al. Chemical genetic interrogation of natural variation uncovers a molecule that is glycoactivated. Nature Chemical Biology. 3 (11), 716-721 (2007).
  7. Park, S. Y., et al. Abscisic acid inhibits type 2C protein phosphatases via the PYR/PYL family of START proteins. Science. 324 (5930), 1068-1071 (2009).
  8. Ma, Y., et al. Regulators of PP2C phosphatase activity function as abscisic acid sensors. Science. 324 (5930), 1064-1068 (2009).
  9. Cao, M., et al. An ABA-mimicking ligand that reduces water loss and promotes drought resistance in plants. Cell Research. 23 (8), 1043-1054 (2013).
  10. Okamoto, M., et al. Activation of dimeric ABA receptors elicits guard cell closure, ABA-regulated gene expression, and drought tolerance. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 110 (29), 12132-12137 (2013).
  11. Rodriguez, P. L., Lozano-Juste, J. Unnatural agrochemical ligands for engineered abscisic acid receptors. Trends in Plant Science. 20 (6), 330-332 (2015).
  12. Kim, T. H., et al. Chemical genetics reveals negative regulation of abscisic acid signaling by a plant immune response pathway. Current Biology. 21 (11), 990-997 (2011).
  13. Ito, T., et al. Novel Abscisic Acid Antagonists Identified with Chemical Array Screening. ChemBioChem. 16 (17), 2471-2478 (2015).
  14. Ye, Y., et al. A Novel Chemical Inhibitor of ABA Signaling Targets All ABA Receptors. Plant Physiology. 173 (4), 2356-2369 (2017).
  15. Takeuchi, J., et al. Designed abscisic acid analogs as antagonists of PYL-PP2C receptor interactions. Nature Chemical Biology. 10 (6), 477-482 (2014).
  16. Rauf, S., et al. Progress in modification of sunflower oil to expand its industrial value. Journal of the Science of Food and Agriculture. 97 (7), 1997-2006 (2017).
  17. Caraus, I., Alsuwailem, A. A., Nadon, R., Makarenkov, V. Detecting and overcoming systematic bias in high-throughput screening technologies: a comprehensive review of practical issues and methodological solutions. Briefings in Bioinformatics. 16 (6), 974-986 (2015).
  18. Costa, J. M., Grant, O. M., Chaves, M. M. Thermography to explore plant-environment interactions. Journal of Experimental Botany. 64 (13), 3937-3949 (2013).
  19. Merlot, S., et al. Use of infrared thermal imaging to isolate Arabidopsis mutants defective in stomatal regulation. The Plant Journal. 30 (5), 601-609 (2002).
check_url/60535?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Guo, K., Mellinger, P., Doan, V., Allen, J., Pringle, R. N., Jammes, F. Identification of Novel Regulators of Plant Transpiration by Large-Scale Thermal Imaging Screening in Helianthus Annuus. J. Vis. Exp. (155), e60535, doi:10.3791/60535 (2020).

View Video