Summary

إعادة البرمجة المباشرة للخلايا الليفية للفأر في الخلايا الصباغية

Published: August 27, 2021
doi:

Summary

هنا ، نصف نظام إعادة برمجة مباشر محسن للخلايا الصباغية ونظام تعبئة فيروسات عالي الكفاءة ومركز يضمن إعادة برمجة مباشرة سلسة.

Abstract

فقدان وظيفة الخلايا الصباغية يؤدي إلى البهاق ، مما يؤثر بشكل خطير على الصحة البدنية والعقلية للأفراد المصابين. في الوقت الحاضر ، لا يوجد علاج فعال طويل الأجل للبهاق. لذلك ، من الضروري تطوير علاج مناسب وفعال للبهاق. يبدو أن تقنية الطب التجديدي لإعادة البرمجة المباشرة لخلايا الجلد إلى خلايا صباغية هي علاج جديد واعد للبهاق. وهذا ينطوي على إعادة برمجة مباشرة من خلايا الجلد المريض إلى الخلايا الصباغية الوظيفية للمساعدة في تخفيف فقدان الخلايا الصباغية في المرضى الذين يعانون من البهاق. ومع ذلك ، يجب اختبار هذه الطريقة أولا على الفئران. على الرغم من أن إعادة البرمجة المباشرة تستخدم على نطاق واسع ، إلا أنه لا يوجد بروتوكول واضح لإعادة البرمجة المباشرة في الخلايا الصباغية. علاوة على ذلك ، فإن عدد عوامل النسخ المتاحة ساحق.

هنا ، يتم تقديم بروتوكول نظام تغليف فيروس lentivirus المركز لإنتاج عوامل النسخ المختارة لإعادة برمجة خلايا الجلد إلى الخلايا الصباغية ، بما في ذلك Sox10 و Mitf و Pax3 و Sox2 و Sox9 و Snai2. أصيبت الخلايا الليفية الجنينية الفئران (MEFs) بفيروس lentivirus المركز لجميع عوامل النسخ هذه لإعادة البرمجة المباشرة ل MEFs إلى الخلايا الصباغية المستحثة (iMels) في المختبر. علاوة على ذلك ، تم فحص عوامل النسخ هذه ، وتم تحسين النظام لإعادة البرمجة المباشرة إلى الخلايا الصباغية. تم زيادة التعبير عن العلامات المميزة للميلانين في iMels على مستوى الجين أو البروتين بشكل كبير. تشير هذه النتائج إلى أن إعادة البرمجة المباشرة للخلايا الليفية إلى الخلايا الصباغية يمكن أن تكون استراتيجية علاجية جديدة ناجحة للبهاق وتؤكد آلية تطور الخلايا الصباغية ، والتي ستوفر الأساس لمزيد من إعادة البرمجة المباشرة للخلايا الليفية إلى الخلايا الصباغية في الجسم الحي.

Introduction

البهاق هو مرض جلدي يؤثر بشكل خطير على الصحة البدنية والعقلية للأفراد المصابين. لأسباب مختلفة ، بما في ذلك تشوهات التمثيل الغذائي ، والإجهاد التأكسدي ، وتوليد الوسطاء الالتهابيين ، وانفصال الخلايا ، واستجابة المناعة الذاتية ، يتم فقدان الخلايا الصباغية الوظيفية ، ويتم إيقاف إفراز الميلانين ، مما يؤدي إلى تطور البهاق 1,2. تحدث هذه الحالة على نطاق واسع وهي مشكلة خاصة على الوجه. العلاج الرئيسي هو الاستخدام النظامي للكورتيكوستيرويدات وأجهزة المناعة. يمكن استخدام العلاج الضوئي للأمراض الجهازية أو المحلية ، وهناك علاجات جراحية ، مثل زرع الجلد المثقب وزرع الخلايا الصباغية الذاتية3،4،5. ومع ذلك ، فإن المرضى الذين يستخدمون العلاج الدوائي والعلاج الضوئي عرضة للانتكاس ، وهذه العلاجات لها آثار علاجية سيئة على المدى الطويل. العلاج الجراحي مؤلم وفعال بشكل معتدل فقط 2,6. لذلك ، هناك حاجة إلى استراتيجية علاجية جديدة وفعالة للبهاق.

إن إعادة برمجة الخلايا الجذعية المستحثة متعددة القدرات (iPSCs) تعكس هذه الخلايا من حالتها الطرفية إلى حالة متعددة القدرات ، وهي عملية تتوسط فيها عوامل النسخ ، Oct4 و Sox2 و Klf4 و c-Myc7. ومع ذلك ، نظرا لإمكانية الإصابة بالأورام ووقت الإنتاج الطويل ، فقد قوبلت هذه التكنولوجيا بالشك عند تطبيقها على الإعدادات السريرية8. إعادة البرمجة المباشرة هي تقنية تجعل نوعا واحدا من الخلايا الطرفية يتحول إلى نوع آخر من الخلايا الطرفية9. يتم تحقيق هذه العملية من خلال عوامل النسخ المناسبة. وقد تمت بالفعل إعادة برمجة خلايا مختلفة مباشرة بنجاح، بما في ذلك الخلايا العضلية القلبية10 والخلايا العصبية 11 وخلايا الشعر القوقعية12. حتى أن بعض الباحثين أعادوا برمجة أنسجة الجلد مباشرة في الموقع ، والتي يمكن استخدامها لإصلاح الجروح13. تشمل مزايا إعادة البرمجة المباشرة تقليل أوقات الانتظار والتكاليف ، وانخفاض خطر الإصابة بالسرطان ، وتقليل المشاكل الأخلاقية ، وفهم أفضل للآلية الكامنة وراء تحديد مصير الخلية9.

على الرغم من أن طريقة إعادة البرمجة المباشرة تستخدم على نطاق واسع ، إلا أنه لا توجد حاليا طريقة محددة لإعادة البرمجة المباشرة لخلايا الجلد إلى خلايا صباغية ، خاصة بسبب عوامل النسخ العديدة التي يجب مراعاتها14,15. تم استخدام عوامل النسخ ، Mitf و Sox10 و Pax3 ، لإعادة البرمجة المباشرة لخلايا الجلد إلى الخلايا الصباغية14. في المقابل ، تم استخدام مزيج من MITF و PAX3 و SOX2 و SOX9 أيضا لإعادة البرمجة المباشرة لخلايا الجلد إلى خلايا ميلانية بشرية في دراسة أخرى15. في هذا البروتوكول ، على الرغم من استخدام طريقة فحص مختلفة ، تم الحصول على نفس النتيجة مع مزيج من Mitf و Sox10 و Pax3 لإعادة البرمجة المباشرة لخلايا الجلد إلى خلايا صباغية كما هو موضح سابقا14. يمكن أن يوفر تطوير نظام لتوليد الخلايا الصباغية من خلايا الجلد الأخرى مخططا لتحويل خلايا الجلد الأخرى لمرضى البهاق إلى خلايا صباغية. وبالتالي ، من الأهمية بمكان بناء طريقة بسيطة وفعالة لإعادة البرمجة المباشرة هذه لتوليد الخلايا الصباغية بنجاح.

Protocol

تمت الموافقة على هذا العمل من قبل لجنة إدارة واستخدام المختبر في جامعة جيانغسو (UJS-IACUC-AP–20190305010). تم إجراء التجارب وفقا للمعايير التي وضعتها جمعية تقييم واعتماد المنظمة الدولية لرعاية المختبرات (AAALAC International). لم تكن هناك تجارب تشمل البشر ، لذلك لم يكن هذا العمل بحاجة إلى موافقة من لجنة أخلاقي…

Representative Results

تتضمن هذه المقالة بروتوكولات نظام تغليف فيروس lentivirus المركز لإنتاج lentivirus من عوامل النسخ لإعادة البرمجة المباشرة للخلايا الليفية إلى الخلايا الصباغية وبروتوكولات لفحص عوامل النسخ وإعادة البرمجة المباشرة للخلايا الصباغية من MEFs. تم تقييم نجاح إنتاج فيروس lentivirus المركز من خلا…

Discussion

تعد جودة الفيروس أمرا بالغ الأهمية لنجاح إعادة البرمجة المباشرة للخلايا الصباغية في هذا البروتوكول. طريقة تعبئة وتركيز الفيروسات في هذا البروتوكول بسيطة وسهلة التكرار ولا تعتمد على أي كاشف مركز مساعد. يمكن اتباع هذا البروتوكول بنجاح في معظم المختبرات. لضمان جودة الفيروس المركز ، تحتاج ا?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

تم دعم هذه الدراسة جزئيا من خلال منح من المؤسسة الوطنية للعلوم الطبيعية في الصين (82070638 و 81770621) ومؤسسة العلوم الطبيعية في مقاطعة جيانغسو (BK20180281).

Materials

0.05% Trypsin-EDTA Gibco 25300-062 Stored at -20 °C
0.45 μM filter Millipore SLHVR33RB
5 mL polystyrene round bottom tube Falcon 352052
95%/100% ethanol LANBAO 210106 Stored at RT
Adenine Sigma A2786 Stock concentration 40 mg/mL
Final concentration 24 µg/mL
Alexa Fluor 555 Goat anti-Mouse IgG2a Invitrogen A21137 Dilution of 1:500 to use
Antibiotics(Pen/Strep) Gibco 15140-122 Stored at -20 °C
Anti-TRP1/TYRP1 Antibody Millipore MABC592 Host/Isotype: Mouse IgG2a
Species reactivity: Mouse/Human
Dilution of 1:200 to use
Anti-TRP2/DCT Antibody Abcam ab74073 Host/Isotype: Rabbit IgG
Species reactivity: Mouse/Human Dilution of 1:200 to use
CHIR99021 Stemgent 04-0004 Stock concentration 10 mM
Final concentration 3 μM
Cholera toxin Sigma C8052 Stock concentration 0.3 mg/mL
Final concentration 20 pM
Cy3 Goat anti-Rabbit IgG (H+L) Jackson Immunoresearch 111-165-144 Dilution of 1:500 to use
DMEM (High glucose) HyClone SH30243.01 Stored at 4 °C
DMSO  Sigma D2650 Stored at RT
FBS Gibco 10270-106 Stored at -20 °C
Heat-inactivated before use
Gelatin Sigma G9391 Stored at RT
GFP-PURO plasmids (Mitf, Sox10, Pax3, Sox2, Sox9 and Snai2) Hanheng Biological Technology Co., Ltd. pHBLPm003198 pHBLPm001143 pHBLPm002968 pHBLPm002981 pHBLPm004348 pHBLPm000325 Stored at -20 °C
Hematoxylin Abcam ab220365 Stored at RT
Human EDN3 American-Peptide 88-5-10A Stock concentration 100 μM
Final concentration 0.1 μM
Hydrocortisone Sigma H0888 Stock concentration 100 µg/mL
Final concentration 0.5 µg/mL
L-DOPA Sigma D9628 Stored at RT
Lipofectamine 2000 Invitrogen 11668-019 Transfection reagent, stored at 4 °C
Masson-Fontana staining kit Solarbio G2032 Stored at 4 °C
Neutral balsam Solarbio G8590 Stored at 4 °C
Paraformaldehyde Sigma P6148 Stored at RT
PBS (-) Gibco C10010500BT Stored at RT
Phorbol 12-myristate 13-acetate (TPA) Sigma P8139 Stock concentration 1 mM
Final concentration 200 nM
Polybrene Sigma H9268 cationic polymeric transfection reagent; Stock concentration 8 μg/µL
Final concentration 4 ng/µL
Puromycin Gibco A11138-03 Stored at -20 °C
Recombinant human bFGF Invitrogen 13256-029 Stock concentration 4 μg/mL
Final concentration 10 ng/mL
Recombinant human insulin Sigma  I3536 Stock concentration 10 mg/mL
Final concentration 5 µg/mL
Recombinant human SCF R&D 255-SC-010 Stock concentration 200 μg/mL
Final concentration 100 ng/mL
RPMI-1640 Gibco 11875-093 Stored at 4 °C
Xylene Sigma 1330-20-7 Stored at RT

References

  1. Ezzedine, K., Eleftheriadou, V., Whitton, M., van Geel, N. Vitiligo. Lancet. 386 (9988), 74-84 (2015).
  2. Picardo, M., et al. Vitiligo. Nature Reviews. Disease Primers. 1, 15011 (2015).
  3. Speeckaert, R., van Geel, N. Vitiligo: An update on pathophysiology and treatment options. American Journal of Clinical Dermatology. 18 (6), 733-744 (2017).
  4. Cortelazzi, C., Pellacani, G., Raposio, E., Di Nuzzo, S. Vitiligo management: combination of surgical treatment and phototherapy under reflectance confocal microscopy monitoring. European Review for Medical and Pharmacological Sciences. 24 (13), 7366-7371 (2020).
  5. Mohammad, T. F., Hamzavi, I. H. Surgical therapies for vitiligo. Dermatologic Clinics. 35 (2), 193-203 (2017).
  6. Bishnoi, A., Parsad, D. Clinical and molecular aspects of vitiligo treatments. International journal of molecular sciences. 19 (5), 1509 (2018).
  7. Takahashi, K., Yamanaka, S. A decade of transcription factor-mediated reprogramming to pluripotency. Nature Reviews. Molecular Cell Biology. 17 (3), 183-193 (2016).
  8. Yamanaka, S. Pluripotent stem cell-based cell therapy-promise and challenges. Cell Stem Cell. 27 (4), 523-531 (2020).
  9. Xu, J., Du, Y., Deng, H. Direct lineage reprogramming: strategies, mechanisms, and applications. Cell Stem Cell. 16 (2), 119-134 (2015).
  10. Ieda, M., et al. Direct reprogramming of fibroblasts into functional cardiomyocytes by defined factors. Cell. 142 (3), 375-386 (2010).
  11. Gascón, S., Masserdotti, G., Russo, G. L., Götz, M. Direct neuronal reprogramming: achievements, hurdles, and new roads to success. Cell Stem Cell. 21 (1), 18-34 (2017).
  12. Atkinson, P. J., Kim, G. S., Cheng, A. G. Direct cellular reprogramming and inner ear regeneration. Expert Opinion on Biological Therapy. 19 (2), 129-139 (2019).
  13. Kurita, M., et al. In vivo reprogramming of wound-resident cells generates skin epithelial tissue. Nature. 561 (7722), 243-247 (2018).
  14. Yang, R., et al. Direct conversion of mouse and human fibroblasts to functional melanocytes by defined factors. Nature Communications. 5, 5807 (2014).
  15. Fehrenbach, S., et al. Loss of tumorigenic potential upon transdifferentiation from keratinocytic into melanocytic lineage. Scientific Reports. 6, 28891 (2016).
  16. Majumdar, G., Vera, S., Elam, M. B., Raghow, R. A streamlined protocol for extracting RNA and genomic DNA from archived human blood and muscle. Analytical Biochemistry. 474, 25-27 (2015).
  17. Bachman, J. Reverse-transcription PCR (RT-PCR). Methods in Enzymology. 530, 67-74 (2013).
  18. Donaldson, J. G. Immunofluorescence staining. Current Protocols in Cell Biology. 69 (1), 1-7 (2015).
  19. Yin, H., et al. Non-viral vectors for gene-based therapy. Nature Reviews. Genetics. 15 (8), 541-555 (2014).
check_url/62911?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Zhang, Y., Liu, L., Jin, M., Sun, H., Zhang, H., Li, Y. Direct Reprogramming of Mouse Fibroblasts into Melanocytes. J. Vis. Exp. (174), e62911, doi:10.3791/62911 (2021).

View Video