Summary

Fluorescentiemicroscopie voor ATP-internalisatie gemedieerd door macropinocytose in menselijke tumorcellen en tumor-xenogetransplanteerde muizen

Published: June 30, 2021
doi:

Summary

We ontwikkelden een reproduceerbare methode om de internalisatie van niet-hydrolyseerbaar fluorescerend adenosinetrifosfaat (ATP), een ATP-surrogaat, met hoge cellulaire resolutie te visualiseren. We hebben onze methode gevalideerd met behulp van onafhankelijke in vitro en in vivo assays – menselijke tumorcellijnen en immunodeficiënte muizen xenografeerd met menselijk tumorweefsel.

Abstract

Van adenosinetrifosfaat (ATP), inclusief extracellulaire ATP (eATP), is aangetoond dat het een belangrijke rol speelt in verschillende aspecten van tumorigenese, zoals geneesmiddelresistentie, epitheliale-mesenchymale overgang (EMT) en metastase. Intratumorale eATP is 103 tot 104 keer hoger in concentratie dan in normale weefsels. Terwijl eATP functioneert als een boodschapper om purinerge signalering voor EMT-inductie te activeren, wordt het ook geïnternaliseerd door kankercellen door middel van upregulated macropinocytose, een specifiek type endocytose, om een breed scala aan biologische functies uit te voeren. Deze functies omvatten het leveren van energie aan ATP-vereisende biochemische reacties, het doneren van fosfaatgroepen tijdens signaaltransductie en het vergemakkelijken of versnellen van genexpressie als een transcriptionele cofactor. ATP is direct beschikbaar en de studie op kanker en andere gebieden zal ongetwijfeld toenemen. EATP-studie blijft echter in een vroeg stadium en onopgeloste vragen blijven onbeantwoord voordat de belangrijke en veelzijdige activiteiten van eATP en geïnternaliseerde intracellulaire ATP volledig kunnen worden ontrafeld.

De bijdragen van de laboratoria van deze auteurs aan deze vroege eATP-studies omvatten microscopische beeldvorming van niet-hydrolyseerbare fluorescerende ATP, gekoppeld aan fluorescentie dextrans met een hoog en laag molecuulgewicht, die dienen als macropinocytose en endocytose tracers, evenals verschillende endocytoseremmers, om het eATP-internalisatieproces te controleren en te karakteriseren. Deze beeldvormingsmodaliteit werd toegepast op tumorcellijnen en op immunodeficiënte muizen, xenogegrafeerd met menselijke kankertumoren, om eATP-internalisatie in vitro en in vivo te bestuderen. Dit artikel beschrijft deze in vitro en in vivo protocollen, met de nadruk op het modificeren en finetunen van assaycondities, zodat de macropinocytose-/endocytose-gemedieerde eATP-internalisatie assays met succes kunnen worden uitgevoerd in verschillende systemen.

Introduction

De opportunistische opname van intratumorale extracellulaire (dwz) voedingsstoffen is onlangs uitgeroepen tot een belangrijk kenmerk voor kankermetabolisme1. Een van deze belangrijke voedingsstoffen is ATP, omdat de concentratie van ieATP 103 en 104 keer hoger is dan die in normale weefsels, in het bereik van enkele honderden μM tot lage mM2,3,4,5. Als een belangrijk energie- en signaalmolecuul speelt ATP een centrale rol in het cellulaire metabolisme in kankerachtige en gezonde cellen6,7,8. Extracellulaire ATP is niet alleen betrokken bij de groei van kankercellen, maar bevordert ook de resistentie tegen geneesmiddelen9. Eerder niet-herkende functies van ATP, zoals hydrotrope activiteit, zijn onlangs geïdentificeerd, waardoor ATP-betrokkenheid bij ziekten zoals de ziekte van Alzheimer wordt geïmpliceerd10. Inderdaad, het lijkt erop dat ons begrip van ATP en zijn functies in kankercellen, gezonde cellen en andere zieke cellen verre van compleet is. Vanwege de instabiliteit van ATP en de hoge omloopsnelheden in cellen is het echter technisch een uitdaging om de beweging van ATP over het celmembraan en in de cel te volgen.

Om dit probleem aan te pakken en in de behoefte van dit onderzoeksgebied te voorzien, werd een methode ontwikkeld waarbij niet-hydrolyseerbare fluorescerende ATP (NHF-ATP) (Figuur 1) werd gebruikt als surrogaat om de internalisatie van ATP te visualiseren en de intracellulaire ruimtelijke lokalisatie van geïnternaliseerde ATP te observeren, zowel in vitro als in vivo11,12 . Van NHF-ATP is aangetoond dat het endogene ATP vervangt om ATP-beweging over dierlijke celmembranen te onderzoeken, zowel in kankercellijnen als in menselijk tumorweefsel xenogetransplanteerd op immunodeficiënte muizen11,12. Bovendien blokkeerde het toedienen van macropinocytoseremmers aan cellen eATP-internalisatie, wat suggereert dat intracellulaire opname van eATP een macropinocytotisch mechanismeomvat 9,11,12. Dit protocol maakt immunobased colabeling tegen celspecifieke eiwitten mogelijk en dus identificatie van welk celtype NHF-ATP internaliseert. Met behulp van in vivo tumor xenografts en hoge resolutie microscopie kan NHF-ATP ruimtelijk worden gevisualiseerd over het weefselmonster en zelfs binnen een enkele cel. Deze methoden maken ook kwantitatieve analyse mogelijk, zoals het percentage cellulaire opname, het aantal macropinocytotische blaasjes en internalisatiekinetiek. Dit artikel beschrijft in detail hoe NHF-ATP, alleen of samen met endocytose-tracer fluorescerende dextrans13,14,15,16, kan worden gebruikt in verschillende experimentele omgevingen om de internalisatie en intracellulaire lokalisatie van ATP te bestuderen, na internalisatie in cellen.

Figure 1
Figuur 1: Structuren van niet-hydrolyseerbare fluorescerende ATP en tetramethylrhodamine gelabeld met hoog molecuulgewicht fluorescerend dextran. (A) Structuur van NHF-ATP. (B) Schematische weergave van HMWFD. Afkortingen: ATP = adenosinetrifosfaat; NHF-ATP = niet-hydrolyseerbare fluorescerende ATP; TMR = tetramethylrhodamine; HMWFD = fluorescerend dextran met hoog molecuulgewicht. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Protocol

Alle hierin gerapporteerde procedures werden uitgevoerd in overeenstemming met de IACUC van Ohio University en met de NIH. 1. Selectie van niet-hydrolyseerbare fluorescerende ATP (NHF-ATP) en dextrans Selecteer een fluorofoor-geconjugeerde NHF-ATP (Figuur 1A) en endocytose tracers, hoge en lage moleculaire gewicht fluorescerende dextrans (TMR-HMWFD en TMR-LMWFD) (Figuur 1B), op basis van de gewenste emissiegolflengten (bijv….

Representative Results

In vitro studieIntracellulaire internalisatie van NHF-ATP werd aangetoond door co-lokalisatie van NHF-ATP met HMWFD of LMWFD(figuur 4). Het succes van deze procedure hangt voornamelijk af van het gebruik van geschikte concentraties NHF-ATP en dextrans en van het bepalen van het juiste type of de juiste type(n) dextrans (poly-lysine vs. neutraal). Om bijvoorbeeld macropinocytose te onderzoeken, werd HMWFD gekozen omdat het alleen wordt geïntern…

Discussion

Er werd een methode ontwikkeld voor ruimtelijke, temporele en kwantitatieve analyse van de cellulaire internalisatie van niet-hydrolyseerbare ATP. Deze methode is breed toepasbaar voor gebruik in diverse biologische systemen, waaronder verschillende tumorogene modellen, waarvoor we technische instructies en representatieve gegevens verstrekken. Om interpreteerbare gegevens te verkrijgen tijdens in vivo ATP-internalisatiestudies (sectie 4 van het protocol), is het van cruciaal belang om de experimentele tijd die …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Cryosectie werd ter plaatse uitgevoerd in de Ohio University Histopathology Core. Dit werk werd deels ondersteund door start-upfondsen (Ohio University College of Arts & Sciences) aan C Nielsen; NIH-subsidie R15 CA242177-01 en RSAC-toekenning aan X Chen.

Materials

A549 cells, human lung epithelial, carcinoma National Cancer Institute n/a Less expensive source
Acetone Fisher Scientific S25904
Aluminum foil, Reynolds Grainger 6CHG6
Aqueous Mounting Medium, ProLong Gold Anti-fade Reagent ThermoFisher P36930
ATP analog Jena Biosciences NK-101
Autoclave, sterilizer Grainger 33ZZ40
Blades, cryostat, high profile C. L. Sturkey, Inc. DT554550
Calipers, vernier Grainger 4KU77
Cell medium, Ham's Nutrient Mixture F12, serum-free Millipore Sigma 51651C-1000ML
Centrifuge, refrigerated with swinging bucket rotor Eppendorf 5810R
Chloroform Acros Organics 423555000
Conical tube, 15 mL VWR 21008-216
Conical tube, 50 mL VWR 21008-242
Coverslips, glass, 12 mm Corning 2975-245
Cryostat, Leica CM1950 Leica Biosystems CM1950
Delicate task wipe, Kim Wipes Kimberly-Clark 34155
Dextran, Lysine fixable, High Molecular Weight (HMW) Invitrogen D1818 MW = 70,000, Tetramethylrhodamine
Dextran, Neutral, High Molecular Weight (HMW) Invitrogen D1819
Dulbecco's Modified Eagle Medium (DMEM), serum-free Fisher Scientific 11885076
Dry ice Local delivery Custom order
Epifluorescent imaging system, Nikon NiU and Nikon NIS Elements acquisition software Nikon Custom order
Ethanol Fisher Scientific BP2818-4
Fetal bovine serum (FBS) ThermoFisher 16000044
Forceps, Dumont #7, curved Fine Science Tools 11274-20
Forceps, Dumont #5, straight Fine Science Tools 11254-20
Gloves (small, medium, large) Microflex N191, N192, N193
Gloves, MAPA Temp-Ice 700 Thermal (for handling dry ice) Fisher Scientific 19-046-563
Hemocytometer Daigger EF16034F EA
Incubator, cell culture Eppendorf Galaxy 170 S
Labelling tape Fisher Scientific 159015R
Marking pen, Sharpie (ultra-fine) Staples 642736
Mice, immunodeficient (Nu/J) Jackson Laboratory 2019
Microcentrifuge, accuSpin Micro17 Fisher Scientific 13-100-675
Microcentrifgue tubes, Eppendorf tubes (1.5 mL) Axygen MCT-150-C
Microscope slide box Fisher Scientific 50-751-4983
Needle, 27 gauge Becton-Dickinson 752 0071
Paintbrush Grainger 39AL12
Paper towels Staples 33550
Paraformaldehyde Acros Organics 416785000
Penicillin/Streptomycin Gibco 15140122
Perforated spoon, 15 mm diameter, 135 mm length Roboz Surgical Instrument Co. RS-6162
Phosphate buffered saline (PBS) Fisher Scientific BP3991
Pipet tips (10 μL) Fisher Scientific 02-707-438
Pipet tips (200 μL) Fisher Scientific 02-707-411
Pipet tips (1000 μL) Fisher Scientific 02-707-403
Pipets, serological (10 mL) VWR 89130-910
Pippetor, Gilson P2 Daigger EF9930A
Pipettor Starter Kit, Gilson (2-10 μL, 20-200 μL, 200-1000 μL) Daigger EF9931A
Platform shaker – orbital, benchtop Cole-Parmer EW-51710-23
Positively-charged microscope slides, Superfrost Fisher Scientific 12-550-15
Scalpel, size 10, Surgical Design, Inc. Fisher Scientific 22-079-707
Scissors, surgical – sharp, curved Fine Science Tools 14005-12
Software for image analysis, Nikon Elements Nikon Custom order
Software for image analysis, ImageJ (FIJI) National Institutes of Health n/a Download online (free)
Specimen disc 30 mm (chuck holder), cryostat accessory Leica Biosystems 14047740044
Staining tray, 245 mm BioAssay Dish Corning 431111
Syringe, 1 cc Becton-Dickinson 309623
Tape, laboratory, 19 mm width Fisher Scientific 15-901-5R
Timer Fisher Scientific 14-649-17
Tissue culture dish, 100 x 15 mm diameter Fisher Scientific 08-757-100D
Tissue culture flask, 225 cm2 ThermoFisher 159933
Tissue culture plate, 24-well Becton-Dickinson 353226
Tissue embedding mold, stainless steel Tissue Tek 4161
Tissue Freezing Medium, Optimal Cutting Temperature (OCT) Fisher Scientific 4585
Trypsin-EDTA (ethylenediaminetetraacetic acid), 0.25% Gibco 25200072
Water bath, Precision GP 2S ThermoFisher TSGP2S

References

  1. Pavlova, N. N., Thompson, C. B. The emerging hallmarks of cancer metabolism. Cell Metabolism. 23 (1), 27-47 (2016).
  2. Pellegatti, P., et al. Increased level of extracellular ATP at tumor sites: in vivo imaging with plasma membrane luciferase. PLoS ONE. 3, 25992008 (2008).
  3. Falzoni, S., Donvito, G., Di Virgilio, F. Detecting adenosine triphosphate in the pericellular space. Interface Focus. 3 (3), 20120101 (2013).
  4. Michaud, M., et al. Autophagy-dependent anticancer immune responses induced by chemotherapeutic agents in mice. Science. 334, 1573-1577 (2011).
  5. Wilhelm, K., et al. Graft-versus-host disease is enhanced by extracellular ATP activating P2X7R. Nature Medicine. 16, 1434-1438 (2010).
  6. Vander Heiden, M. G., Cantley, L. C., Thompson, C. B. Understanding the Warburg effect: the metabolic requirements of cell proliferation. Science. 324, 1029-1033 (2009).
  7. Cairns, R. A., Harris, I. S., Mak, T. W. Regulation of cancer cell metabolism. Nature Reviews Cancer. 11, 85-95 (2011).
  8. Chen, X., Qian, Y., Wu, S. The Warburg effect: evolving interpretations of an established concept. Free Radical Biology & Medicine. 79, 253-263 (2015).
  9. Wang, X., et al. Extracellular ATP, as an energy and phosphorylating molecule, induces different types of drug resistances in cancer cells through ATP internalization and intracellular ATP level increase. Oncotarget. 8 (5), 87860-87877 (2017).
  10. Patel, A., et al. ATP as a biological hydrotrope. Science. 356, 753-756 (2017).
  11. Qian, Y., et al. Extracellular ATP is internalized by macropinocytosis and induces intracellular ATP increase and drug resistance in cancer cells. Cancer Letters. 351, 242-251 (2014).
  12. Qian, Y., Wang, X., Li, Y., Cao, Y., Chen, X. Extracellular ATP a new player in cancer metabolism: NSCLC cells internalize ATP in vitro and in vivo using multiple endocytic mechanisms. Molecular Cancer Research. 14, 1087-1096 (2016).
  13. Commisso, C., et al. Macropinocytosis of protein is an amino acid supply route in Ras-transformed cells. Nature. 497, 633-637 (2013).
  14. Li, L., et al. The effect of the size of fluorescent dextran on its endocytic pathway. Cell Biology International. 39, 531-539 (2015).
  15. Yanagawa, Y., Matsumoto, M., Togashi, H. Enhanced dendritic cell antigen uptake via alpha2 adrenoceptor-mediated PI3K activation following brief exposure to noradrenaline. Journal of Immunology. 185, 5762-5768 (2010).
  16. Hoppe, H. C., et al. Antimalarial quinolines and artemisinin inhibit endocytosis in Plasmodium falciparum. Antimicrobial Agents & Chemotherapy. 48, 2370-2378 (2004).
  17. Chaudry, I. H. Does ATP cross the cell plasma membrane. Yale Journal of Biology & Medicine. 55, 1-10 (1982).
  18. Pant, H. C., Terakawa, S., Yoshioka, T., Tasaki, I., Gainer, H. Evidence for the utilization of extracellular [gamma-32P]ATP for the phosphorylation of intracellular proteins in the squid giant axon. Biochimica et Biophysica Acta. 582, 107-114 (1979).
  19. Chaudry, I. H., Baue, A. E. Further evidence for ATP uptake by rat tissues. Biochimica et Biophysica Acta. 628, 336-342 (1980).
  20. Koppenol, W. H., Bounds, P. L., Dang, C. V. Otto Warburg’s contributions to current concepts of cancer metabolism. Nature Reviews Cancer. 11, 325-337 (2011).
  21. Dang, C. V. Links between metabolism and cancer. Genes & Development. 26, 877-890 (2012).
  22. Israelsen, W. J., Vander Heiden, M. G. ATP consumption promotes cancer metabolism. Cell. 143, 669-671 (2010).
  23. Koster, J. C., Permutt, M. A., Nichols, C. G. Diabetes and insulin secretion: the ATP-sensitive K+ channel (K ATP) connection. Diabetes. 54, 3065-3072 (2005).
  24. Szendroedi, J., et al. Muscle mitochondrial ATP synthesis and glucose transport/phosphorylation in type 2 diabetes. PLoS Medicine. 4, 154 (2007).
  25. Miyamoto, S., et al. Mass spectrometry imaging reveals elevated glomerular ATP/AMP in diabetes/obesity and identifies sphingomyelin as a possible mediator. EBioMedicine. 7, 121-134 (2016).
check_url/62768?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Nielsen, C. M., Qian, Y., Adhicary, S., Li, Y., Shriwas, P., Wang, X., Bachmann, L., Chen, X. Fluorescence Microscopy for ATP Internalization Mediated by Macropinocytosis in Human Tumor Cells and Tumor-xenografted Mice. J. Vis. Exp. (172), e62768, doi:10.3791/62768 (2021).

View Video