Summary

مضان المجهر لات الداخلي ATP بوساطة Macropinocytosis في خلايا الورم البشري والفئران الورم xenografted

Published: June 30, 2021
doi:

Summary

طورنا طريقة قابلة للاستنساخ لتصور استيعاب ثلاثي الفوسفات ثلاثي الأدينوزين الفلوري غير القابل للهيدروليزين (ATP)، وهو بديل ATP، بدقة خلوية عالية. لقد أثبتنا صحة طريقتنا باستخدام المختبر المستقل وفي أجهزة قياس الجسم الحي وخطوط خلايا الورم البشرية والفئران ذات المناعة xenografted بأنسجة الورم البشري.

Abstract

أدينوسين ثلاثي الفوسفات (ATP), بما في ذلك ATP خارج الخلية (eATP), وقد ثبت أن تلعب أدوارا هامة في جوانب مختلفة من الورم, مثل مقاومة الأدوية, الانتقال الظهاري-المتوسطي (EMT), والانبثاث. eATP داخل الرحم هو 103 إلى 104 مرات أعلى في التركيز مما كانت عليه في الأنسجة العادية. في حين أن eATP يعمل كرسول لتنشيط الإشارات التنقية لتحريض EMT ، إلا أنه يتم استيعابه أيضا من قبل الخلايا السرطانية من خلال داء الماكروبينوسيتوزية الممضوم ، وهو نوع محدد من الغدد الصماء ، لأداء مجموعة واسعة من الوظائف البيولوجية. وتشمل هذه الوظائف توفير الطاقة لتفاعلات البيوكيميائية ATP التي تتطلب، والتبرع مجموعات الفوسفات أثناء نقل الإشارات، وتسهيل أو تسريع التعبير الجيني كمتبرع مساعد النسخ. ATP متاح بسهولة، والدراسة في السرطان وغيرها من المجالات سوف تزيد بلا شك. ومع ذلك، لا تزال دراسة eATP في مرحلة مبكرة، ولا تزال الأسئلة التي لم يتم حلها دون إجابة قبل أن يتم كشف الأنشطة الهامة ومتعددة الاستخدامات التي يقوم بها eATP وATP الداخلية بالكامل.

وتشمل مساهمات مختبرات هؤلاء المؤلفين في هذه الدراسات eATP في وقت مبكر التصوير المجهري من ATP الفلورسنت غير القابلة للتحلل، إلى جانب عالية ومنخفضة الجزيئية الوزن الفلورسنت دكسترانس، والتي هي بمثابة مثبطات التناضح الكلي والغدد الصماء، فضلا عن مثبطات الغدد الصماء المختلفة، لرصد وتوصيف عملية الاستيعاب eATP. تم تطبيق طريقة التصوير هذه على خطوط الخلايا السرطانية وعلى الفئران ذات المناعة ، التي تم نقلها بأورام سرطان الإنسان ، لدراسة استيعاب eATP في المختبر وفي الجسم الحي. تصف هذه الورقة هذه البروتوكولات في المختبر وفي الجسم الحي ، مع التركيز على تعديل وصقل شروط الفحص بحيث يمكن إجراء اختبارات الاستيعاب eATP بوساطة macropinocytosis /endocytosis بنجاح في أنظمة مختلفة.

Introduction

وقد تم مؤخرا امتصاص الانتهازية من المواد الغذائية خارج الخلية داخل الرحم (أي) اسمه السمة المميزة الرئيسية لعملية التمثيل الغذائي للسرطان1. واحدة من هذه العناصر الغذائية الهامة ATP، كما تركيز ieATP هو 103 و 104 مرات أعلى من تلك الموجودة في الأنسجة الطبيعية، في نطاق عدة مئات من ميكرومتر إلى mMمنخفضة 2،5. كجزيء الطاقة والإشارات الرئيسية، ATP يلعب دورا مركزيا في التمثيل الغذائي الخلوي في الخلايا السرطانية والصحية6،7،8. ATP خارج الخلية لا تشارك فقط في نمو الخلايا السرطانية, ولكنه يعزز أيضا مقاومة المخدرات9. وظائف ATP لم تكن معروفة من قبل، مثل النشاط الهيدروتروبيكي، وقد تم مؤخرا تحديد، وبالتالي تورط ATP في أمراض مثل الزهايمر10. في الواقع ، يبدو أن فهمنا ل ATP ووظائفه في الخلايا السرطانية والخلايا السليمة والخلايا المريضة الأخرى أبعد ما يكون عن الاكتمال. ومع ذلك ، بسبب عدم استقرار ATP وارتفاع معدلات الدوران في الخلايا ، فمن الصعب تقنيا مراقبة حركة ATP عبر غشاء الخلية وإلى الخلية.

لمعالجة هذه المشكلة وسد الحاجة إلى هذا المجال البحثي، تم تطوير طريقة حيث تم استخدام ATP الفلورية غير قابلة للهيدروليز (NHF-ATP)(الشكل 1)كبديل لتصور استيعاب ATP ومراقبة التعريب المكاني داخل الخلية من ATP الداخلي، سواء في المختبر وفي الجسم الحي11،12 . وقد ثبت NHF-ATP لتحل محل ATP الذاتية للتحقيق في حركة ATP عبر أغشية الخلايا الحيوانية، سواء في خطوط الخلايا السرطانية وفي أنسجة الورم البشري xenografted على الفئرانالمناعية 11،12. وعلاوة على ذلك، إدارة مثبطات macropinocytosis للخلايا منعت استيعاب eATP، مما يشير إلى أن امتصاص داخل الخلايا من eATP ينطوي على آلية الماكروبينوسيتوتيك9،11،12. يسمح هذا البروتوكول بتكبيل الكولابيل القائم على المناعة ضد البروتينات الخاصة بالخلايا وبالتالي تحديد نوع الخلية الذي يستوعب NHF-ATP. باستخدام في الجسم الحي xenografts الورم والمجهر عالية الدقة، NHF-ATP يمكن تصور مكانيا عبر عينة الأنسجة وحتى داخل خلية واحدة. تسمح هذه الطرق أيضا بالتحليل الكمي ، مثل النسبة المئوية لامتصاص الخلايا ، وعدد الحويصلات الماكروبينوسيتوتيكية ، وحركية الاستيعاب. تصف هذه الورقة بالتفصيل كيف يمكن استخدام NHF-ATP ، التي تعمل بمفردها أو مع dextrans الفلورية الانسطية13و14و15و16، في إعدادات تجريبية مختلفة لدراسة استيعاب ATP وتوطينها داخل الخلايا ، بعد الاستيعاب في الخلايا.

Figure 1
الشكل 1: هياكل ATP الفلورسنت غير قابلة للهيدروليزابل وtetrapmethylrhodamine المسمى عالية الوزن الجزيئي الفلورسنت dextran. (أ) هيكل NHF-ATP. (ب)التمثيل التخطيطي ل HMWFD. المختصرات: ATP = أدينوسين ثلاثي الفوسفات; NHF-ATP = ATP الفلورية غير قابلة للهيدروليز؛ TMR = رباعي ميثيل هودامين; HMWFD = ارتفاع الوزن الجزيئي الفلورسنت dextran. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

Protocol

تم تنفيذ جميع الإجراءات المذكورة هنا وفقا لIACUC جامعة أوهايو ومع المعاهد القومية للصحة. 1. اختيار ATP الفلورسنت غير قابلة للهيدروليز (NHF-ATP) وديكسترانس حدد متتبعات الفلوروفورية المترافقة NHF-ATP(الشكل 1A)ومتتبعات الاندواس، والفلورسنت عالي ومنخفض الوزن الجزيئ?…

Representative Results

في المختبر دراسةوقد تجلى الاستيعاب داخل الخلايا لNHF-ATP من خلال المشاركة في توطين NHF-ATP مع HMWFD أو LMWFD(الشكل 4). يعتمد نجاح هذا الإجراء في المقام الأول على استخدام تركيزات مناسبة من NHF-ATP و dextrans وعلى تحديد النوع (الأنواع) المناسبة من dextrans (بولي ليسين مقابل …

Discussion

تم تطوير طريقة للتحليل المكاني والزمني والكمي للتدخيل الخلوي ل ATP غير القابل للهيدروليز. هذه الطريقة قابلة للتطبيق على نطاق واسع للاستخدام في النظم البيولوجية المتنوعة، بما في ذلك مختلف النماذج الورمية، والتي نقدم لها التعليم التقني والبيانات التمثيلية. للحصول على بيانات قابلة للتفسير ?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

تم إجراء عملية استئصال الأعصاب في الموقع في جامعة أوهايو علم الأمراض الهستوباثولوجية الأساسية. وقد دعم هذا العمل جزئيا من قبل صناديق بدء التشغيل (جامعة أوهايو كلية الآداب والعلوم) إلى نيلسن C; المعاهد القومية للصحة منح R15 CA242177-01 وجائزة RSAC لX تشن.

Materials

A549 cells, human lung epithelial, carcinoma National Cancer Institute n/a Less expensive source
Acetone Fisher Scientific S25904
Aluminum foil, Reynolds Grainger 6CHG6
Aqueous Mounting Medium, ProLong Gold Anti-fade Reagent ThermoFisher P36930
ATP analog Jena Biosciences NK-101
Autoclave, sterilizer Grainger 33ZZ40
Blades, cryostat, high profile C. L. Sturkey, Inc. DT554550
Calipers, vernier Grainger 4KU77
Cell medium, Ham's Nutrient Mixture F12, serum-free Millipore Sigma 51651C-1000ML
Centrifuge, refrigerated with swinging bucket rotor Eppendorf 5810R
Chloroform Acros Organics 423555000
Conical tube, 15 mL VWR 21008-216
Conical tube, 50 mL VWR 21008-242
Coverslips, glass, 12 mm Corning 2975-245
Cryostat, Leica CM1950 Leica Biosystems CM1950
Delicate task wipe, Kim Wipes Kimberly-Clark 34155
Dextran, Lysine fixable, High Molecular Weight (HMW) Invitrogen D1818 MW = 70,000, Tetramethylrhodamine
Dextran, Neutral, High Molecular Weight (HMW) Invitrogen D1819
Dulbecco's Modified Eagle Medium (DMEM), serum-free Fisher Scientific 11885076
Dry ice Local delivery Custom order
Epifluorescent imaging system, Nikon NiU and Nikon NIS Elements acquisition software Nikon Custom order
Ethanol Fisher Scientific BP2818-4
Fetal bovine serum (FBS) ThermoFisher 16000044
Forceps, Dumont #7, curved Fine Science Tools 11274-20
Forceps, Dumont #5, straight Fine Science Tools 11254-20
Gloves (small, medium, large) Microflex N191, N192, N193
Gloves, MAPA Temp-Ice 700 Thermal (for handling dry ice) Fisher Scientific 19-046-563
Hemocytometer Daigger EF16034F EA
Incubator, cell culture Eppendorf Galaxy 170 S
Labelling tape Fisher Scientific 159015R
Marking pen, Sharpie (ultra-fine) Staples 642736
Mice, immunodeficient (Nu/J) Jackson Laboratory 2019
Microcentrifuge, accuSpin Micro17 Fisher Scientific 13-100-675
Microcentrifgue tubes, Eppendorf tubes (1.5 mL) Axygen MCT-150-C
Microscope slide box Fisher Scientific 50-751-4983
Needle, 27 gauge Becton-Dickinson 752 0071
Paintbrush Grainger 39AL12
Paper towels Staples 33550
Paraformaldehyde Acros Organics 416785000
Penicillin/Streptomycin Gibco 15140122
Perforated spoon, 15 mm diameter, 135 mm length Roboz Surgical Instrument Co. RS-6162
Phosphate buffered saline (PBS) Fisher Scientific BP3991
Pipet tips (10 μL) Fisher Scientific 02-707-438
Pipet tips (200 μL) Fisher Scientific 02-707-411
Pipet tips (1000 μL) Fisher Scientific 02-707-403
Pipets, serological (10 mL) VWR 89130-910
Pippetor, Gilson P2 Daigger EF9930A
Pipettor Starter Kit, Gilson (2-10 μL, 20-200 μL, 200-1000 μL) Daigger EF9931A
Platform shaker – orbital, benchtop Cole-Parmer EW-51710-23
Positively-charged microscope slides, Superfrost Fisher Scientific 12-550-15
Scalpel, size 10, Surgical Design, Inc. Fisher Scientific 22-079-707
Scissors, surgical – sharp, curved Fine Science Tools 14005-12
Software for image analysis, Nikon Elements Nikon Custom order
Software for image analysis, ImageJ (FIJI) National Institutes of Health n/a Download online (free)
Specimen disc 30 mm (chuck holder), cryostat accessory Leica Biosystems 14047740044
Staining tray, 245 mm BioAssay Dish Corning 431111
Syringe, 1 cc Becton-Dickinson 309623
Tape, laboratory, 19 mm width Fisher Scientific 15-901-5R
Timer Fisher Scientific 14-649-17
Tissue culture dish, 100 x 15 mm diameter Fisher Scientific 08-757-100D
Tissue culture flask, 225 cm2 ThermoFisher 159933
Tissue culture plate, 24-well Becton-Dickinson 353226
Tissue embedding mold, stainless steel Tissue Tek 4161
Tissue Freezing Medium, Optimal Cutting Temperature (OCT) Fisher Scientific 4585
Trypsin-EDTA (ethylenediaminetetraacetic acid), 0.25% Gibco 25200072
Water bath, Precision GP 2S ThermoFisher TSGP2S

References

  1. Pavlova, N. N., Thompson, C. B. The emerging hallmarks of cancer metabolism. Cell Metabolism. 23 (1), 27-47 (2016).
  2. Pellegatti, P., et al. Increased level of extracellular ATP at tumor sites: in vivo imaging with plasma membrane luciferase. PLoS ONE. 3, 25992008 (2008).
  3. Falzoni, S., Donvito, G., Di Virgilio, F. Detecting adenosine triphosphate in the pericellular space. Interface Focus. 3 (3), 20120101 (2013).
  4. Michaud, M., et al. Autophagy-dependent anticancer immune responses induced by chemotherapeutic agents in mice. Science. 334, 1573-1577 (2011).
  5. Wilhelm, K., et al. Graft-versus-host disease is enhanced by extracellular ATP activating P2X7R. Nature Medicine. 16, 1434-1438 (2010).
  6. Vander Heiden, M. G., Cantley, L. C., Thompson, C. B. Understanding the Warburg effect: the metabolic requirements of cell proliferation. Science. 324, 1029-1033 (2009).
  7. Cairns, R. A., Harris, I. S., Mak, T. W. Regulation of cancer cell metabolism. Nature Reviews Cancer. 11, 85-95 (2011).
  8. Chen, X., Qian, Y., Wu, S. The Warburg effect: evolving interpretations of an established concept. Free Radical Biology & Medicine. 79, 253-263 (2015).
  9. Wang, X., et al. Extracellular ATP, as an energy and phosphorylating molecule, induces different types of drug resistances in cancer cells through ATP internalization and intracellular ATP level increase. Oncotarget. 8 (5), 87860-87877 (2017).
  10. Patel, A., et al. ATP as a biological hydrotrope. Science. 356, 753-756 (2017).
  11. Qian, Y., et al. Extracellular ATP is internalized by macropinocytosis and induces intracellular ATP increase and drug resistance in cancer cells. Cancer Letters. 351, 242-251 (2014).
  12. Qian, Y., Wang, X., Li, Y., Cao, Y., Chen, X. Extracellular ATP a new player in cancer metabolism: NSCLC cells internalize ATP in vitro and in vivo using multiple endocytic mechanisms. Molecular Cancer Research. 14, 1087-1096 (2016).
  13. Commisso, C., et al. Macropinocytosis of protein is an amino acid supply route in Ras-transformed cells. Nature. 497, 633-637 (2013).
  14. Li, L., et al. The effect of the size of fluorescent dextran on its endocytic pathway. Cell Biology International. 39, 531-539 (2015).
  15. Yanagawa, Y., Matsumoto, M., Togashi, H. Enhanced dendritic cell antigen uptake via alpha2 adrenoceptor-mediated PI3K activation following brief exposure to noradrenaline. Journal of Immunology. 185, 5762-5768 (2010).
  16. Hoppe, H. C., et al. Antimalarial quinolines and artemisinin inhibit endocytosis in Plasmodium falciparum. Antimicrobial Agents & Chemotherapy. 48, 2370-2378 (2004).
  17. Chaudry, I. H. Does ATP cross the cell plasma membrane. Yale Journal of Biology & Medicine. 55, 1-10 (1982).
  18. Pant, H. C., Terakawa, S., Yoshioka, T., Tasaki, I., Gainer, H. Evidence for the utilization of extracellular [gamma-32P]ATP for the phosphorylation of intracellular proteins in the squid giant axon. Biochimica et Biophysica Acta. 582, 107-114 (1979).
  19. Chaudry, I. H., Baue, A. E. Further evidence for ATP uptake by rat tissues. Biochimica et Biophysica Acta. 628, 336-342 (1980).
  20. Koppenol, W. H., Bounds, P. L., Dang, C. V. Otto Warburg’s contributions to current concepts of cancer metabolism. Nature Reviews Cancer. 11, 325-337 (2011).
  21. Dang, C. V. Links between metabolism and cancer. Genes & Development. 26, 877-890 (2012).
  22. Israelsen, W. J., Vander Heiden, M. G. ATP consumption promotes cancer metabolism. Cell. 143, 669-671 (2010).
  23. Koster, J. C., Permutt, M. A., Nichols, C. G. Diabetes and insulin secretion: the ATP-sensitive K+ channel (K ATP) connection. Diabetes. 54, 3065-3072 (2005).
  24. Szendroedi, J., et al. Muscle mitochondrial ATP synthesis and glucose transport/phosphorylation in type 2 diabetes. PLoS Medicine. 4, 154 (2007).
  25. Miyamoto, S., et al. Mass spectrometry imaging reveals elevated glomerular ATP/AMP in diabetes/obesity and identifies sphingomyelin as a possible mediator. EBioMedicine. 7, 121-134 (2016).
check_url/62768?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Nielsen, C. M., Qian, Y., Adhicary, S., Li, Y., Shriwas, P., Wang, X., Bachmann, L., Chen, X. Fluorescence Microscopy for ATP Internalization Mediated by Macropinocytosis in Human Tumor Cells and Tumor-xenografted Mice. J. Vis. Exp. (172), e62768, doi:10.3791/62768 (2021).

View Video